Name: 基于新型口堵的鼠牙髓暴露模型的建立及其在牙髓炎研究中的应用 (视频) | JoVE Journal
Uploaded: 2023-10-27T13:30:00.000+00:00
Duration: 5 min 16 s
Description: 学习使用新型口堵建立C57小鼠牙髓暴露模型，用于牙髓炎研究。该方法通过改进固定装置提高手术效率，便于进行组织学分析，为牙髓炎症机制研究提供可靠的体内实验平台。

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本研究由国家自然科学基金项目 U21A20368（L. Y.）、82101000（H. W.）和 82100982（F. L.），以及四川省科技计划项目 2023NSFSC1499（H. W.）资助。所有原始数据和图像均已包含在本文中。

本研究中的实验操作已获得四川大学华西口腔医学院伦理委员会的批准（WCHSIRB-D-2021-125）。成年C57BL/6小鼠购自中国成都的集萃药康实验动物有限公司。上颌第一磨牙的整个牙冠在出生后21天完全萌出。用于手术的小鼠应大于21天，且具有正常的生命活力11。本研究中使用6至8周龄的小鼠进行建模。图1为实验流程示意图。
1. 术前准备 (图2)
<ol>
	<li>准备以下器械：体视显微镜、固定板、医用胶带、开口器、直径为0.6 mm的微创牙科钻头、牙科高速手机、8# C+锉、加热垫、1 mL注射器、无菌棉球、眼科镊。</li>
	<li>准备以下药品：麻醉混合液、兽用软膏。</li>
</ol>
2. 口腔拉钩的制备
<ol>
	<li>根据体重按 0.007 mL/g 的剂量，通过腹腔注射麻醉混合液（10% 盐酸氯胺酮 + 5% 赛拉嗪 + 85% 无菌等渗盐水）对小鼠进行称重和麻醉，并通过脚趾夹捏法确认麻醉效果。在眼睛上涂抹眼用润滑软膏，以防止手术过程中因干燥造成眼部损伤。 
	注意：必须佩戴医用帽、口罩、手套和防护服等基本防护装备。确保手术环境和小鼠饲养环境清洁安全。整个操作过程中需使用加热垫以维持体温。</li>
	<li>按以下步骤制备开口器（图3）。
	<ol>
		<li>准备以下材料：直径为 8 µm 的正畸弓丝、幼环弯制钳、粗丝剪、记号笔、长度为 3 mm、横截面直径为 1 mm 的橡胶帽。</li>
		<li>首先用左手固定弓丝，右手拇指和食指轻微向弓丝弧度方向弯折。重复此动作数次，有助于后续准确弯制成三维角度。</li>
		<li>使用幼环弯制钳在弓丝中点处弯制梯形（图3C，a-l-k-b）顶部边缘（图3G，a-i），长度约 8 mm。确保点 a（图3）位于钳喙边缘。</li>
		<li>左手持钳，右手拇指和食指夹住弓丝自由端，从点 a 开始弯制约 120° 的角度。在点 i（图3G）重复相同操作。将弓丝平放于水平台面，检查其是否处于同一平面，不应出现翘起。</li>
		<li>两侧各预留约 9 mm 长度（图3D，a-b，l-k），使用与步骤 2.2.4 相同的技术将自由端弯制成 75° 角，确保每一边均在同一平面上。使用钳喙尖端弯制此锐角。</li>
		<li>在距点 b 约 5 mm 处确定点 c。采用相同技术在点 c 处弯制 105° 角。在距点 c 5 mm 处的点 d 再弯制另一个 105° 角。从点 d 起预留约 4.5 mm 确定点 e，在点 e 处将自由端弯制形成约 100–105° 的角度（图3E）。 
		注意：本实验所用 C57 小鼠为 6–8 周龄，体重约 20 g。5 mm 的间距既能牢固固定小鼠上下颌而不滑动，又不会压迫皮肤引起不适。若使用其他品系或年龄的小鼠，请根据实际情况调整 c-d 和 i-h 部分的长度（图3E、G）。</li>
