Name: 使用 κ-角叉菜胶亚微凝胶培养基对组织样结构进行嵌入式生物打印 (视频) | JoVE Journal
Uploaded: 2024-05-03T14:40:00.000+00:00
Duration: 4 min 58 s
Description: 了解使用κ-角叉菜胶亚微凝胶悬浮浴进行高保真嵌入式生物打印的方法。该技术通过机械研磨制备均匀生物相容性微凝胶，实现565纳米粒径，可精确构建心脏及食管样等仿生组织结构，显著提升组织工程应用中的打印分辨率与保真度。

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

本研究得到宁波市自然科学基金（2022J121，2023J159）、宁波市自然科学基金重点项目（2021J256）、聚合物分子工程国家重点实验室（复旦大学）开放基金（K2024-35）以及中国浙江省动脉粥样硬化疾病精准医学重点实验室（2022E10026）的资助。感谢宁波大学医学部核心设施提供的技术支持。

1. 准备 κ κ-卡拉胶亚微凝胶悬浮液浴
<ol>
	<li>制备500 mL的 κ-卡拉胶悬浮液浴（0.35% 质量/体积），通过加入 1.75 g 的 κ 将κ-卡拉胶粉末加入1,000 mL玻璃瓶中的500 mL磷酸盐缓冲液（PBS，pH 7.4）溶液中。</li>
	<li>将一根70 mm的磁力搅拌子放入玻璃瓶中，以搅拌水相混合物。拧紧玻璃瓶盖，然后将其松开半圈。</li>
	<li>将玻璃瓶置于70 °C水浴中加热。开启磁力搅拌器，转速调至300 rpm，放入玻璃瓶，持续搅拌直至聚合物完全溶解。</li>
	<li>取另一个玻璃瓶，放入高压灭菌器中，在121 °C下灭菌30分钟。</li>
	<li>当高压灭菌器冷却至80 °C后，将瓶子从灭菌器中取出，并转移至超净工作台进行后续操作。</li>
	<li>过滤完全溶解的溶液 κ使用0.22 µm滤器将κ-卡拉胶溶液注入已灭菌的玻璃瓶中。 
	注意：趁溶液未冷却时迅速进行过滤，以防止 κ-防止κ-卡拉胶在冷却过程中堵塞滤器。</li>
	<li>储存 κ在4 °C下使用κ-卡拉胶溶液诱导阳离子交联凝胶化反应，持续12小时。</li>
	<li>机械研磨 κ使用60 mm磁力搅拌器，在25 °C下以1200 rpm的搅拌速度搅拌-carrageenan水凝胶，直至其完全转变为液态，耗时约60分钟。 
	注意：储存 κ在25–37 °C范围内使用κ-卡拉胶水凝胶，以避免在低温下发生凝胶化或在高温下溶解。</li>
</ol>
2. 明胶甲基丙烯酸酯/丝素蛋白甲基丙烯酸酯复合生物墨水的制备
<ol>
	<li>通过将10% (wt/vol) 甲基丙烯酰化明胶（GelMA）和6% (wt/vol) 甲基丙烯酰化丝素蛋白（SFMA）溶于PBS溶液（pH 7.4）中，制备复合生物墨水。分别称取2.0 g GelMA和1.2 g SFMA粉末。</li>
	<li>将粉末缓慢加入两个50 mL离心管中，再分别向每个50 mL离心管中加入10 mL PBS溶液。</li>
	<li>向每个离心管中放入一个10 mm磁力搅拌子，在45 °C水浴中持续搅拌并加热，使GelMA和SFMA粉末完全溶解，约需30分钟。</li>
	<li>在45 °C下持续搅拌的同时，将GelMA和SFMA溶液等体积混合。使用孔径为100 µm的滤膜过滤复合生物墨水。</li>
	<li>将复合GelMA/SFMA生物墨水置于生物安全柜中，通过紫外照射灭菌12小时。 
	注意：应立即配制并使用生物墨水，以防止SFMA通过自组装发生过早凝胶化。</li>
</ol>
3. 流变学表征 κ κ-卡拉胶亚微凝胶悬浮液浴
<ol>
	<li>启动并准备与流变学相关的设备。
	<ol>
		<li>打开空气压缩机并运行30分钟，确保压力达到30 psi。通过逆时针旋转拉杆松开轴承夹具。安装下方黑色盖板，并顺时针旋转仪器顶部的旋钮轴。</li>
		<li>开启流变仪电源，使其完成初始化。打开循环水开关，使温度降至15 °C。</li>
		<li>打开流变仪控制软件，建立在线连接。</li>
	</ol>
	</li>
	<li>校准流变仪并安装平行板几何夹具。
	<ol>
		<li>在控制软件中执行仪器校准，主要包括调整校准仪器的惯性路径。将直径为40 mm的平行板几何夹具安装至拉杆末端。按住“Lock”按钮3秒，使电机轴移动至初始位置，以确保几何夹具安装位置一致。</li>
		<li>在控制软件中选择Calibrate Manager，随后依次点击Inertia, Friction Calibration和Rotational Mapping，以完成对平行板几何夹具的校准。</li>
	</ol>
	</li>
	<li>通过执行标准的间隙归零程序，将流变仪的间隙高度归零，以确保测量精度。</li>
	<li>设置实验步骤，包括剪切速率范围为0.01至1000 1/s的流动扫描实验、在10 rad/s频率下应变范围为0.1%至100%的振幅扫描实验、持续60秒并在10 rad/s频率下交替施加1%和100%应变的多步振荡时间扫描实验，以及持续120秒并在0.1 1/s和10 1/s之间交替剪切速率的多步Peak Hold扫描实验。</li>
	<li>将2 mL的0.35% κ-卡拉胶悬浮液滴加到流变仪的帕尔帖温控板上。&#160;</li>
	<li>将几何夹具间隙设定为510 μm，并清除夹具边缘多余的溢出样品。&#160;将样品间隙设为500 µm，使样品略微超出夹具边缘。</li>
	<li>在实验设计选项中选择Flow Ramp，进行流动实验。
	<ol>
		<li>在实验设计中选择Flow Ramp测试。设置剪切速率范围为0.001至10 1/s，温度为25 °C。</li>
		<li>对新添加的样品执行步骤3.5及流动扫描实验。</li>
	</ol>
	</li>
	<li>执行循环Peak Hold测试，以评估材料的恢复性能。
