Name: 从海兔的神经细胞培养的高分辨率成像生长锥 (视频) | JoVE Journal
Uploaded: 2008-02-20T18:40:00.000+00:00
Duration: 16 min 29 s
Description: 学习Aplysia bag cell神经元培养与高分辨率成像技术，用于研究生长锥运动性和细胞骨架动态。该方法为神经科学和细胞生物学研究提供可靠的实验方案。

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我们感谢Ryan Maneri（Oystercatcher Productions, LLC）对本实验操作的拍摄，以及Rodney McPhail（普渡大学生物科学系）在剪辑解剖视频过程中提供的帮助。Suter实验室的研究工作获得了美国国立卫生研究院（NIH，项目编号R01 NS049233）和普渡大学Bindley生物科学中心向D.M.S.提供的资助支持。

溶液
<ul>
<li>L15-ASW 细胞培养基（1 L） 
<ul>
<li>1 袋 L15 粉末</li>
<li>加入 800 mL 超纯 H2O</li>
<li>NaCl 400 mM</li>
<li>MgSO4         27 mM</li>
<li>MgCl2          28 mM</li>
<li>L-谷氨酰胺   4 mM</li>
<li>庆大霉素    50 µg/mL</li>
<li>HEPES         5 mM</li>
<li>调节 pH 至 7.9</li>
<li>逐滴加入 CaCl2 9.3 mM（若出现沉淀则停止）</li>
<li>用超纯 H2O 定容至 1 L</li>
<li>使用渗透压仪（蒸气压法，Wescor # 5520）检测渗透压（950–1000 mmol/kg）</li>
<li>使用正压过滤装置经 0.22 µm 滤膜过滤（滤器：Millipore SVGV010RS）</li>
<li>4°C 保存，最长一个月</li>
</ul>
</li>
<li>聚-L-赖氨酸（70–150 kD）200 µg/mL 储存液，溶于无菌超纯 H2O，-20oC 保存</li>
<li>0.5 M MgCl2 溶液</li>
</ul>