		<li>额外弯制一个用于下颌部分的舌压板（图3G，j-i-h-g）。</li>
		<li>在 l-k-j 部分重复 a-b-c 部分的弯制步骤。同时夹住 i-k 和 k-j 部分，将点 j 处的自由端弯制至与 i-k-j 平面垂直。夹住距点 j 5 mm 的点 i，将自由端弯制至与 i-k-j 平面及 c-d 部分均平行（图3H）。</li>
		<li>从点 i 起预留 5 mm 长度，在点 h 处将弓丝弯制至与 i-h 部分垂直，并与 j-i-h 平面平行。在距点 h 5 mm 处确定点 g，夹住 j-i-h-g 平面并将自由端弯制，使其与 k-j 部分对称。此后点 f 之后的自由端应与点 e 的自由端对称（图3H）。</li>
		<li>在自由端安装橡胶帽（图3F）。</li>
	</ol>
	</li>
</ol>
3. 固定化
<ol>
	<li>用皮肤胶带将小鼠仰卧固定在固定板上，并固定其四肢。用拇指和食指按压开口器的自由端。</li>
	<li>将小鼠的上门齿固定在两个臂状结构的梯形凹槽内。确保带有压舌板的一侧对应下颌。调整开口器，使小鼠舌头固定不动，但避免缺血。</li>
</ol>
4. 牙齿评估
<ol>
	<li>确保用于手术的上颌第一磨牙无龋齿、外伤及牙源性病变，周围牙龈无红肿或瘘管。确保对侧牙齿健康，可作为健康对照组。</li>
</ol>
5. 牙髓暴露
<ol>
	<li>使用牙科钻头在上颌第一磨牙的咬合面以20,000 rpm的速度进行钻孔，确保去除釉质。使用牙科手机操作时仅限于牙本质浅层，以避免对牙髓组织造成过度的热刺激12。</li>
	<li>同时，在操作过程中每3分钟使用注射器向牙齿滴加生理盐水，以防止过热。</li>
	<li>将8#或10# C+锉置于钻孔最深处，穿通剩余牙本质以暴露髓腔。当局部牙本质被完全去除时，会有明显的落空感。探查时不宜过深，以免将牙髓组织带出髓腔。</li>
	<li>清理牙齿周围的碎屑，取出开口器，手术结束。以对侧上颌第一磨牙作为未处理对照。</li>
</ol>
6. 术后护理
<ol>
	<li>手术后，皮下注射卡洛芬（5 mg/kg），并将小鼠俯卧于化学热疗加热垫上，直至从麻醉中恢复。给予小鼠食物并提供饮用水。恢复过程应有人员监管。在小鼠完全恢复之前，同一饲养盒内不应有其他动物。</li>
</ol>
7. 样本采集与保存
<ol>
	<li>术后24小时或根据实验需要的其他时间点，在深度麻醉条件下通过颈椎脱位处死小鼠9。使用眼科剪剪除附着在上颌骨和颧骨上的骨骼肌。去除骨骼、额骨及软组织，取出带有上颌磨牙的齿骨板。 
	注：根据He等人的研究，建议在术后72小时内采集牙髓炎样本，以避免牙髓组织发生广泛性坏死13。</li>
	<li>将齿骨板沿矢状面均分为两半，置于4%多聚甲醛（PBS配制，pH 7.4）中，4 °C固定24小时。</li>
</ol>
8. 组织学分析
<ol>
	<li>用磷酸盐缓冲液（PBS）清洗组织，并在含有5% EDTA和4%蔗糖的PBS脱钙液（pH 7.4）中于4 °C条件下脱钙2–4周，每日更换脱钙液10。</li>
	<li>将半块下颌骨齿板包埋于石蜡中，确保无牙的矢状面朝下放置于组织包埋盒底部。</li>
	<li>使用石蜡切片机将石蜡包埋块切成5 µm厚的切片。根据显微镜下观察到的近端、远端、上方及下方的位置关系，调整石蜡块的角度，以确保能够切到第一磨牙完整的牙冠牙髓及穿孔部位。</li>
</ol>