	<ol>
		<li>在实验设计中选择Peak Hold扫描，设置5次连续实验，每次持续120秒，温度为25 °C。</li>
		<li>将第一、第三和第五步的剪切速率设为0.01 1/s，第二和第四步设为10 1/s。</li>
		<li>添加2 mL新样品。执行步骤3.5及循环恢复测试。</li>
	</ol>
	</li>
	<li>进行黏弹性分析，以评估κ-卡拉胶悬浮液体系可能发生的凝胶-溶胶转变。
	<ol>
		<li>在实验设计中选择Amplitude Sweep测试。设置振荡应变范围为0.1%至100%，温度为25 °C。点击Start，对新添加的样品执行振幅扫描实验。</li>
	</ol>
	</li>
	<li>进行交替应变分析，以评估材料的弹性恢复性能。
	<ol>
		<li>在实验设计中选择Oscillation Time Sweep，设置5次连续实验，每次持续60秒，温度为25 °C。</li>
		<li>将第一、第三和第五步的应变设为1%，第二和第四步设为100%。</li>
		<li>添加2 mL新样品。执行步骤3.5及连续循环恢复测试。 
		注：每次实验测试后需清洁几何夹具板和帕尔帖温控板，并添加2 mL新样品。</li>
	</ol>
	</li>
</ol>
4. 使用定制的微挤出式生物打印机打印仿生水凝胶支架
<ol>
	<li>使用3D图形软件设计STL格式的立方体，并从3D数据库（www.thingiverse.com；https://3d.nih.gov/.）下载类组织模型。&#8203;
	<ol>
		<li>将STL格式的模型导入PANGO软件并输入打印参数。设置模型在三维空间中的具体X、Y、Z坐标，输入以毫米（mm）为单位的模型预期缩放尺寸，调整物体在X、Y、Z轴上的尺寸和缩放比例，并根据需要调整模型在空间中的旋转角度。</li>
		<li>将估计的纤维直径（大多数生物墨水通常为200–500 µm）输入层厚参数栏，以确定每层在Z轴方向的厚度。根据预期的线条厚度设定打印速度（约为10–90 mm/s），并将填充密度设为30%–80%。</li>
		<li>将最终参数导出为G代码并保存至SD卡。</li>
	</ol>
	</li>
	<li>运行生物打印机和微挤出泵。
	<ol>
		<li>打开微挤出泵控制器，选择相应容积的注射器（5 mL），并将挤出速率设置为0.08 mL/min，挤出时间根据所需打印时间确定，打印时间通过将水凝胶体积除以挤出速率计算得出。</li>
		<li>将内径为210 µm的针头安装到注射器上，并插入生物打印设备的注射器插槽中。</li>
		<li>调节注射器控制器，确保注射器的柱塞与螺杆紧密接触。</li>
		<li>将3 mL悬浮液加入35 mm细胞培养皿中。根据编码设置将培养皿放置于平台，确认打印头位于培养皿底部上方1 mm处。 
		注意：在打印过程中，需进行预测试以确保打印平台上各培养皿位置的准确性。</li>
		<li>将包含代码的SD卡插入3D生物打印机，激活代码文件，启动生物打印机，然后点击 开始 控制器上的按钮。</li>
	</ol>
	</li>
	<li>构建体的处理
	<ol>
		<li>将打印好的结构暴露于405 nm蓝光下照射1分钟，以启动光交联。</li>
		<li>移除 κ使用1 mL移液器加入-卡拉胶凝胶，随后加入3 mL磷酸盐缓冲液（PBS，pH 7.4）洗涤并弃去。重复此步骤以实现充分洗涤。 
		注意：清洗过程应轻柔操作，以避免损坏打印的结构。</li>
	</ol>
	</li>
</ol>
5. 食管肌层类似物的嵌入式3D生物打印
<ol>
	<li>培养兔食管平滑肌细胞（eSMCs）。
	<ol>
		<li>在T75培养瓶中以2 x 10⁶细胞接种启动培养6 使用含10%胎牛血清和1%青霉素/链霉素的15 mL DMEM培养基培养细胞。</li>
		<li>将 eSMCs 置于 37 °C、5% CO₂ 的湿润环境中培养2 并置于95%空气环境中培养至80%汇合度。</li>
	</ol>
	</li>
	<li>食管肌层生物墨水的制备
	<ol>
		<li>细胞汇合后，吸除培养基，并用 5 mL 1x PBS 洗涤 eSMCs。</li>
		<li>向培养瓶中加入 2 mL 0.2% 胰蛋白酶-EDTA，孵育 2 分钟以消化细胞。轻敲培养瓶使细胞从瓶壁脱落。</li>
		<li>加入2 mL DMEM终止消化，将细胞悬液转移至15 mL离心管中。取10 µL细胞悬液，使用细胞计数仪测定细胞密度。</li>
		<li>以 675 x g 离心 g 3分钟，小心吸除上清液，将细胞沉淀重悬于复合GelMA/SFMA生物墨水（按步骤2.1制备）中。调整终浓度，使细胞密度达到10 × 106 细胞/mL，从而优化后续3D生物打印应用的条件。</li>
	</ol>
	</li>
	<li>3D 生物打印机及相关材料的准备
	<ol>
		<li>在标准灭菌条件下（121 °C，30 分钟）对关键打印仪器进行高压灭菌，包括注射器针头、镊子、磁力搅拌器和1000 mL硅酸盐玻璃瓶，以确保打印过程的无菌环境。</li>
		<li>将生物打印机置于生物安全柜内，并使用紫外线（UV）照射30分钟进行灭菌，以维持无菌环境。</li>
		<li>制备 50 mL 无菌的 κ-κ-角叉菜胶和5 mL无菌GelMA/SFMA复合生物墨水，分别如步骤1和步骤2所述。</li>
		<li>设计模型，设定所需参数，并按照步骤4.1所述准备生物打印机。</li>
	</ol>
	</li>
	<li>生物打印过程的启动
	<ol>
		<li>执行步骤4.2和4.3中所述操作，以生物打印三维食管肌层，随后进行PBS洗涤并更换。</li>
		<li>在整个打印过程中采用无菌技术进行细胞打印，以最大限度降低打印结构中细胞污染的风险。</li>
	</ol>
	</li>
