2024年2月23日
本实验采用分子对接结合细胞热迁移实验的方法,用于预测并验证小分子与蛋白质靶标之间的相互作用。
我们的研究聚焦于蛋白质靶点以及小分子化合物的预测与验证。本实验采用分子对接结合类似热迁移实验(TSA)的方法,用于预测和验证小分子与蛋白质靶点之间的相互作用。TSA实验步骤较为复杂,操作过程中任何步骤的误差都可能对结果产生重大影响。
本实验方案将预测与验证相结合,有效减少了时间和经济成本。此外,实验所需的仪器和材料易于获取。最后,待检测的TSA样品易于制备和测试,从而确保了样品的可重复性。
首先,下载去氢木香内酯(xanthatin)和KEAP1的晶体结构。处理结构后,进入“任务”(Tasks)并选择“配体对接”(Ligand Docking)选项。从文件中选择“受体网格来源”(Receptor Grid As),然后点击“浏览”(Browse)。
然后单击桌面。打开分子对接文件夹,双击 glide-grid 2FLU 文件。选择 glide-grid 2FLU。
zip 文件,然后单击“打开”。接着单击“使用来自文件的配体”,再单击“浏览”并选择桌面。
选择分子对接文件夹并打开 ligprep_1 文件。然后,选择 ligprep_1-out.maegz 文件,然后单击打开。
进入访问设置并选择精度为 XP 选项。将作业名称修改为 glide.XP_2FLU,然后点击运行。
要查看对接结果,请点击“文件”并选择“导入结构”选项。导航至桌面并打开分子对接文件夹,然后选择 glide-doc_XP_2FLU 文件。
选择 glide-doc_XP1_pv.maegz 文件,然后单击打开。接着在工作区中双击圆点以选择配体。
选择 sitemap_1_protein。点击表格并滑动至最右侧以查看对接得分。要可视化二维结果,请选择 sitemap_1_protein,操作方式如前所述。
单击配体相互作用。选择“视图”并勾选“LID图例”框,然后单击“文件”。
选择“保存截图”,宽度输入 6,000。取消勾选透明背景选项,然后点击“确定”。将文件保存到桌面,命名为 2D-xanthatin-2FLU。
分子对接分析预测了蛇床子素与KEAP1蛋白之间的相互作用。首先,将未处理的264.7细胞接种至100毫米培养皿中,加入6毫升DM-EM培养基,在37摄氏度、95%湿度和5%二氧化碳条件下培养。待细胞融合度达到80%时,吸除旧培养基。
随后用 2 毫升预热至室温的 PBS 洗涤细胞两次。接着,向每个含细胞的培养皿中加入 2 毫升 PBS 并混匀。将细胞收集至两个 1.5 毫升微量离心管中,于室温下以 377 × g 离心 3 分钟。
弃去上清液后,将细胞重悬于 2 毫升 PBS 中。将微量离心管置于液氮中冷冻至出现白色固体,立即在 37 摄氏度水浴中解冻。在 4 摄氏度条件下,以 12,000 G 离心 10 分钟。
接下来,取两支微量离心管,一支加入100微摩尔的黄杞醇,另一支加入等体积的二甲基亚砜。向每支离心管中加入450微升离心后的上清液,并在37摄氏度下孵育30分钟。然后从每支微量离心管中转移60微升上清液至14个PCR管中。
将试管在不同温度下同时加热三分钟,每个温度放置两支PCR管。然后将试管放入离心机中。接着从每支试管中吸取48微升上清液,加入新的1.5毫升微量离心管中。
向每个离心管中加入 12 微升 SDS-PAGE 蛋白上样缓冲液。将涡旋混匀后的样品置于 100 摄氏度的水浴中加热 5 分钟。首先,制备 SDS-PAGE 凝胶。
离心已解冻的蛋白标记物和制备好的细胞热迁移实验样品。取2.5 µL标记物加入第一孔,其余各孔每孔加入20 µL样品。随后以80伏电压电泳运行凝胶。
接下来,向烧杯中加入850毫升超纯水、100毫升无水乙醇和50毫升快速转移缓冲液,充分搅拌。根据凝胶的大小裁剪聚偏二氟乙烯(PVDF)膜并做好标记。然后将其浸入甲醇中30秒以活化。
将转膜夹、海绵垫和三层转膜滤纸放入盛有转膜缓冲液的托盘中。电泳完成后,倒出电泳装置中的电泳液,取出玻璃板。用塑料刀小心取出凝胶,并进行切割,以清晰观察蛋白 Marker 和目标蛋白。
在转膜液中洗涤凝胶后,将其平铺在滤纸上。将活化的PVDF膜浸入转移缓冲液中,用镊子夹住标记面,将膜覆盖在凝胶的背面。
然后将组装好的转膜装置放入转膜槽中。向转膜夹中加入剩余的转膜液。调节电流和时间,按下运行键以在室温下开始转膜。
现在向孵育盒中加入6毫升含5% BSA的TBST溶液。转膜完成后,夹住标记一侧将PVDF膜从装置中取出,并放入孵育盒中。从孵育盒中移除BSA溶液后,加入6毫升一抗溶液。
将孵育盒放入装有冰袋的泡沫盒中,4℃摇床孵育过夜。次日,收集一抗溶液至离心管中,用6毫升TBST溶液洗涤膜。随后,向孵育盒中加入6毫升二抗溶液。
孵育结束后,收集二抗,并用 TBST 按前述方法洗涤膜五次。等体积混合化学发光试剂 A 和 B。打开凝胶成像系统,点击“Samples”,检查校准状态,并等待校准完成。
然后点击标记物并检查校准情况。现在用镊子夹起试纸条的标记物一侧,完全浸入化学发光试剂溶液中。夹住标记物的一侧,将试纸条正面朝下放入成像仪中,并关闭成像仪的盖子。
将曝光时间设置为1秒,然后点击“Capture”(采集)。点击“Save”(保存)。为图像命名,并将其保存为TIFF文件。
细胞热迁移实验表明,在48至57摄氏度的温度范围内,与二甲基亚砜组相比,黄杞素显著改变了KEAP1蛋白的热稳定性。
本研究介绍了一种将分子对接与细胞热迁移实验(TSA)相结合的方法,用于预测并验证小分子与蛋白质靶标之间的相互作用。该方案旨在简化实验流程,提高可重复性,并降低研究成本。
将分子对接与细胞热迁移实验(CETSA)相结合,可实现对小分子-蛋白质相互作用的快速、低成本预测与验证,直接支持早期靶点确证。该联合工作流程在靶点筛选与优先级排序的关键节点上提高了预测的可信度,减少了作用机制的不确定性,优化了项目组合推进的决策过程。对于生物制药团队而言,该方法在发现阶段的研发管线中获取可靠且可重复的直接靶点结合证据方面具有重要意义。
这种整合方法连接了计算预测与实验验证,使其处于早期发现、先导物识别和临床前研究的交汇点。