Creating a Pulp Inflammation Mouse Model Using a Novel Mouth-Gag 

<ol><li>Kleinert, A., Kleinert, L., Ozimirska, M., Chałas, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Endodontium+-+together+or+separately%5BTitle%5D)+AND+%22Folia+Morphol%22%5BJournal%5D)">Endodontium - together or separately.</a> Folia Morphol. 77 (3), 409-415 (2018).</li>
<li>Dhillon, H., Kaushik, M., Sharma, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Regenerative+endodontics-Creating+new+horizons%5BTitle%5D)+AND+%22J+Biomed+Mater+Res+B+Appl+Biomater%22%5BJournal%5D)">Regenerative endodontics-Creating new horizons.</a> J Biomed Mater Res B Appl Biomater. 104 (4), 676-685 (2016).</li>
<li>Prati, C., Pirani, C., Zamparini, F., Gatto, M. R., Gandolfi, M. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+20-year+historical+prospective+cohort+study+of+root+canal+treatments.+A+Multilevel+analysis%5BTitle%5D)+AND+%22Int+Endod+J%22%5BJournal%5D)">A 20-year historical prospective cohort study of root canal treatments. A Multilevel analysis.</a> Int Endod J. 51 (9), 955-968 (2018).</li>
<li>Su, Y., Wang, C., Ye, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Healing+rate+and+post-obturation+pain+of+single-+versus+multiple-visit+endodontic+treatment+for+infected+root+canals%3A+a+systematic+review%5BTitle%5D)+AND+%22J+Endod%22%5BJournal%5D)">Healing rate and post-obturation pain of single- versus multiple-visit endodontic treatment for infected root canals: a systematic review.</a> J Endod. 37 (2), 125-132 (2011).</li>
<li>Murray, P. E., Garcia-Godoy, F., Hargreaves, K. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Regenerative+endodontics%3A+a+review+of+current+status+and+a+call+for+action%5BTitle%5D)+AND+%22J+Endod%22%5BJournal%5D)">Regenerative endodontics: a review of current status and a call for action.</a> J Endod. 33 (4), 377-390 (2007).</li>
<li>Arora, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Potential+application+of+immunotherapy+for+modulation+of+pulp+inflammation%3A+opportunities+for+vital+pulp+treatment%5BTitle%5D)+AND+%22Int+Endod+J%22%5BJournal%5D)">Potential application of immunotherapy for modulation of pulp inflammation: opportunities for vital pulp treatment.</a> Int Endod J. 54 (8), 1263-1274 (2021).</li>
<li>Eramo, S., Natali, A., Pinna, R., Milia, E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Dental+pulp+regeneration+via+cell+homing%5BTitle%5D)+AND+%22Int+Endod+J%22%5BJournal%5D)">Dental pulp regeneration via cell homing.</a> Int Endod J. 51 (4), 405-419 (2018).</li>
<li>Hasan, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Expression+of+Toll-like+receptor+2%2C+Dectin-1%2C+and+Osteopontin+in+murine+model+of+pulpitis%5BTitle%5D)+AND+%22Clin+Oral+Investig%22%5BJournal%5D)">Expression of Toll-like receptor 2, Dectin-1, and Osteopontin in murine model of pulpitis.</a> Clin Oral Investig. 27 (3), 1177-1192 (2023).</li>
<li>Wang, Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((DDIT3+aggravates+pulpitis+by+modulating+M1+polarization+through+EGR1+in+macrophages%5BTitle%5D)+AND+%22Int+Immunopharmacol%22%5BJournal%5D)">DDIT3 aggravates pulpitis by modulating M1 polarization through EGR1 in macrophages.</a> Int Immunopharmacol. 120, 110328(2023).</li>