	<li>打印后细胞培养基更换
	<ol>
		<li>小心吸除 PBS，替换为 3 mL 添加了 10% 胎牛血清和 1% 青霉素/链霉素的 DMEM 培养基。确保打印的结构完全浸没在培养基中，以提供最佳的细胞生长条件。</li>
		<li>将含有打印结构的细胞培养皿置于37 °C、5% CO₂的培养箱中孵育2每天更换新鲜的细胞培养基，每次使用3 mL，并利用光学显微镜监测支架内细胞的状态。</li>
	</ol>
	</li>
</ol>
6. 通过活/死细胞染色法评估打印结构中eSMCs的存活率
<ol>
	<li>孵育5小时后移除细胞培养基，并用PBS洗涤载有细胞的构建物。</li>
	<li>向打印的载细胞构建物中加入2 mL标准钙黄绿素-AM/碘化丙啶溶液（1:1000），并进行孵育。</li>
	<li>孵育45分钟后用PBS洗涤构建物3次，然后加入新鲜的细胞培养基。</li>
	<li>观察活细胞与死细胞，并使用共聚焦激光扫描显微镜（CLSM）采集荧光图像。</li>
</ol>
7. 通过 FITC-Phalloidin/DAPI 染色观察打印结构中的 eSMCs
<ol>
	<li>将打印的结构在孵育5天后，使用异硫氰酸荧光素（FITC）标记的鬼笔环肽（绿色）对F-肌动蛋白染色，并用4',6-二脒基-2-苯基吲哚（DAPI，蓝色）对细胞核进行染色。</li>
	<li>固定液的配制
	<ol>
		<li>在5 mL聚乙烯（PE）管中，将4 mL 1×PBS与0.16 mL多聚甲醛（PFA）混合，得到终浓度为4%的固定液。</li>
		<li>将含有生物打印结构的培养皿置于洁净台面上，吸除培养基，然后轻轻加入PFA溶液，确保结构完全浸没。室温下固定20分钟后弃去溶液。 
		注意：在添加和移除液体时应小心操作，以保持生物打印结构的完整性。</li>
		<li>向培养皿中加入2.5 mL 1×PBS，完全浸没结构，以去除残留的染色试剂。</li>
	</ol>
	</li>
	<li>细胞膜通透化处理
	<ol>
		<li>在5 mL PE管中，将20 µL Triton X-100加入4 mL 1×PBS中，配制成0.5% Triton X-100溶液。</li>
		<li>将Triton X-100溶液加入结构中，室温孵育30分钟以实现细胞膜通透，随后弃去溶液。</li>
		<li>向培养皿中加入2.5 mL 1×PBS，完全浸没结构，以去除残留的染色试剂。</li>
	</ol>
	</li>
	<li>封闭非特异性结合位点
	<ol>
		<li>在5 mL PE管中，将0.12 mL牛血清白蛋白（BSA）加入4 mL 1×PBS中，配制成3% BSA封闭液。</li>
		<li>将BSA溶液加入结构中，室温孵育30分钟以封闭非特异性结合位点，随后弃去溶液。</li>
	</ol>
	</li>
	<li>使用FITC-鬼笔环肽进行肌动蛋白染色
	<ol>
		<li>在5 mL PE管中，将8 µL染色试剂加入4 mL 1×PBS中，配制成0.2% FITC-鬼笔环肽溶液。</li>
		<li>将结构浸入该溶液中，避光、室温孵育60分钟，随后弃去溶液。</li>
		<li>向培养皿中加入2.5 mL 1×PBS，完全浸没结构，以去除残留的染色试剂。</li>
	</ol>
	</li>
	<li>使用DAPI进行细胞核染色
	<ol>
		<li>向结构中加入4 mL DAPI染色液，确保完全覆盖。</li>
		<li>避光、室温孵育20分钟后，移除DAPI溶液。</li>
	</ol>
	</li>
	<li>最终洗涤及PBS浸没：向培养皿中加入2.5 mL 1×PBS，完全浸没结构，以去除残留的染色试剂。 
	注意：染色液应提前配制，并轻柔操作。在整个过程中，培养容器内的细胞不得发生干燥。</li>
	<li>使用共聚焦显微镜观察：通过共聚焦显微镜检查并成像染色后的结构，以评估细胞生长情况，并对结果进行完整记录。</li>
</ol>
8. 使用 CCK-8 法检测打印结构中 eSMCs 的增殖情况
<ol>
	<li>在第7天和第14天从构建物中移除培养基，用PBS洗涤构建物以去除残留的培养基和脱落的细胞。</li>
	<li>根据制造商说明书向每个构建物中加入CCK-8溶液，确保CCK-8溶液体积足以完全覆盖每个构建物。</li>
	<li>将构建物在37 °C下与CCK-8溶液孵育2小时。孵育结束后，小心地将上清液转移至新的96孔板中。</li>
	<li>使用酶标仪在450 nm波长下测定吸光度。</li>
</ol>

Advancing 3D Bioprinting with &#954;-Carrageenan Sub-Microgel Medium

<ol><li>Xu, X., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Biodegradable+engineered+fiber+scaffolds+fabricated+by+electrospinning+for+periodontal+tissue+regeneration%5BTitle%5D)+AND+%22J+Biomater+Appl%22%5BJournal%5D)">Biodegradable engineered fiber scaffolds fabricated by electrospinning for periodontal tissue regeneration.</a> J Biomater Appl. 36 (1), 55-75 (2021).</li>