第1天：Aplysia 腹神经节的解剖
酶解离溶液的制备
<ol>
<li>称取 9-10 mg Dispase 酶（Worthington，货号：LS02111）至一个 Eppendorf 管中</li>
<li>加入 900 µl L15-ASW 培养基和 100 µl 无菌超纯水（H2O）</li>
<li>混匀后置于室温（RT）下</li>
</ol>
腹部神经节的解剖
<ol>
<li>用50 ml注射器吸取0.5 M MgCl2溶液。</li>
<li>从水箱中取出一只动物，操作时动作轻柔，避免引发动物的墨汁防御反应。</li>
<li>将Aplysia侧置于解剖板（泡沫板）上，头端朝右，尾端朝左。</li>
<li>将针头插入动物头部后方，将全部MgCl2溶液注入体腔内。</li>
<li>轻轻揉搓动物，使MgCl2溶液在体腔内均匀分布，静置数分钟，直至动物完全麻醉。</li>
<li>用两根针将动物的头部和尾部固定在解剖板上。</li>
<li>用镊子提起皮肤，用大剪刀沿头尾方向剪开皮肤和肌肉层，形成一个较大的侧向开口。</li>
<li>在刷状卵巢下方找到腹神经节。用镊子夹住腹神经节前方约1 cm处的连接神经，用解剖剪在镊子夹持位置前方以及腹神经节后方将神经剪断。</li>
<li>将神经节放入Dispase溶液中，在22°C条件下于温控水浴中孵育15–16小时。</li>
</ol>
第2天：Aplysia囊泡细胞的铺板
制备多聚赖氨酸包被的盖玻片
<ol>
<li>在流动实验台中，准备三个35 mm的培养皿作为解剖神经节的工作皿，每个培养皿中加入4 ml L15-ASW培养基。消化15.5小时后，将腹神经节从dispase溶液转移至其中一个工作皿中。</li>
<li>使用镊子取出保存在乙醇中的酸清洗#1.5盖玻片（22×22 mm），去除乙醇后，将盖玻片在本生灯火焰上短暂灼烧以灭菌（仅短暂接触火焰，避免塑料熔化！）。待其短暂冷却后，放入培养皿中。</li>
<li>通过在本生灯火焰上弯曲黄色移液枪头（仅短暂加热，避免塑料熔化！）制备弯曲的铺板枪头。</li>
<li>用无菌超纯H2O稀释200 µg/ml的母液，配制适量的20 µg/ml多聚赖氨酸溶液。</li>
<li>每张盖玻片上加入500 µl 20 µg/ml多聚赖氨酸溶液，在室温下孵育20分钟。</li>
<li>每张盖玻片用500 µl无菌超纯H2O洗涤3–5次，每次更换液体。</li>
<li>吸除盖玻片上的水分；每个培养皿中加入4 ml L15-ASW培养基。</li>
</ol>
解离囊状细胞
<ol>
<li>在解剖显微镜下，使用先前用95%乙醇清洗过的解剖剪刀和镊子将腹神经节切成两半（图1第1行）。</li>
<li>在神经节的一半上，于囊细胞簇与半侧神经节细胞之间进行切割（图1第2行），并在囊细胞簇的另一侧去除残留的神经突起（图1第3行）。每次操作仅处理一半神经节；当第一个囊细胞簇的细胞正在铺板时，将另一半保留在培养皿中。</li>
<li>使用两把镊子（或一把镊子和解剖剪刀），通过推开包裹囊细胞簇的结缔组织鞘来释放囊细胞簇。如有需要，可用解剖剪刀剪除结缔组织。操作过程中注意避免过度挤压或频繁触碰囊细胞簇。</li>
<li>当大部分结缔组织被去除后，用预先准备好的弯头黄色移液吸头将囊细胞簇转移至新的操作培养皿中。注意避免囊细胞簇被卡在黄色吸头内部，或滞留在液面与空气交界处。</li>
<li>用黄色吸头反复吹打细胞簇，以分离单个囊细胞。操作时将细胞簇在吸头中反复吸入和推出。起始时使用较低的剪切力，并根据需要逐渐增加力度。始终采用能够分离神经元但又不至于杀死过多细胞的最小作用力。</li>
<li>收集3–5个健康的囊细胞，并将其转移至含有聚赖氨酸包被盖玻片的培养皿中。避免挑取死亡细胞（中心呈黑色或透明状）以及结缔组织碎片。</li>
<li>重复步骤6，将约15–25个活神经元放置在每张盖玻片的中央区域。若同时转移了死亡细胞或碎片，可通过挑取或吹打方式将其从健康细胞周围移除。整个过程对两个细胞簇的操作大约需要2–3小时。</li>
<li>操作完成后，将培养皿置于超净工作台上，室温下静置至少2小时，以使细胞充分贴壁（关闭超净台吹风装置，避免产生不必要的振动）。</li>
<li>将培养皿放入14°C培养箱中过夜，或保存至后续实验使用。生长锥可在4–10小时内形成。</li>
</ol>
<img src="/files/ftp_upload/old/662_2008_2_10_0/image001.jpg" alt="半侧神经节细胞和袋细胞簇在神经通路中的解剖图示。" data-altupdatedat="1787630408000" data-alt="图1. 加州海兔（Aplysia californica）腹神经节示意图。彩色线条指示获取袋细胞簇的切割位置。"> 图1. 加州海兔（Aplysia californica）腹神经节示意图。彩色线条指示获取袋细胞簇的切割位置。