<li>Richert, R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+critical+analysis+of+research+methods+and+experimental+models+to+study+pulpitis%5BTitle%5D)+AND+%22Int+Endod+J%22%5BJournal%5D)">A critical analysis of research methods and experimental models to study pulpitis.</a> Int Endod J. 55 (Suppl 1), 14-36 (2022).</li>
<li>Huang, X. F., Zhao, Y. B., Zhang, F. M., Han, P. Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Comparative+study+of+gene+expression+during+tooth+eruption+and+orthodontic+tooth+movement+in+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Oral+Dis%22%5BJournal%5D)">Comparative study of gene expression during tooth eruption and orthodontic tooth movement in mice.</a> Oral Dis. 15 (8), 573-579 (2009).</li>
<li>Kwon, S. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Thermal+irritation+of+teeth+during+dental+treatment+procedures%5BTitle%5D)+AND+%22Restor+Dent+Endod%22%5BJournal%5D)">Thermal irritation of teeth during dental treatment procedures.</a> Restor Dent Endod. 38 (3), 105-112 (2013).</li>
<li>He, Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Pulpal+tissue+inflammatory+reactions+after+experimental+pulpal+exposure+in+mice%5BTitle%5D)+AND+%22J+Endod%22%5BJournal%5D)">Pulpal tissue inflammatory reactions after experimental pulpal exposure in mice.</a> J Endod. 43 (1), 90-95 (2017).</li>
<li>Karrar, R. N., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Molecular+biomarkers+for+objective+assessment+of+symptomatic+pulpitis%3A+A+systematic+review+and+meta-analysis%5BTitle%5D)+AND+%22Int+Endod+J%22%5BJournal%5D)">Molecular biomarkers for objective assessment of symptomatic pulpitis: A systematic review and meta-analysis.</a> Int Endod J. 56 (10), 1160-1177 (2023).</li>
<li>Goldman, E., Reich, E., Abramovitz, I., Klutstein, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Inducing+apical+periodontitis+in+mice%5BTitle%5D)+AND+%22J+Vis+Exp%22%5BJournal%5D)">Inducing apical periodontitis in mice.</a> J Vis Exp. (150), e59521(2019).</li>
<li>Duncan, H. F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Present+status+and+future+directions-Vital+pulp+treatment+and+pulp+preservation+strategies%5BTitle%5D)+AND+%22Int+Endod+J%22%5BJournal%5D)">Present status and future directions-Vital pulp treatment and pulp preservation strategies.</a> Int Endod J. 55 (Suppl 3), 497-511 (2022).</li>
<li>Shi, X., Li, Z., He, Y., Jiang, Q., Yang, X. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Effect+of+different+dental+burs+for+experimental+induction+of+pulpitis+in+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Arch+Oral+Biol%22%5BJournal%5D)">Effect of different dental burs for experimental induction of pulpitis in mice.</a> Arch Oral Biol. 83, 252-257 (2017).</li>
<li>Du, W., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Indigenous+microbiota+protects+development+of+medication-related+osteonecrosis+induced+by+periapical+disease+in+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Int+J+Oral+Sci%22%5BJournal%5D)">Indigenous microbiota protects development of medication-related osteonecrosis induced by periapical disease in mice.</a> Int J Oral Sci. 14 (1), 16(2022).</li>
</ol>