<li>Amann, E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+graded%2C+porous+composite+of+natural+biopolymers+and+octacalcium+phosphate+guides+osteochondral+differentiation+of+stem+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Adv+Healthcare+Mater%22%5BJournal%5D)">A graded, porous composite of natural biopolymers and octacalcium phosphate guides osteochondral differentiation of stem cells.</a> Adv Healthcare Mater. 10 (6), e2001692(2021).</li>
<li>Afjoul, H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Freeze-gelled+alginate%2Fgelatin+scaffolds+for+wound+healing+applications%3A+An+in+vitro%2C+in+vivo+study%5BTitle%5D)+AND+%22Mater+Sci+Eng+C%22%5BJournal%5D)">Freeze-gelled alginate/gelatin scaffolds for wound healing applications: An in vitro, in vivo study.</a> Mater Sci Eng C. 113, 110957(2020).</li>
<li>Hasanzadeh, R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Biocompatible+tissue-engineered+scaffold+polymers+for+3D+printing+and+its+application+for+4D+printing%5BTitle%5D)+AND+%22Chem+Eng+J%22%5BJournal%5D)">Biocompatible tissue-engineered scaffold polymers for 3D printing and its application for 4D printing.</a> Chem Eng J. 476, 146616(2023).</li>
<li>Fu, L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cartilage-like+protein+hydrogels+engineered+via+entanglement%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Cartilage-like protein hydrogels engineered via entanglement.</a> Nature. 618 (7966), 740-747 (2023).</li>
<li>Bertsch, P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Self-healing+injectable+hydrogels+for+tissue+regeneration%5BTitle%5D)+AND+%22Chem+Rev%22%5BJournal%5D)">Self-healing injectable hydrogels for tissue regeneration.</a> Chem Rev. 123 (2), 834-873 (2023).</li>
<li>Hinton, T. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Three-dimensional+printing+of+complex+biological+structures+by+freeform+reversible+embedding+of+suspended+hydrogels%5BTitle%5D)+AND+%22Sci+Adv%22%5BJournal%5D)">Three-dimensional printing of complex biological structures by freeform reversible embedding of suspended hydrogels.</a> Sci Adv. 1 (9), e1500758(2015).</li>
<li>Wang, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((3d+bioprinting+of+neurovascular+tissue+modeling+with+collagen-based+low-viscosity+composites%5BTitle%5D)+AND+%22Adv+Healthcare+Mater%22%5BJournal%5D)">3d bioprinting of neurovascular tissue modeling with collagen-based low-viscosity composites.</a> Adv Healthcare Mater. 12 (25), e2300004(2023).</li>
<li>Sreepadmanabh, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Jammed+microgel+growth+medium+prepared+by+flash-solidification+of+agarose+for+3d+cell+culture+and+3d+bioprinting%5BTitle%5D)+AND+%22Biomed+Mater%22%5BJournal%5D)">Jammed microgel growth medium prepared by flash-solidification of agarose for 3d cell culture and 3d bioprinting.</a> Biomed Mater. 18 (4), 045011(2023).</li>