第3天：设置培养室以进行Aplysia囊细胞的活体成像
成像室的组装
<ol>
<li>在进行活细胞成像实验之前，先用低倍显微镜检查囊泡细胞。如果细胞未形成健康的生长锥，需更换新鲜培养基，并在室温下静置1-2小时。</li>
<li>为培养皿提供新鲜的L15-ASW培养基时，使用真空泵吸除约一半（~2 ml）旧培养基，然后每皿加入2 ml新的L15-ASW培养基。注意切勿一次性完全移除所有培养基，以免将细胞从盖玻片上剥离。</li>
<li>进行囊泡细胞成像时，我们将两片盖玻片和两个塑料垫片组装成类似三明治结构的成像室。三明治结构中的上层盖玻片被裁短，以便于更换培养基和试剂。组装过程中，附着囊泡细胞的盖玻片必须始终浸没在L15-ASW培养基中，以防止细胞脱落。</li>
<li>准备成像室时，使用金刚石笔（玻璃切割刀）和直尺，从22×22 mm的#1盖玻片右侧切下约2 mm。</li>
<li>使用1 ml注射器，在较短的盖玻片两侧涂抹高真空脂，然后在每侧贴上塑料垫片。再在两个垫片的顶部涂抹真空脂。</li>
<li>将盖玻片与垫片的组装体翻转，放入含有附着于盖玻片上的囊泡细胞的培养皿中。使用两根棉签的反向末端对齐并轻轻按压，使上层盖玻片牢固粘附在下层盖玻片上。</li>
<li>用镊子轻轻将三明治结构整体从培养皿中取出，确保培养基不泄漏。如有需要，调整两片盖玻片的位置，并用无尘纸（Kimwipe）擦去多余的培养基。将组装好的三明治结构放置在显微镜载物片底座上，并小心使用夹具固定盖子。</li>
<li>用蘸有玻璃清洁剂（使用Sparkle作为玻璃清洁剂）的棉签清洁三明治结构上表面的中心区域。随后用第二根干燥的棉签迅速擦干清洁剂，避免留下条纹。对下层盖玻片进行相同操作。无条纹残留的洁净盖玻片对于高质量成像至关重要。</li>
</ol>
将细胞袋放入显微镜下
由于 Aplysia 袋细胞神经元培养的密度较低，建议使用具备载物台定位功能的显微镜系统，以便于在不同细胞之间切换。在成像实验期间，袋细胞可在室温下长时间置于显微镜载物台上数小时。需定期更换培养基，以防止蒸发。

<ol><li>Forscher, P., Kaczmarek, L. K., Buchanan, J. A., Stephen, S. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cyclic+AMP+induces+changes+in+distribution+and+transport+of+organelles+within+growth+cones+of+Aplysia+bag+cell+neurons%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Neurosci%22%5BJournal%5D)">Cyclic AMP induces changes in distribution and transport of organelles within growth cones of Aplysia bag cell neurons.</a> J. Neurosci. 7, 3600-3611 (1987).</li>
<li>Suter, D. M., Errante, L. D., Belotserkovsky, V., Forscher, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+Ig+superfamily+cell+adhesion+molecule%2C+apCAM%2C+mediates+growth+cone+steering+by+substrate-cytoskeletal+coupling%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Cell.+Biol%22%5BJournal%5D)">The Ig superfamily cell adhesion molecule, apCAM, mediates growth cone steering by substrate-cytoskeletal coupling.</a> J. Cell. Biol. 141, 227-240 (1998).</li>
<li>Schaefer, A. W., Kabir, N., Forscher, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Filopodia+and+actin+arcs+guide+the+assembly+and+transport+of+two+populations+of+microtubules+with+unique+dynamic+parameters+in+neuronal+growth+cones%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Cell.+Biol%22%5BJournal%5D)">Filopodia and actin arcs guide the assembly and transport of two populations of microtubules with unique dynamic parameters in neuronal growth cones.</a> J. Cell. Biol. 158, 139-152 (2002).</li>
<li>Suter, D. M., Schaefer, A. W., Forscher, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Microtubule+dynamics+are+necessary+for+SRC+family+kinase-dependent+growth+cone+steering%5BTitle%5D)+AND+%22Curr.+Biol%22%5BJournal%5D)">Microtubule dynamics are necessary for SRC family kinase-dependent growth cone steering.</a> Curr. Biol. 14, 1194-1199 (2004).</li>
</ol>

无脊椎动物Aplysia的袋细胞神经元提供了一种无血清的神经元细胞培养体系，其中非神经元细胞极少。这些神经元可形成体积较大的生长锥，适用于研究多个重要的细胞生物学问题。袋细胞神经元可在室温下长时间（数小时）进行操作和成像。利用荧光斑点显微技术（FSM），可对F-肌动蛋白和微管的聚合及转运动态的各种参数进行定量分析。结合近期发布的Aplysia基因组信息以及不断优化的表达技术，这些神经元已成为研究神经元生长锥运动与导向的分子和细胞机制的有力模型系统。