作者声明无利益冲突。

牙髓作为牙齿内唯一的软组织，在维持牙齿生物活性方面发挥着关键作用，但其敏感性极高。近年来，在牙髓治疗中优先采用保留活髓的策略，这就需要对牙髓炎症的机制有全面的理解16。牙髓炎中炎症微环境的时空动态变化以及牙髓内固有细胞类型之间的相互作用，使得通过体外（in vitro）研究难以深入探究11。相比之下，体内（in vivo）研究能够模拟人体内的生理环境，因而更具优势。利用实验小鼠，特别是基因过表达或基因敲低的小鼠，是验证科学假设的有效手段。然而，实验室中常用的C57小鼠由于体型小且不配合，给牙齿施加刺激带来了困难17。为解决这一问题，有必要对一种新型开口器进行详细说明，以帮助研究人员在小鼠口腔内顺利操作。此外，本文还阐述了使用该开口器通过暴露小鼠第一磨牙牙髓建立牙髓炎模型的实验方案，为后续研究提供了有价值的参考指南。
经过多次迭代，成功设计出一种可扩展且易于制作的开口器。开口器的尺寸及其三视图示意图见<st...

牙髓是牙齿的重要组成部分，负责多种基本功能，如营养供应、牙本质形成、感觉功能以及防御反应1。然而，牙髓被坚硬的组织包围，易受到深龋、牙髓炎、外伤或后续治疗等引起的损伤和破坏2,3。功能性牙髓的缺失会增加牙齿脆性的风险4。此外，年轻恒牙牙髓活力的丧失可能对牙齿的发育成熟产生不利影响，而目前的义齿技术无法恢复健康牙髓所提供的神经反馈功能4。这一现状促使研究人员探索除简单切除之外，处理炎症牙髓的替代性解决方案。
2007年，Murray等人率先将组织工程应用于再生牙髓学，从而激发了人们对牙髓保存与再生的广泛兴趣5。然而，炎症状态下的牙髓组织存在挑战，因为细胞会释放白细胞介素-6（IL-6）等炎症因子，招募炎症细胞，导致细胞坏死、牙髓活力丧失以及功能恢复困难6,7。因此，理解炎症及其相关的细胞死亡机制，对于推动活髓保存技术的发展至关重要。已有大量实验致力于探索活体（in vivo）或体外（in vitro）条件下炎症牙髓的分子生物学特性8,9。尽管二维或三维细胞培养等in vitro&#160;实验已发展多年，日趋成熟并被广泛用于检测牙髓细胞对炎症因子的反应，但这些实验无法反映牙髓组织与全身免疫系统之间的相互作用10。如果所研究的现象来源于免疫系统、血管系统或神经系统等其他组织来源的细胞，则单纯的牙髓细胞培养将难以取得突破。因此，in vivo 实验非常必要，且具有重要参考价值。
小鼠在炎症研究中正日益成为常用的选择 体内&#160;由于小鼠具有成本低、繁殖力强和生命力旺盛等优点，常被用于实验研究。然而，目前尚缺乏构建小鼠牙髓炎模型的系统性实验方案可供参考。小鼠体型微小且对刺激敏感，给实验操作带来显著挑战。观察隐藏于口腔深部的微小牙齿通常需要使用悬臂式显微镜，尽管大多数实验室更常配备台式显微镜。此外，实验过程中缺乏专用的开口器，往往需要助手协助。为解决这一问题，研究团队利用 readily available materials 设计了一种口撑装置，旨在建立标准化且可重复的小鼠牙髓炎模型构建方案。本文详细描述了在 C57 小鼠上实施该模型的操作流程，包括术前准备、固定、牙髓暴露手术及样本采集等步骤。本方案推荐使用该口撑装置，并介绍其结构、制作方法及应用方式，以帮助其他研究人员顺利复现实验操作。

<table><tbody><tr><td>&lt;强&gt;动物&lt;/strong&gt;</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>C57/B6J 小鼠</td><td>Gempharmatech 实验动物有限公司</td><td>C57/B6J</td><td>用于建立牙髓暴露</td></tr><tr><td>&lt;强&gt;仪器设备&lt;/strong&gt;</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>1 mL 注射器</td><td>成都新津士峰医疗器械 &amp;安普&仪器有限公司</td><td>SB1-074(IV)</td><td>用于药物注射。</td></tr><tr><td>8# C+ 文件</td><td>Readysteel</td><td>0010047</td><td>用于暴露髓室顶。</td></tr><tr><td>麻醉混合溶液</td><td></td><td></td><td>10% 盐酸氯胺酮 + 5% 赛拉嗪 + 85% 无菌等渗盐水&amp;nbsp;</td></tr><tr><td>DAPI染色液</td><td>Beyotime</td><td>C1005</td><td>用于免疫荧光染色中细胞核的复染。</td></tr><tr><td>牙科高速手机</td><td>京源电子商务技术</td><td>WJ-422</td><td>在牙髓暴露处应用。</td></tr><tr><td>重型钢丝钳</td><td>Jirui Medical Instrument Co., Ltd.</td><td>无</td><td>应用等离子弧切割。</td></tr><tr><td>苏木精和伊红染色试剂盒</td><td>Biosharp</td><td>BL700B</td><td>用于载玻片的组织学分析。</td></tr><tr><td>IL-6 抗体</td><td>Novus</td><td>NBP2-89149</td><td>应用于免疫荧光染色以检测牙髓炎症。</td></tr><tr><td>氯胺酮（盐酸氯胺酮）</td><td>Vet One，美国爱达荷州博伊西</td><td>C3N VT1</td><td>100 mg/kg，腹腔注射。用于麻醉时。</td></tr><tr><td>医用穿刺</td><td>3M</td><td>1530</td><td>在小鼠固定中应用。</td></tr><tr><td>正畸弓丝&amp;nbsp;</td><td>上海微容医疗器械有限公司</td><td>K417</td><td>8 的直径&amp;micro;m</td></tr><tr><td>圆形牙科钻头（0.6 mm）</td><td>Shofu global</td><td>072208</td><td>用于去除釉质及浅层牙本质。</td></tr><tr><td>幼嫩组织弯钳</td><td>Jirui Medical Instrument Co., Ltd.</td><td>无</td><td>进行弧形弯曲操作。</td></tr></tbody></table>

建立用于牙髓炎研究的新型开口器小鼠牙髓暴露模型

Establishment of a Murine Pulp Exposure Model with a Novel Mouth-Gag for Pulpitis Research