<li>Zeng, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Comparative+analysis+of+the+residues+of+granular+support+bath+materials+on+printed+structures+in+embedded+extrusion+printing%5BTitle%5D)+AND+%22Biofabrication%22%5BJournal%5D)">Comparative analysis of the residues of granular support bath materials on printed structures in embedded extrusion printing.</a> Biofabrication. 15 (3), 035013(2023).</li>
<li>Terpstra, M. L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Bioink+with+cartilage-derived+extracellular+matrix+microfibers+enables+spatial+control+of+vascular+capillary+formation+in+bioprinted+constructs%5BTitle%5D)+AND+%22Biofabrication%22%5BJournal%5D)">Bioink with cartilage-derived extracellular matrix microfibers enables spatial control of vascular capillary formation in bioprinted constructs.</a> Biofabrication. 14 (3), 034104(2022).</li>
<li>Compaan, A. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Gellan+fluid+gel+as+a+versatile+support+bath+material+for+fluid+extrusion+bioprinting%5BTitle%5D)+AND+%22ACS+Appl+Mater+Inter%22%5BJournal%5D)">Gellan fluid gel as a versatile support bath material for fluid extrusion bioprinting.</a> ACS Appl Mater Inter. 11 (6), 5714-5726 (2019).</li>
<li>Compaan, A. M., Song, K., Chai, W., Huang, Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cross-linkable+microgel+composite+matrix+bath+for+embedded+bioprinting+of+perfusable+tissue+constructs+and+sculpting+of+solid+objects%5BTitle%5D)+AND+%22ACS+Appl+Mater+Inter%22%5BJournal%5D)">Cross-linkable microgel composite matrix bath for embedded bioprinting of perfusable tissue constructs and sculpting of solid objects.</a> ACS Appl Mater Inter. 12 (7), 7855-7868 (2020).</li>
<li>Zhang, H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Direct+3D+printed+biomimetic+scaffolds+based+on+hydrogel+microparticles+for+cell+spheroid+growth%5BTitle%5D)+AND+%22Adv+Funct+Mater%22%5BJournal%5D)">Direct 3D printed biomimetic scaffolds based on hydrogel microparticles for cell spheroid growth.</a> Adv Funct Mater. 30 (13), 1910573(2020).</li>
<li>Zhang, H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cation-crosslinked+%CE%BA-carrageenan+sub-microgel+medium+for+high-quality+embedded+bioprinting%5BTitle%5D)+AND+%22Biofabrication%22%5BJournal%5D)">Cation-crosslinked κ-carrageenan sub-microgel medium for high-quality embedded bioprinting.</a> Biofabrication. 16, 025009(2024).</li>