<table><tbody><tr><td>#1 玻璃盖玻片 22x22 mm</td><td>工具</td><td>VWR international</td><td>48366067</td><td></td></tr><tr><td>#1.5 玻璃盖玻片 22x22 mm</td><td>工具</td><td>Corning</td><td>2870-22</td><td></td></tr><tr><td>35 mm 培养皿</td><td>工具</td><td>Falcon BD</td><td>353001</td><td></td></tr><tr><td>用于培养基过滤的滤器</td><td>工具</td><td>EMD Millipore</td><td>SVGV010RS</td><td></td></tr><tr><td>高真空润滑脂</td><td>工具</td><td>Dow Corning</td><td>1597418</td><td></td></tr><tr><td>渗透压计</td><td>工具</td><td>Wescor</td><td>5520</td><td></td></tr><tr><td>塑料垫片</td><td>工具</td><td>Small Parts, Inc.</td><td>SHSP-200</td><td></td></tr><tr><td>氯化钙</td><td>试剂</td><td>Fisher Scientific</td><td>C79-500</td><td></td></tr><tr><td>庆大霉素</td><td>试剂</td><td>Invitrogen</td><td>15750-060</td><td></td></tr><tr><td>HEPES</td><td>试剂</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>H4030</td><td></td></tr><tr><td>L15 培养基</td><td>试剂</td><td>Invitrogen</td><td>41300-039</td><td></td></tr><tr><td>L-谷氨酰胺</td><td>试剂</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>G8540</td><td></td></tr><tr><td>氯化镁</td><td>试剂</td><td>Mallinckrodt Baker Inc.</td><td>5958-04</td><td></td></tr><tr><td>硫酸镁</td><td>试剂</td><td>Mallinckrodt Baker Inc.</td><td>6070-12</td><td></td></tr><tr><td>聚-L-赖氨酸（70-150 kD）</td><td>试剂</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>P6282</td><td></td></tr><tr><td>氯化钠</td><td>试剂</td><td>Mallinckrodt Baker Inc.</td><td>7581</td><td></td></tr><tr><td>中性蛋白酶（Dispase）</td><td>试剂</td><td>Worthington Biochemical</td><td>LS02111</td><td></td></tr></tbody></table>

从aplysia中获取神经元细胞培养物用于生长锥的高分辨率成像

Neuronal Cell Cultures from Aplysia for High-Resolution Imaging of Growth Cones

神经元生长锥是轴突末端高度可移动的结构，能够感知环境中的导向信号，并将这些信息转化为定向运动，从而导向适当的目标细胞。为了深入理解导向信息如何从细胞表面传递至下方动态的细胞骨架网络，需要一个适用于高时空分辨率下活细胞成像的蛋白质动态研究模型系统。典型的脊椎动物生长锥体积过小，难以对F-actin和微管动力学进行定量分析。加州海兔（Aplysia californica）的神经元大小是脊椎动物神经元的5-10倍，可在室温下轻松培养，且细胞极为坚固，适合显微操作和生物物理测量。其生长锥具有明确划分的胞质区域以及结构特征清晰的细胞骨架系统。可通过显微注射将多种探针导入神经元胞体，用于研究生长锥的运动性与导向机制。本实验方案中，我们演示了腹神经节的解剖、袋状细胞神经元的培养以及用于生长锥活细胞成像的成像腔室的建立方法。

关键词：生长锥，神经元，Aplysia californica，活细胞成像，微管动力学，F-actin，袋状细胞，腹神经节，细胞骨架，显微注射

加州海兔（Aplysia californica）神经元在培养中会形成较大的生长锥，非常适合对生长锥运动性和导向性进行高分辨率成像。本文介绍了一种用于分离和培养加州海兔囊状细胞神经元，以及建立活细胞成像腔室的实验方案。

