2024年3月22日
结合液相色谱-高分辨质谱法的13C6-葡萄糖标记方法具有广泛适用性,为今后研究药用植物中次生代谢物合成所涉及的主要器官和代谢途径,以及次生代谢物的综合利用奠定了基础。
我们的目标是设计一种通用的三步法,用于鉴定药用植物中负责产生病理性代谢物的器官。该方法结合了特定的6-葡萄糖标记、液相色谱-质谱联用技术(LC-MS)以及疾病模型,提供一种经济且可行的方法,以确定这些重要化合物的合成部位。
近期的研究进展主要集中在代谢物动态、蛋白质定量以及复杂生物基质的探索。多模式质谱分析结合核磁共振、光谱学、生物信息学,以及数据分析工具,可推动化学同位素标记技术的发展。本实验的主要挑战在于基质效应。
样品中其他元素或化合物的信号可能会干扰碳同位素的精确测定,导致产生可能扭曲结果的测量效应。我们的研究结果为多项新的科学探索开辟了途径,包括代谢合成机制、基因调控、环境因素影响、器官间物质转运以及农业实践。首先,将1.26克霍格兰粉和0.945克硝酸钙溶于4升水中。
将清洗后的两年生 PPY 幼苗浸入 1 × 4 标准浓度的霍格兰营养液中,持续三天。接着,将 0.2 克碳同位素 13 葡萄糖粉末加入含有 100 毫升纯化水的烧杯中。然后设置水培箱和氧气泵。
设置四个处理组,第一个为不饲喂处理,第二个为叶片饲喂处理,第三个为根茎饲喂处理,第四个为茎部切口饲喂处理。处理组1和处理组2的幼苗均在常规霍格兰营养液中培养。在处理组2的叶片上,分别于早晨、下午和晚上各喷施一次5毫升0.2%碳同位素¹³C标记的葡萄糖溶液。
对于处理组3和4,将幼苗转移至含有0.2%碳同位素13葡萄糖的霍格兰营养液中。对于处理组4,使用解剖刀从茎中部切断,保持维管束完整。让幼苗标记三天,每1.5天更换一次营养液。
标记完成后,彻底清洗收集的植物器官以去除表面杂质。将各处理组的叶片、茎、根茎和根分别收集,并将收集的样品放入相应的信封中。
将标记好的信封放入电热恒温鼓风干燥箱中。使用全自动样品快速研磨仪,将干燥的样品研磨成细粉。称取每种样品粉末30毫克,转移至含有2毫升75%乙醇水溶液的离心管中。
使用数控超声波清洗器在 25 摄氏度条件下进行 20 分钟的超声提取。最后一次提取完成后,将所有溶液合并。称取三份平行样品。
接下来,将氮气干燥后的样品溶解于色谱级甲醇中,定容至1毫升。最后,在进行质谱分析前,通过0.22微米的有机相滤膜过滤样品。处理组3和处理组4的碳13与碳12同位素比值明显高于处理组2。
本研究提出了一种用于鉴定药用植物中负责产生次生代谢物器官的新方法。通过将13C6-葡萄糖标记与液相色谱-高分辨质谱联用,旨在加深对代谢物合成途径的理解。
准确鉴定负责次生代谢物合成的植物初生器官,对于降低天然产物药物研发中靶点选择的风险并优化资源分配至关重要。将13C6-葡萄糖标记与液相色谱-质谱联用(LC-MS)相结合,可实现对生物合成途径的精确定位,从而提高对特定器官代谢物生成的预测可靠性。该方法增强了植物源治疗药物从早期发现到临床前评价阶段的转化连续性。
该方法将同位素标记与液相色谱-质谱分析技术应用于植物源药物候选物早期发现与先导化合物鉴定的交汇环节。