牙髓炎是导致天然牙齿丧失的常见原因，可引起炎症牙髓组织的坏死及生物活性的丧失。揭示牙髓炎的发生机制并实现有效治疗，一直是牙髓病学研究的重点。因此，深入了解牙髓内的炎症过程，对于提高牙髓保存率至关重要。与其他组织相比， 体外 实验方面，小鼠牙髓炎模型为观察牙髓炎的病理进展提供了更为真实且基因多样性更丰富的研究环境。然而，尽管小鼠具有成本低、易获取的优点，但其体型小、配合度差以及耐受性低等特点，使得口腔及牙科操作过程较为困难。本方案介绍了一种新型开口器的设计与应用，可用于暴露小鼠牙髓，从而促进更高效的口腔内操作。该开口器由大多数牙科医生 readily available 的牙弓结构组成，可显著加快手术准备过程，即使是初次操作亦能迅速完成。采用显微CT、苏木精-伊红（HE）染色及免疫荧光染色技术，用于识别形态学变化及细胞表达的改变。本文旨在帮助研究人员利用这一新型开口器，建立一种更具可重复性且操作要求更低的牙髓炎症模型构建方法。

上述操作在3只6至8周龄C57BL/6小鼠的右侧上颌第一磨牙上进行，左侧上颌第一磨牙则作为对照保留。空白对照、12小时牙髓炎和24小时牙髓炎样本的组织学与免疫荧光结果用于演示。
根据 Goldman 等人15 的 CT 分析方案，通过显微 CT 及重建模型确认了牙髓暴露，如图 4 A-C 所示。对对照侧和手术侧的上颌第一磨牙进行了矢状切面 HE 染色（图 5）。结果显示伤口边缘处存在牙髓组织坏死及细胞形态结构的破坏。坏死主要集中在穿孔附近的牙髓组织，而未打开侧的牙髓组织形态正常。术后 24 小时，大部分牙髓组织（包括根髓）在形态上仍保持完整（图 5）。
对照组中IL-614的表达水平较低，在12 h时伤口周围可见少量IL-...

本文介绍了一种利用创新性开口器在小鼠中建立牙髓炎模型的简化方案，并随后进行组织学分析。

牙髓炎是导致天然牙齿脱落的常见原因，可引起牙髓炎症部位的坏死及生物活性丧失。阐明其机制……

诸如二维或三维细胞培养等单独实验已被广泛用于检测牙髓细胞的反应。然而，这些实验无法反映牙髓组织与全身免疫系统之间的相互作用。因此，体内实验在牙髓病学研究中正变得越来越受欢迎。C57小鼠由于其成本效益高、死亡率低且生命力强，正逐渐成为牙髓炎症研究中的常用选择。然而，小鼠体型较小且缺乏配合性，这在实验操作过程中带来了显著挑战。固定过程是一个重要的影响因素，会提高技术门槛。我们设计了一种使用 readily available 材料和简单组装的新型开口器，以协助研究人员进行牙髓暴露手术。根据我们的研究，该开口器可显著缩短初学者固定小鼠口腔并暴露上颌第一磨牙所需的时间。首先，用左手将一根八微米厚的正畸弓丝拉直，同时右手保持轻微弯曲，抵住弓丝的弧形部分。使用Young弯制钳在弓丝中点处将梯形的上边缘弯曲约八毫米。确保点a位于钳嘴的边缘。现在，用左手握住弯制钳，用右手拇指和食指夹住弓丝的自由端。然后从 a 点开始将弓丝弯曲成 120 度角。将弓丝放置在水平桌面上，检查其是否处于同一平面上。在弓丝两侧各预留约 9 毫米，并使用钳子将自由端弯曲成 75 度角。现在找到点 c，该点距离点 b 约五毫米。在点 c 处将金属丝弯折成 105 度角。同样地，在点 d 和点 e 处弯折金属丝。同时夹住 ik 和 kj 部分。在点 l、j 和 k 处复制 a、b、c 的弯曲。然后在点 j 处弯曲自由端，使其垂直于 ikj 平面。为下颌部分弯曲一根额外的压舌板。从点 i 向点 j 方向 5 毫米处夹紧，并弯曲自由端，使其与 ikj 平面和 cd 部分均平行。接着，在点 i 处留出 5 毫米的间隙。在点 h 处，将弓丝在 ih 和 jih 平面上垂直弯曲。在距 h 点 5 毫米处确定点 g，并夹紧 jihg 区域，然后在点 g 处弯曲弓丝。现在，将自由端相对于 kj 平面对称弯曲。f 点之后的自由端应与 e 点处的自由端对称。最后，在自由端安装橡胶帽。首先，将一只麻醉后的小鼠以仰卧位固定在固定板上，用胶带固定其四肢。用拇指和食指按压预先准备好的开口器的自由端。将小鼠的上门齿固定在开口器两臂之间的梯形凹槽内。确保带有压舌板的一侧臂位于下颌骨上。检查上颌第一磨牙，确保其无龋齿、创伤及牙发育异常。检查周围牙龈，确保无红肿或瘘管。然后检查对侧牙齿的健康状况。接着，使用牙科钻头在20,000 RPM条件下钻磨上颌第一磨牙的咬合面。去除牙釉质。使用注射器每隔三分钟向牙齿滴加生理盐水，以防止过热。将8号C-plus锉置于钻孔凹陷的最低位置，穿通最内层牙本质以暴露牙髓腔。清理牙齿周围的碎屑，然后移除口腔拉钩。使用口腔拉钩固定口腔并定位上颌第一磨牙所需的时间显著短于传统方法。通过显微CT及重建建模确认了牙髓暴露情况。术后24小时，大部分牙髓组织保持了其形态学结构。