从Aplysia中获取神经元细胞培养物用于生长锥的高分辨率成像

神经元生长锥是轴突末端高度可移动的结构，能够感知环境中的导向信号，并将这些信息转导……

在模拟实验室中，我们培养来自海洋软体动物加州黑腹菌（Plegia California car）的背细胞神经元。这些神经元能够延伸出非常大的生长锥，使其成为研究生长锥运动性和导向性机制的理想模型系统，尤其适用于细胞骨架动态变化的高分辨率分析。在本视频中，我们将演示如何进行加州黑腹菌的解剖以及背细胞的培养。大家好，我是来自普渡大学生物科学系的Daniel Suter。今天我们将向您展示分离培养和成像飞蝗背部神经元的操作方法。来自飞蝗（C. her apia CAA）的神经元已被广泛用于学习与记忆的研究。由于Apia的神经系统结构简单，且具有适合进行电生理学研究的大神经元。在我们的实验室中，我们选用这些神经元，因为它们的生长锥较大，非常适合对与生长锥运动性和导向性相关的蛋白质动态进行高分辨率成像。完整的实验流程包括以下步骤。第一天，处死动物并进行解剖以获取腹神经节。第二天，制备培养板。解剖背侧细胞簇，并将单个神经元接种至培养板中。第三天，将构建用于细胞延时成像的成像室，并通过微分干涉差（DIC）显微镜进行演示和讲解。今天的操作由我实验室的研究生 iTune Lee 负责。她将向您展示如何制备背根神经节神经元。让我们开始。背侧细胞神经元属于无翼海螺神经系统腹部神经节的一部分，因此我们将分离出整个腹部神经节用于酶消化。随后，我们将从神经节其余部分中分离出两簇背侧细胞簇。在此阶段，腹神经节将在该二相溶液中消化15至16小时，以松解结缔组织。现在我们需要准备一个大的60毫升注射器，装入0.5摩尔的氯化镁，用于处死动物，并准备好解剖工具，包括一把镊子、一把解剖剪和一把大剪刀。我们所使用的加州海兔（Aplysia californica）采自加利福尼亚海岸，体重约为150克。我们将动物保存在龙虾养殖箱中，最长三到四周。将氯化镁溶液注射到动物头部附近的体腔内。揉搓动物有助于溶液扩散，并防止其收缩。使用注射器针头将动物的头部和尾部固定在泡沫板上。用一把镊子提起体壁肌肉，用大剪刀剪开体腔。然后沿身体一侧从头到尾剪开体壁肌肉，并将肌肉用针固定在板上。接下来，需在卵巢下方找到腹神经节，卵巢是一种呈刷状的淡黄色器官。可由此定位腹神经节。使用解剖剪在神经节的前侧和后侧切断神经，从而将神经节分离。然后将神经节转移至含有1毫升置换溶液的试管中，并置于22°C水浴中孵育15.5小时。在此孵育过程中，结缔组织将逐渐松解，直至背侧细胞簇可被轻松去除。在开始背侧细胞培养之前，我们将预先准备好用于培养神经元的盖玻片。我们将背根神经节细胞接种于35毫米培养皿中预先涂有层粘连蛋白的盖玻片上进行培养。随后将细胞浸没于L-15 ASW培养基中，该培养基为高盐培养基。对于此类细胞，我们通常每只动物准备8至10个含盖玻片的培养皿。现在让我们讨论用于接种囊状细胞神经元的工具。解剖囊状细胞簇时，我们需要三个未加盖玻片的浅色培养皿，内含 L-15 A SW 溶液，以及经酒精消毒的精细镊子和剪刀，还需一个连接至 P-20 移液器的弯头黄色吸头。该黄色吸头需用镊子夹住，在本生灯火焰上快速通过使其灼烧，并趁热弯曲成型。注意不要压碎弯曲部分，否则稍后袋细胞簇可能会卡在那里。瘫痪期袋细胞的解剖和接种在室温下解剖显微镜下进行。现在，15.5 小时的酶消化孵育已经结束，我们可以将腹神经节从培养皿转移至含有 L-15 A SW 培养基的工作皿中。在展示如何分离囊泡细胞之前，我们先来看一下示意图。为了清楚观察腹神经节的解剖过程，我们首先从腹神经节的中心进行切割。如您从这条线可以看到的那样，我们在背部的前方和后方各做两个切口，从而形成如您在此处所见的簇状结构。现在通过体视显微镜观察，可以看到腹神经节已被从中央切断，此时可见在后细胞簇的前方和后方各有一处切口。接着使用镊子找到结缔组织上的一个开口，轻轻下压包裹细胞簇的结缔组织鞘。尽可能用解剖剪将结缔组织完整地从细胞簇上剥离下来。但需小心避免损伤胞囊细胞簇。