<li>Lee, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((3d+bioprinting+of+collagen+to+rebuild+components+of+the+human+heart%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">3d bioprinting of collagen to rebuild components of the human heart.</a> Science. 365 (6452), 482-487 (2019).</li>
<li>Yao, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Slightly+photo-crosslinked+chitosan%2Fsilk+fibroin+hydrogel+adhesives+with+hemostasis+and+anti-inflammation+for+pro-healing+cyclophosphamide-induced+hemorrhagic+cystitis%5BTitle%5D)+AND+%22Mater+Today+Bio%22%5BJournal%5D)">Slightly photo-crosslinked chitosan/silk fibroin hydrogel adhesives with hemostasis and anti-inflammation for pro-healing cyclophosphamide-induced hemorrhagic cystitis.</a> Mater Today Bio. 25, 100947(2024).</li>
<li>Senior, J. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Agarose+fluid+gels+formed+by+shear+processing+during+gelation+for+suspended+3d+bioprinting%5BTitle%5D)+AND+%22J+Vis+Exp%22%5BJournal%5D)">Agarose fluid gels formed by shear processing during gelation for suspended 3d bioprinting.</a> J Vis Exp. (195), e64458(2023).</li>
<li>Roche, C. D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((durability%2C+contractility+and+vascular+network+formation+in+3d+bioprinted+cardiac+endothelial+cells+using+alginate-gelatin+hydrogels%5BTitle%5D)+AND+%22Front+Bioeng+Biotech%22%5BJournal%5D)">durability, contractility and vascular network formation in 3d bioprinted cardiac endothelial cells using alginate-gelatin hydrogels.</a> Front Bioeng Biotech. 9, 63657(2021).</li>
<li>Wang, D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Microfluidic+bioprinting+of+tough+hydrogel-based+vascular+conduits+for+functional+blood+vessels%5BTitle%5D)+AND+%22Sci+Adv%22%5BJournal%5D)">Microfluidic bioprinting of tough hydrogel-based vascular conduits for functional blood vessels.</a> Sci Adv. 8 (43), eabq6900 (2022).</li>
<li>Shao, L., Hou, R. X., Zhu, Y. B., Yao, Y. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Pre-shear+bioprinting+of+highly+oriented+porous+hydrogel+microfibers+to+construct+anisotropic+tissues%5BTitle%5D)+AND+%22Biomater+Sci%22%5BJournal%5D)">Pre-shear bioprinting of highly oriented porous hydrogel microfibers to construct anisotropic tissues.</a> Biomater Sci. 9 (20), 6763-6771 (2021).</li>
</ol>

作者对本文所述产品无任何经济利益关系。

样品制备 κ-用于生物打印的卡拉胶亚微凝胶悬浮浴的制备是一个经过精密调控的过程，涉及多个关键步骤，以确保所得介质具备支持生物墨水所需的理想特性。首先， κ-κ-卡拉胶溶液通过溶解κ-卡拉胶制备 κ-将卡拉胶粉末溶于去离子水中并加热，形成均匀混合物。溶液浓度是关键参数，必须优化以利于后续凝胶化。浓度范围为0.3–0.6%（wt/vol） κ-κ-卡拉胶在嵌入式三维生物打印中表现出优异的性能15冷却后，该溶液转变为块状凝胶。
