2024年5月10日
本文提供了一种人食管类器官及其气液界面培养的实验方案。食管类器官的气液界面培养可用于研究细胞因子对食管上皮屏障功能的影响。
我们正在研究嗜酸性粒细胞性食管炎的病理生理机制,试图揭示引发并促进EoE慢性炎症过程的炎症级联反应。通过聚焦于上皮屏障功能障碍,并鉴定出参与疾病发病机制的新型免疫介质,进而推动了针对这些免疫介质的治疗性抗体的获批。我们已鉴定出IL-20亚家族细胞因子是一类通过MAP激酶通路损害上皮细胞分化与角化过程的炎症介质,从而导致上皮屏障功能受损。
首先,取浸泡在无血清角质形成细胞培养基(KSFM)中的食管活检样本。将KSFM替换为1毫升Dispase 1,室温下孵育活检样本10分钟。随后,使用1,000微升移液器吸取Dispase,注意不要触碰活检样本或细胞碎片沉淀。
然后用DPBS冲洗活检组织。将活检组织离心后,使用1,000微升移液器吸除上清液。接着向活检组织中加入500微升胰蛋白酶-EDTA溶液,在37°C下以800 RPM振荡孵育10分钟。
然后反复吹打直至获得单细胞悬液。使用结核菌素注射器的橡胶活塞头,将细胞通过70微米的细胞滤器过滤。随后,用2至4毫升大豆胰蛋白酶抑制剂冲洗滤器。
接下来,将细胞通过带有卡扣盖的35微米细胞筛,过滤至一个5毫升圆底聚苯乙烯管中。离心细胞悬液后,使用1,000微升移液器吸除上清液。将细胞沉淀重悬于基底膜提取物水凝胶基质中,并在预热的悬浮细胞培养板中形成40微升的液滴。
然后,将培养板在37摄氏度下无培养基孵育20至30分钟,以确保基底膜提取物液滴的凝固。加入预热的KSFM培养基,并补充10 µM Y-27632。在第9天,可观察到类器官中心出现洋葱样多层结构及逐渐增大的角化核心。
首先,取食管活检组织中分离的细胞,将其重悬于4毫升含10微摩尔Y-27632的KSFM培养基中。将细胞转移至T25细胞培养瓶中。待角质形成细胞形成60%至80%融合度的单层细胞后,传代P1代细胞。
然后将P2代原代角质形成细胞接种到Transwell小室中,用于气液界面培养。在第7天进行气液界面提升时,将下室中的培养基更换为高钙KSFM,并吸走上室中的培养基。
本文介绍了一种培养人食管类器官并利用气液界面培养来研究细胞因子对食管上皮屏障影响的实验方案。
三维食管类器官和气液界面模型能够对嗜酸性粒细胞性食管炎中上皮屏障功能障碍的机制进行去风险化研究。这些源自患者的系统为目标靶点验证和信号通路解析提供了可预测的信心,支持从发现到临床前研究的转化连续性。通过阐明细胞因子和信号通路对屏障完整性的影晌,这些模型的应用推动了研发组合决策的进展。
这些模型通过在患者来源的系统中实现假设验证、屏障功能的定量评估以及通路分析,架起了早期发现与临床前研究之间的桥梁。