用弯头吸头吸取适量溶液，轻柔地将胞囊细胞簇转移至另一工作培养皿中。随后用黄色吸头轻柔吹打胞囊细胞簇，使单个胞囊细胞从簇中分离。 为此，将细胞团吸入移液枪头中，并将其推出，注意不要产生气泡。将活细胞从细胞团中转移至含有多聚赖氨酸包被盖玻片的培养皿中。死细胞中心呈黑色，而活细胞则呈白色。将细胞放置在盖玻片中央以用于显微镜观察非常重要，同时应尽快清除细胞碎片和死细胞。通过挑取不需要的物质或将其吹走，健康的细胞会迅速贴附到多聚赖氨酸包被的培养板上。每张盖玻片上约放置15至25个细胞。当第一个细胞簇的所有细胞都接种完毕后，去除第二个细胞簇的结缔组织，并继续进行相同的细胞接种操作。所有培养板完成后，将其置于室温下的实验台面上静置至少两小时，以确保细胞充分贴壁，同时避免任何振动。随后将培养皿放置于泡沫塑料或塑料托盘上，转移至14摄氏度的培养箱中，以备后续使用。我们通常在接种后一到两天内对神经突生长锥进行成像。为了对神经元生长锥动态进行活细胞成像，我们使用两个由塑料间隔物隔开的盖玻片制作一个小型成像室。神经元附着在下方的盖玻片上。使用金刚石笔将上方的盖玻片剪短，以便于更换培养基。将盖玻片夹心结构置于显微镜载物台上，放入定制的支架中，以固定到显微镜上。使用载物台高真空润滑脂固定腔室组件，防止培养基泄漏。用小型注射器将高真空润滑脂涂抹在顶部盖玻片上，然后用镊子放置隔片，再在上方涂上一些真空润滑脂。然后我们拿起整个组件，将其翻转，并轻轻按压到仍浸没在培养皿中细胞上的盖玻片上。使用棉签对齐盖玻片，并小心按压顶部的盖玻片，避免其破裂。随后，我们小心地将该“三明治”结构从培养皿中取出，擦去多余的培养基，然后将其放置于支架的底座上。将样本夹心结构放入 holder 时，应避免因施加压力而压裂盖玻片。使用棉签蘸取 sparkle 玻璃清洁剂清洁两片盖玻片，我们更倾向于使用 sparkle，因为它在玻璃上留下的条痕较少。从盖玻片中心开始，以环形轨迹进行清洁，并立即用干燥的棉签擦干，以避免产生条痕。洁净的盖玻片对于高质量成像至关重要，尤其是在使用微分干涉差（DIC）光学系统时。背根神经节（Plegia back cell）神经元培养物为低密度培养，因此若显微镜具备载物台定位功能，将有助于在不同细胞之间快速切换观察。现在我们可以开始观察生长锥的形态及其运动性了。我们利用高分辨率微分干涉差（DIC）延时成像技术，对形态和运动性上的生长过程进行可视化观察。DIC成像技术适用于此应用，因为它能够提供生长锥结构的表面视图。在此60倍DIC延时录像中，可以清晰地观察到典型生长锥的三个区域。外周区域由富含肌动蛋白的片状伪足和丝状伪足构成，过渡区以皱褶活动为特征，中心区域主要包含微管和细胞器。为了研究生长锥导向的机制，我们开发了限制性微珠相互作用（RBI）实验，在该实验中。涂有艺术蛋白的微珠被用来模拟细胞靶标底物。在微分干涉差时程录像中，使用显微操作针将微珠放置于生长锥的外周区域。可以观察到中心区域出现逆行移动的波纹，显示出逆行效应与流动现象。细胞器在微管上移动。在初始阶段无明显变化之后，可观察到中心区域边界突然向受约束的微珠方向前移。伴随前缘生长及张力增加，还可沿微珠相互作用轴特别观察到流动衰减和微管延伸的附加效应。为了分析生长锥中的细胞骨架动态，我们采用荧光斑点显微技术。将荧光标记的微管蛋白和肌动蛋白探针显微注射到神经元胞体内，并采集延时成像视频。在细胞骨架的动态运动中，红色所示部分在前沿组装，随后通过逆向流沿边缘向后转运，并在过渡区被回收。动态微管（绿色显示）通过组装和易位行为的结合，探索了细胞周边的生长情况。较低程度的标记产生了斑点状图案，使我们能够对细胞骨架动态的各种参数进行定量分析。我们已经向您展示了如何进行背根神经节细胞的解剖、培养和成像，如果您希望对神经元生长锥进行高分辨率成像的话。这确实是值得使用的系统，因为其生长锥体积较大，细胞质区域明确，且细胞骨架已有充分描述。就此结束。感谢观看，祝您的实验顺利成功。

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