随后，将大块凝胶采用机械研磨策略处理，以制备亚微米凝胶颗粒。该过程利用高剪切力将凝胶破碎成尺寸均一的颗粒。研磨工艺参数，包括剪切强度、时间和温度，均需精确控制，以获得理想的粒径分布。研磨完成后，将亚微米凝胶颗粒储存在25–37 °C条件下，以防止颗粒聚集或溶解，这对于维持均匀悬浮状态以支持复杂的生物打印任务至关重要。建议凝胶现配现用。
产物的制备 κ-卡拉胶亚微凝胶悬浮浴操作简便，可确保与工业应用以及大规模组织工程和再生医学日益增长的需求相一致。此外， κ-卡拉胶亚微米凝胶悬浮浴采用细胞相容性的PBS或培养基作为溶剂，可确保优异的生物相容性，使其成为支持生物打印结构内细胞的理想介质。在无菌制备条件下，该颗粒凝胶的保质期约为1个月。
以其宾汉塑性流动行为为特征（图1B），the κ-卡拉胶亚微凝胶浴表现出优异的剪切稀化特性，并具有快速自愈能力（图1C，D），这对于提高打印结构的精度至关重要。该亚微凝胶浴的应用在构建具有多层次结构的组织中已证明是有效的（图2)，确保制造出高保真度和高分辨率的结构。值得注意的是，细胞在含细胞生物墨水内嵌入后仍具备快速伪足延伸的能力（图3），强调了该缓冲液与细胞过程的相容性。因此，这一 κ-卡拉胶亚微凝胶浴为该领域带来了变革性的前景 体外 组织与器官构建。该技术有望通过促进更复杂、更具活性且功能上更整合的组织构建物的开发，对组织工程学和再生医学产生深远影响。
尽管具有相当大的潜力 κ-用于生物打印和组织工程的卡拉胶亚微凝胶浴仍存在若干挑战与局限。首要问题是其成分应尽可能接近细胞培养基，这对于在大型器官的长时间打印过程中维持细胞活性至关重要。 κ-卡拉胶亚微凝胶主要使用PBS作为溶剂进行制备，这需要加入多种细胞培养基以溶解该材料。除PBS外， κ-卡拉胶也可使用氯化钙溶液进行凝胶化。然而，氯化钙溶液可能对细胞产生毒性，或造成渗透压失衡。因此，使用细胞培养基将更为理想 κ- 卡拉胶溶剂和交联剂。此外，实现微凝胶的高通量无菌生产仍面临重大挑战。微凝胶的灭菌处理 κ-κ-卡拉胶溶液需要在高温下通过0.22 µm滤器过滤。然而，无菌滤液的得率 κ-卡拉胶的使用常受到多种因素的限制，包括PBS溶液的质量以及冷却过程 κ-在过滤过程中使用卡拉胶。每次过滤批次通常仅能获得20-50 mL无菌液体 κ-κ-卡拉胶，这对高通量生产构成了显著障碍 κκ-卡拉胶微凝胶。因此，未来的研究将集中在优化生物制造工艺、评估细胞的长期存活率与功能，以及探索打印组织与生物系统的整合。

组织工程支架，包括电纺纤维、多孔海绵和聚合物水凝胶，在修复和重建受损组织与器官中发挥关键作用，其通过提供支持细胞生长、组织再生及器官功能恢复的结构框架来实现这一目标1,2,3然而，传统支架在精确复制天然组织结构方面面临挑战，导致工程化组织与天然组织之间存在不匹配。这一局限性阻碍了缺损组织的有效修复，凸显出迫切需要改进支架设计以实现更精确的生物模拟。三维（3D）生物打印是一种创新的制造技术，可利用生物材料墨水和细胞逐层精确构建复杂的生物组织结构。4在各种生物材料中，聚合物水凝胶因其独特的网络结构而成为理想的生物墨水，该结构有利于 原位 细胞的包封，并关键性地支持其生长5,6然而，许多柔软且高度水合的水凝胶在用作生物墨水时，往往会在打印过程中导致打印支架结构模糊或迅速坍塌。为解决这一难题，嵌入式3D生物打印技术采用微凝胶浴作为支撑材料，实现软性生物墨水的精确沉积。待水凝胶生物墨水凝胶化后，通过去除微凝胶浴，即可获得具有复杂结构的精细仿生支架。例如明胶等材料7,8琼脂糖9，和结冷胶10,11 已被用于制备嵌入式3D生物打印的微凝胶浴，显著推动了软水凝胶在组织工程中的应用。然而，这些颗粒凝胶的微米级且不均匀的粒径对3D打印的分辨率和保真度产生不利影响。12,13,14迫切需要制备一种具有小尺寸且均匀分散颗粒的凝胶状悬浮液，以实现高保真生物打印。
在此方案中，一种新型牺牲性颗粒 κ一种具有均匀亚微米级结构的κ-卡拉胶悬浮液浴被用于嵌入式3D打印。这种创新的亚微凝胶浴具备快速阻塞-解阻塞相变行为，可实现高结构保真度的仿生水凝胶支架的精确制备。15利用这种新型悬浮介质，成功打印出一系列具有多层组织结构的仿生组织和器官构建物，所用复合生物墨水由明胶甲基丙烯酰胺和丝素蛋白甲基丙烯酰胺组成。本研究选择食管作为三维生物打印的仿生对象，主要因为食管不仅具有多层组织结构，其肌层还呈现出内环形、外纵行的复杂分层结构。确保这些层次的正确排列与组织结构对于功能性组织再生至关重要。因此，我们迫切希望复制食管的多层结构。更重要的是，我们采用了 κ使用κ-卡拉胶亚微凝胶作为悬浮浴，GelMA/SFMA作为生物墨水，设计并构建用于组织工程的仿生支架。打印的食管结构可通过反复磷酸盐缓冲液洗涤轻松释放。此外，该 κκ-卡拉胶亚微凝胶浴不含细胞毒性物质，确保了高细胞相容性15各向异性支架中负载的平滑肌细胞表现出显著的铺展活性。这种均匀的亚微凝胶悬浮介质为通过嵌入式3D生物打印技术构建复杂组织与器官提供了新途径。

<table><tbody><tr><td>3D 生物打印机</td><td>定制设计</td><td></td><td></td></tr><tr><td>4&amp;rsquo;,6-二脒基-2-苯基吲哚</td><td>索莱宝生命科学</td><td>C0065</td><td>即用型</td></tr><tr><td>405 nm 紫外光</td><td>EFL</td><td>XY-WJ01</td><td></td></tr><tr><td>细胞计数仪</td><td>康宁</td><td>Cyto smart 6749</td><td></td></tr><tr><td>共聚焦激光扫描显微镜</td><td>徕卡</td><td>STELLARIS 5</td><td></td></tr><tr><td>DMEM 高糖培养基</td><td>VivaCell</td><td>C3113-0500</td><td>高糖，含丙酮酸钠和 