2024年3月1日
本文介绍了一种通过联合使用慢病毒载体过表达Scleraxis并施加单轴拉伸,由iPSC来源的间充质基质细胞生成诱导性肌腱细胞(iTenocytes)的方法。 通过 二维生物反应器
肌腱损伤是美国最常见的肌肉骨骼问题之一,每年影响约3300万人。我们的研究致力于开发一种细胞与组织工程方法来修复肌腱,从而显著改善患者的治疗效果。目前推动肌腱研究的技术包括使用来自不同来源的干细胞(如诱导多能干细胞),并结合生物反应器、基因工程生物材料以及其他组织工程技术,以模拟肌腱发育所需的微环境信号。
我们对肌腱如何从其起源发育而来的理解仍然有限。目前已知有多个在肌腱成熟过程中高度表达的基因,但遗憾的是,这些基因并非肌腱组织所特有。
这使得研究人员难以标准化地评估肌腱分化的成功与否。我们的方案利用了诱导性多能细胞(IPC)显著的分化潜能以及目前关于肌腱发育的认知。我们的目标是开发一种同种异体细胞来源,用于肌腱细胞治疗的应用。
我们的实验室致力于阐明与肌腱细胞命运相关的信号通路,以更深入地理解肌腱的发育过程。我们希望将这些知识与组织工程技术及生物材料相结合,开发出比传统肌腱修复方法更有效的替代方案。在对两块硅胶板进行高压灭菌后,于无菌条件下从灭菌袋中取出硅胶板,并将其放入150毫米的培养皿中。
向每个硅胶板的孔中加入 400 微升纤连蛋白溶液。接着,将表达Scleraxis的诱导间充质基质细胞重悬于间充质基质细胞培养基中,并使用自动细胞计数仪计数活细胞。计算每平方厘米接种 1.25 × 10⁴ 个细胞所需的细胞悬液体积。
从15毫升锥形管中移除该体积的MSC拉伸培养基,并加入所需体积的scleraxis阳性诱导间充质基质细胞悬液。轻轻颠倒混匀管内液体,使细胞悬液均匀。向每块硅胶板的每个孔中加入400微升细胞悬液。
将盖子重新盖回150毫米培养皿上,并在37摄氏度下孵育24小时。进行单轴拉伸时,先用双蒸水冲洗拉伸装置,随后用70%乙醇冲洗。擦拭装置表面,将其放入细胞培养超净台中,并暴露于紫外光下照射15分钟。
接下来,将一块培养板放入培养箱中作为静态对照。将第二块带孔的硅胶板放入拉伸装置中,使螺丝与硅胶板上的孔对齐。然后,盖上装置的盖子。
将带有固定硅胶板的装置连接至电子源,并置于37摄氏度的培养箱中。设置循环拉伸程序为4%正弦应变,频率0.5赫兹,每日拉伸2小时。通过按下启动按钮开始拉伸。
在对表达scleraxis的诱导型间充质基质细胞进行机械加载时,过高的接种密度会导致细胞过早收缩和早期死亡。经过数天的拉伸后,与静态培养组中细胞的随机排列相比,在拉伸培养的表达scleraxis的诱导型间充质基质细胞中观察到一定程度的细胞有序排列。对肌动蛋白丝进行鬼笔环肽染色显示,细胞沿垂直于拉伸方向生长,而静态培养组中的细胞则呈随机排列。
基因表达分析显示,在第3天和第7天,与第0天的iMSCs相比,腱系基因显著上调。在拉伸7天后,与其他所有组相比,scleraxis阳性诱导的间充质基质细胞拉伸组在培养基中的胶原沉积显著更高。
本文介绍了一种利用诱导多能干细胞来源的间充质基质细胞进行肌腱修复的新方法。该方法包括通过慢病毒载体过表达Scleraxis,并在二维生物反应器中施加单轴拉伸刺激。
通过Scleraxis过表达和单轴张力作用,将诱导多能干细胞来源的间充质基质细胞转化为诱导型肌腱细胞,解决了肌腱修复所需可扩展且标准化细胞来源的难题。该方法结合了对肌腱谱系特化至关重要的遗传和机械信号,提高了基于细胞治疗策略的可预测性。此技术通过实现可重复生产的即用型细胞产品,推动了肌肉骨骼系统再生应用的产品管线发展。
本方案通过实现肌腱修复策略的早期假设验证、检测准备以及转化模型开发,融入了从发现到临床前研究的连续过程。