2023年6月16日
本文介绍了一种选择性改变脉络丛基因表达的方法,同时避免对大脑其他区域产生任何影响。
本研究的目的是探讨脉络丛中基因表达调控的技术。我们的研究引入了两种方法,可特异性地在脉络丛中进行操作,而对其他脑区无明显影响。研究结果有望促进未来在神经科学领域对脉络丛功能的深入研究。
我们的研究回顾表明,通过选择性阻断腺苷与其受体的结合,抑制T细胞经脉络丛的浸润,足以保护小鼠免受实验性自身免疫性脑脊髓炎(EAE)的病理损害。该发现支持了如下观点:检测脉络丛中的免疫细胞进入门户活性,可能为治疗多发性硬化症提供一种有前景的新策略。本研究提出了两种用于调控脉络丛基因表达的替代方法。
将Cre重组酶通过脑室内注射(ICV)注入这些转基因小鼠,或在野生型小鼠中通过脑室内注射AAV2/5,或使用靶向SHI技术。这些方法克服了提高特异性以及转基因小鼠繁育过程中存在的问题。首先,将麻醉后的小鼠置于手术平台上。
剪除毛发后,在两只眼睛上涂抹眼药膏以防止眼睛干燥。然后将小鼠固定在立体定位仪上以保持不动。在显微镜下做一小切口,充分暴露颅骨。
准备两支10微升注射器,一支装有AAV2/5腺苷2A受体shRNA,另一支装有AAV2/5乱序序列(scramble)。然后使用显微镜定位前囟(bregma)和后囟(lambda),并根据小鼠脑立体定位图谱设定10微升注射器的坐标点。在确定的坐标点处于颅骨上钻一个小孔。
以每分钟100纳升的恒定速率,通过侧脑室注射将2微升AAV2/5腺苷2A受体shRNA病毒注入脑室。拔针前保持针头在位10分钟。使用医用生物纤维蛋白胶及时封闭受损皮肤,以防止病毒流失。
将小鼠置于加热垫上,维持其体温约为 37 °C,以促进恢复。对实验组的 Rosa-LDL-td Tomato 小鼠,向每个侧脑室注射 2 µL CRE-TAT 重组酶;对照组注射 2 µL 无菌 PBS。在注射 CRE-TAT 重组酶两周后,制备冷冻组织切片,进行核染色,并制备载玻片用于成像。
在纯合型腺苷2A受体flox小鼠中,使用CRE-TAT敲低脉络丛中的腺苷2A受体,导致EAE临床评分降低。类似地,在脉络丛和腺苷2A受体野生型小鼠中使用AAV2/5-shRNA敲低腺苷2A受体,也降低了EAE临床评分。QPCR分析显示,与各自的对照组相比,AAV2/5-shRNA组和CRE-TAT组中腺苷2A受体的mRNA水平均下降。
特异性沉默脉络丛中的腺苷2A受体可减少免疫细胞向脊髓的浸润。
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本研究探讨了在不影响大脑其他区域的情况下,选择性改变脉络丛基因表达的技术。该研究介绍了两种可特异性调控脉络丛内基因表达的方法,有望为理解其功能及多发性硬化等疾病的相关机制提供新见解。
脉络丛(ChP)中的选择性基因敲低可实现对中枢神经系统免疫门户机制的精确探究,有助于解决神经免疫学靶点验证中的关键挑战。该方法通过支持功能性研究脉络丛特异性基因的作用,避免其他脑区的干扰效应,从而提高早期中枢神经系统疾病研发管线中靶点结合与机制去风险的预测可信度。该技术可为项目组合决策提供支持。
这种基因敲低方法整合了中枢神经系统免疫靶点的早期发现与临床前验证之间的接口。