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医学

基于新型口堵的鼠牙髓暴露模型的建立及其在牙髓炎研究中的应用

我们介绍了一种在小鼠牙齿上进行直接盖髓的逐步操作方法，用于评估牙髓伤口愈合及修复性牙本质的形成。 体内.

小鼠牙髓直接盖髓模型的建立及其在牙髓创面愈合与修复性牙本质形成评价中的应用

本文介绍了一种在小鼠中局部诱导根尖周炎的实验方案。我们展示了如何在小鼠牙齿上钻孔并暴露其牙髓，以引发局部炎症。同时演示了用于研究该炎症性质的分析方法，如显微CT和组织学分析。...

在小鼠中诱导根尖周炎

本文介绍了一种建立结扎诱导的多颗上颌磨牙小鼠牙周炎模型的方案，该模型可导致更大范围的牙龈组织和骨组织受累，便于后续分析，并减少实验动物的使用量。同时描述了一种类似于人类受试者检测方法的口腔中性粒细胞评估技术。...

用于评估口腔中性粒细胞的稳定的小鼠牙周炎结扎诱导模型

本方案逐步演示了如何从小鼠中提取下颌第一磨牙，为专注于颌骨愈合与再生研究的研究人员提供了一种替代方法。...

小鼠下颌磨牙拔牙窝愈合模型的建立

为了理解乙醇诱导的发育损伤的分子机制，我们建立了一种乙醇暴露的斑马鱼模型，并正在探索乙醇暴露后发生的物理、细胞和遗传改变1。随后，我们试图在此动物模型中寻找潜在的干预措施并快速对其进行测试。...

评估酒精暴露胎儿斑马鱼模型中的致畸变化

一种可用于在生理和病理生理条件下评估治疗化合物的皮肤伤口愈合小鼠模型。...

小鼠伤口愈合模型

一种蛛网膜下腔出血的小鼠模型

改良的落体打击技术是一种简单且经济高效的方法，用于在幼年大鼠中诱导轻度创伤性脑损伤。该新技术可产生具有临床相关性的症状，有助于推进对轻度创伤性脑损伤（mTBI）和脑震荡的研究。...

一种用于幼年大鼠的轻度创伤性脑损伤新模型

本文介绍了不可逆性单侧输尿管梗阻（UUO）的小鼠模型，以及可逆性UUO模型，后者通过将切断的输尿管与膀胱进行吻合以解除输尿管梗阻。这些模型可用于研究肾脏炎症、瘢痕形成以及组织重塑过程。...

一种不可逆与可逆性单侧输尿管梗阻的小鼠模型

建立尿路感染（UTI）模型的能力对于理解细菌致病机制以及推动新型治疗方法的开发至关重要。本研究的目标是展示能够重现并预测人类中观察到的实验结果的小鼠实验性尿路感染模型以及导管相关性尿路感染模型。...

小鼠模型中尿路感染和导管相关尿路感染的建立与表征

学习使用新型口堵建立C57小鼠牙髓暴露模型，用于牙髓炎研究。该方法通过改进固定装置提高手术效率，便于进行组织学分析，为牙髓炎症机制研究提供可靠的体内实验平台。

建立用于牙髓炎研究的新型开口器小鼠牙髓暴露模型

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