2024年3月8日
本方案详细介绍了在新生小鼠中进行鞘内注射以实现基因编辑和药物递送的逐步操作步骤。
本课题组采用跨学科方法,结合基因组学发现与功能建模,研究神经发育障碍的遗传与表观遗传基础。我们利用患者来源的诱导性多能干细胞(iPSC)或基因突变小鼠,开展分子、神经生理及神经行为学分析,以解析神经发育障碍的病理生理机制。我们的目标是开发基于基因编辑的疾病治疗策略。
脑室内注射(也称为ICV注射)是直接将治疗物质递送至新生小鼠中枢神经系统的唯一方法。然而,该方法必须穿透大脑皮层。鞘内(IT)注射是一种在临床中常用的给药操作,可作为将治疗物质直接递送至中枢神经系统的有效手段。
然而,由于新生幼鼠体型微小且身体脆弱,对其进行鞘内注射可能带来重大的技术挑战。我们正致力于开发一种高效且可靠的非病毒、非纳米颗粒递送方法,用于检测小鼠大脑中的基因编辑效果和治疗功效。与传统的脑室内注射相比,鞘内注射显著降低了风险,因为它无需直接穿透大脑皮层。
这种优势可最大限度地减少对局部皮质组织及周围神经的潜在损伤。鞘内注射还可使药物给药体积至少增加五倍,因此单次注射即可显著提高重复给药时的可视性。开始操作时,将幼鼠移至远离母鼠的另一个笼子中进行处理。
开始注射操作前,使用解剖显微镜确认幼鼠的椎间隙,或至少确认脊髓管的中线位置。用25或10微升注射器吸取10微升所需注射物质,如药物制剂、病毒悬液或对照用人造脊髓液等。待动物完全麻醉(通过身体活动减少或消失确认)后,将幼鼠轻柔地置于显微镜下。
用左手的食指和拇指,仔细触诊位于双侧骨盆带之间的中线处的椎间隙。轻轻旋转尾部基底,以帮助确定脊柱的中线。在凹陷与中线相交处,将针头小心插入,针头倾斜角度为70至80度,同时确保其始终与正中矢状面保持一致。
当针尖接触骨组织时,逐渐将角度减小至约30度,并将针头向前推进约2毫米进入椎间隙。在50至60秒内缓慢注射最多10微升的液体。注射完成后,保持针头在原位停留10至20秒。
轻轻旋转针头以避免渗漏。注射后,将幼鼠置于加热垫上 10 至 15 分钟,使其充分恢复并复温。在野生型新生鼠中注射快绿后,立即观察到注射液广泛分布。
在通过鞘内注射基于CRISPR-Cas9的基因编辑工具10天后,YFP报告小鼠在整个大脑中均表现出广泛的YFP表达。
本研究提供了一种在新生小鼠中进行鞘内注射的详细实验方案,可实现基因编辑和药物直接递送至中枢神经系统。该技术旨在克服新生幼鼠组织脆弱所带来的操作难题,并在不损伤周围组织的前提下提高治疗的可靠性。
新生小鼠鞘内直接注射可将基因编辑工具和治疗药物精确递送至中枢神经系统,解决了神经遗传药物研发中的一个关键瓶颈问题。该方法可减少脱靶暴露和组织损伤,有助于提高早期药效和安全性评估的预测可靠性。该技术的标准化增强了从临床前模型向神经发育障碍潜在临床应用转化的连续性。
该方案融入了以中枢神经系统为靶点的治疗手段从发现到临床前研究的连续过程,架起了早期机制研究与转化研究之间的桥梁。