2023年8月18日
本文介绍了一种改进的悬吊固定方法,通过使用大鼠固定夹克在针灸实验过程中有效固定大鼠。此外,还详细阐述了该固定装置的结构与应用,以及其在电针治疗中使用的方法说明和效果评估。
我们开发了一种改进的大鼠悬吊固定方法,在针灸实验中使用大鼠专用固定服进行固定。本实验方案旨在详细描述该方法的操作步骤及重要注意事项,为从事针灸与灸法基础研究的科研人员提供参考。在以往的研究报道中,研究人员在对大鼠实施针灸或电针操作时,常采用麻醉固定、高台固定、捆绑固定或各类自制固定装置。
鉴于麻醉对机体的副作用以及真实的临床情况,在未麻醉阶段进行固定是更优的选择。然而,在非麻醉状态下,上述固定方法仍存在一些局限性,例如穴位暴露受限、需要使用多个标记、固定位置不可调节或强迫体位等。本方法利用大鼠喜钻洞的习性,设计出贴合其体型的 rat jackets(大鼠背心式固定装置)。
与其他技术相比,该方法具有多项优势。它成本低廉、操作简便、节省人力和空间,可适应不同体重的大鼠,还可用于大多数穴位的针刺操作。在后续研究中,我们将重点探讨大鼠束缚衣的固定与悬吊方式对大鼠生理指标及与情绪认知相关行为学特征的影响。
这将使我们能够从认知层面评估其对研究的潜在影响,并优化固定方法。在继续操作前,戴上一副手套,然后将大鼠放入定制的大鼠背心并固定好。接着,用一只手将大鼠背心的中后部按在桌面上。
用另一只手轻轻抓住大鼠的尾巴,将其从饲养笼中提起并放入背心式固定装置中。当大鼠向前移动,头部到达头帽位置时,用双手小心地将它的左、右前肢从背心上的孔中拉出。从背心开口端开始,用绑带紧紧缠绕大鼠躯干,并在另一端牢固打结,以充分固定其前肢。
将绳子绑得松紧适度,以防止缺氧或肢体局部缺血,同时确保足够牢固以防止大鼠逃脱。以下肢同样方式固定。在开始对大鼠进行电针操作前,为其穿上定制的大鼠背心,然后使用酒精棉片对穴位局部皮肤进行消毒。
准确定位穴位后,将无菌一次性针灸针以适当深度刺入该部位。借助固定在大鼠背心上的S形钩子,将动物轻轻悬挂在水平铁杆上。将电极导线缠绕在水平铁杆上,然后将电极导线末端的小夹子牢固地连接到针柄上。
然后,打开电源后,选择合适的频率、电流和时间。参数调整完毕后,开始电针治疗过程。使用S形钩将同组的大鼠同时悬挂在铁杆上,进行同步电针刺激。
治疗结束后,将针灸针连同夹具一起从动物身上取出。然后,小心地将针从夹具中取出,并放入盒中。将动物从悬挂钩上取下后,松开绑带,抬起大鼠背心的头部盖罩,将大鼠置于笼子上方。
随后,大鼠可自行从夹克式固定装置中脱出,并独立进入笼中。在对12只大鼠进行15分钟电针实验期间,仅1只大鼠在留针过程中表现出剧烈挣扎,导致针具脱落;其余大鼠在整个治疗过程中均保持针具固定良好。
与其他文献报道的固定方法相比,本研究所展示的方法兼具稳定性与牢固固定、操作高效(所需时间和人员较少)、成本低廉以及对大鼠相对舒适等优点。此外,在穴位暴露范围方面,本方案中特别设计的大鼠背心能够满足暴露大鼠体表大多数穴位的需求。
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本文介绍了一种使用大鼠背心的改良悬吊固定方法,用于针灸实验。文中讨论了该装置的结构与应用,以及其在电针治疗中使用方法的说明。
在临床前针灸和电针研究中,对实验大鼠进行可靠的固定对于获得可重复的数据至关重要。大鼠背心悬吊固定法解决了体位控制、穴位可及性以及动物福利方面的关键挑战,直接影响发现阶段研究的质量和可扩展性。该方法支持高效、标准化的操作流程,对于神经生物学和疼痛研究领域中可靠的靶点验证及转化连续性至关重要。
这种固定方法处于早期发现与临床前模型开发的交汇点,支持从神经生物学和疼痛调节的机制研究到转化研究的各项工作流程。