2024年6月21日
本手稿概述了一种详细的视频实验方案,用于原代晶状体上皮细胞(LECs)的培养,旨在提高实验可重复性,并促进白内障及后囊膜混浊(PCO)相关研究。本文提供了晶状体解剖、LECs分离与鉴定的分步操作指南,尤其为该领域的新手研究人员提供了有价值的参考。
我们的研究目标是探索白内障的根本病因,特别关注氧化还原修复酶的功能。我们的目的是明确该酶在晶状体保护中的关键作用,并评估其作为白内障预防和治疗药物靶点的潜力。在众多前沿技术中,我们的研究采用晶状体上皮细胞作为基础研究平台。
这一方法对于揭示白内障形成的机制、后囊膜混浊以及发现新的抗白内障药物至关重要。接下来,我们将重点研究抗氧化酶和衰老对晶状体功能的影响。我们的目标是发现创新的抗氧化治疗方法,以延缓晶状体老化、预防白内障,并为后囊膜混浊(PCO)提供有效的干预手段。
首先,将已处死的小鼠置于手术台上。使用手术剪小心地去除眼睑。然后,借助弯头镊子,轻压眼窝对侧两侧,使眼球向外突出。
使用白内障刀在角膜上小心切开,用弯头镊子仔细取出晶状体。接着,用钝头弯镊将晶状体转移至一个含有5毫升无菌DPBS和庆大霉素的60毫米塑料培养皿中。用含有庆大霉素的DPBS溶液轻轻冲洗晶状体。
完成冲洗步骤后,将晶状体放置在滤纸上,使其自然干燥。待晶状体充分干燥后,小心将其转移至培养皿盖上,以准备去除晶状体囊膜。随后,将晶状体旋转至朝上位置,确保前段朝上。
用镊子夹住前囊膜,主手使用撕囊镊在囊膜上制造一个小的撕裂口。轻轻将两件器械向相反方向牵拉,以去除囊膜。将取出的囊膜置于DPBS中,直至完成所有晶状体的解剖操作。
随后,小心将晶状体囊膜转移至六孔板中。每孔加入1毫升0.05%胰蛋白酶溶液,以启动酶消化过程。轻轻振荡胰蛋白酶溶液,确保其均匀渗透。
将培养皿放入细胞培养箱中,在37摄氏度下孵育8至10分钟,使囊膜消化。然后使用解剖剪小心剪碎已消化的晶状体囊膜,以促进细胞分离。加入0.5毫升含10%FBS的培养基以终止胰蛋白酶消化。
将组织样本转移至离心管中,以1000 G离心五分钟。小心移除上清液,避免扰动细胞沉淀。用一毫升培养基重悬细胞,并将细胞接种至24孔板中。
培养的晶状体上皮细胞的相差显微图像显示,在第3至第5天之间,细胞开始进入增殖期。在第7至第10天之间,可观察到细胞的快速生长和对数增殖阶段。
本研究聚焦于氧化还原修复酶在白内障形成及后囊膜混浊(PCO)中的作用。通过使用原代晶状体上皮细胞(LECs)作为模型,旨在探索通过抗氧化治疗实现干预的潜在可能。
建立稳定的小鼠原代晶状体上皮细胞(LEC)培养体系,可解决早期眼科药物研发中的一个关键瓶颈,尤其对白内障和后囊膜混浊(PCO)研究具有重要意义。可靠的LEC体系有助于对抗氧化剂和氧化还原调节类治疗药物进行机制性风险评估和靶点验证。本方案可增强从发现阶段向临床前阶段过渡时,针对晶状体相关疾病研发项目的结果可预测性。
本方案将原代LEC培养定位为贯穿眼科药物开发早期发现、靶点验证和临床前研究的基础性工具。