L-谷氨酰胺</td></tr><tr><td>动态旋转流变仪</td><td>TA Instrument</td><td>Discovery HR-20</td><td></td></tr><tr><td>食管平滑肌细胞</td><td>由宁波大学医学部细胞生物学与再生医学系提供</td><td></td><td>来源于兔食管的原代细胞</td></tr><tr><td>胎牛血清</td><td>UE</td><td>F9070L</td><td></td></tr><tr><td>异硫氰酸荧光素标记鬼笔环肽</td><td>索莱宝生命科学</td><td>CA1610</td><td>300T</td></tr><tr><td>甲基丙烯酰化明胶</td><td>EFL</td><td>EFL-GM-60</td><td>60% 取代度</td></tr><tr><td>κ-卡拉胶</td><td>阿拉丁</td><td>C121013-100g</td><td>试剂级</td></tr><tr><td>苯基(2,4,6-三甲基苯甲酰)次磷酸锂</td><td>阿拉丁</td><td>L157759-1g</td><td>365~405 nm</td></tr><tr><td>活/死细胞染色试剂盒</td><td>碧云天</td><td>C2015M</td><td></td></tr><tr><td>酶标仪</td><td>普腾诺夫</td><td>PT-3502B</td><td></td></tr><tr><td>多聚甲醛</td><td>索莱宝生命科学</td><td>P1110&amp;nbsp;</td><td>4%</td></tr><tr><td>青霉素/链霉素</td><td>索莱宝生命科学</td><td>MA0110</td><td>100 &amp;acute;</td></tr><tr><td>磷酸盐缓冲液</td><td>VivaCell</td><td>C3580-0500</td><td>pH 7.2-7.4</td></tr><tr><td>甲基丙烯酰化丝素蛋白</td><td>EFL</td><td>EFL-SilMA-001</td><td>39% 取代度</td></tr><tr><td>吐温 X-100</td><td>索莱宝生命科学</td><td>T8200</td><td></td></tr><tr><td>胰蛋白酶-EDTA</td><td>VivaCell</td><td>C100C1</td><td>0.25%，不含酚红</td></tr></tbody></table>

利用κ-卡拉胶亚微凝胶介质嵌入式生物打印类组织结构

Embedded Bioprinting of Tissue-like Structures Using &#954;-Carrageenan Sub-Microgel Medium

利用颗粒水凝胶支撑浴进行嵌入式三维（3D）生物打印已成为构建仿生支架的关键技术。然而，设计一种能够在精确沉积生物墨水的同时维持细胞活性与功能的合适凝胶悬浮介质仍面临多重挑战，尤其是在实现理想黏弹性性能方面。本文提出一种新型 κ-卡拉胶凝胶支撑浴通过一种易于操作的机械研磨工艺制备，可生成均一的亚微米级颗粒。这些亚微凝胶表现出典型的宾汉流体行为，具有较低的屈服应力和快速的剪切稀化特性，有利于生物墨水的平滑沉积。此外，该凝胶还具备可逆的凝胶-溶胶相变特性和自愈合能力 κκ-卡拉胶微凝胶网络可确保打印结构的结构完整性，从而能够构建具有明确结构特征的复杂多层组织结构。打印完成后， κ-carrageenan亚微凝胶可通过简单的磷酸盐缓冲液冲洗轻松去除。进一步使用含细胞生物墨水进行生物打印表明，仿生结构内的细胞具有高达92%的高存活率，能够迅速伸出伪足，并保持旺盛的增殖能力，表明该生物打印策略在组织与器官构建方面具有潜在应用价值。总之，这种新型 κκ-卡拉胶亚微凝胶介质作为一种极具前景的嵌入式生物打印高质量材料，具有深远的意义 体外 工程化组织与器官的开发

通过机械破碎将块状水凝胶分解为颗粒状凝胶浆料，从而制备出颗粒状κ-卡拉胶凝胶浴。最近的一项研究表明，在1000 rpm的机械搅拌条件下，κ-卡拉胶颗粒的平均直径约为642 ± 65 nm，形态均匀15，显著小于文献中先前报道的微凝胶尺寸16,17,18。更长的破碎时间和更高的转速会导致更小的微粒尺寸；本研究中，在1200 rpm下搅拌60分钟可获得平均直径为565 ± 86 nm的亚微米级颗粒（补充图1）。如此小的粒径有望提高打印过程的分辨率。这些颗粒通过氢键和阳离子相互作用的形成组装成颗粒状凝胶（图1A）。当受到应力作用时，κ-卡拉胶亚微米凝胶介质表现出典型的特性行为，如屈服、剪切稀化以及可逆的阻塞-非阻塞转变，这些特性对于成功实现嵌入式3D生物打印至关重要。图1B展示了颗粒状κ-卡拉胶凝胶在流动斜坡测试中的代表性屈服行为和剪切稀化现象。当剪切速率从0.001增加到10 s-1时，0.35%（wt/vol）颗粒状κ-卡拉胶凝胶的剪切应力在剪切速率低于0.3 s-1时基本保持不变，表明其屈服应力较低，为3.5 Pa。随后观察到剪切应力随剪切速率呈线性增加，表明其流动行为类似于宾汉流体。此外，对κ-卡拉胶亚微米凝胶进行的应变扫描流变学测量揭示了从凝胶态到溶胶态的独特转变。这些凝胶在应变超过10%时发生屈服，并在35%应变时经历凝胶-溶胶转变（图1C）。亚微米颗粒凝胶的小屈服应变归因于通过氢键和阳离子相互作用建立的物理网络。这种凝胶-溶胶转变行为是可逆的。如图1D所示，在100%应变下，κ-卡拉胶亚微米凝胶的储能模量从38 Pa急剧下降至6 Pa，低于损耗模量，表明处于溶胶状态；相反，在应变突然降低至1%时，储能模量在5秒内迅速恢复至约38 Pa，并超过损耗模量，表明κ-卡拉胶亚微米凝胶能够在颗粒之间快速重建物理交联结构。
颗粒状的 κ-卡拉胶凝胶因其微小且均一的形态，表现出剪切稀变性、快速自恢复性以及屈服应力行为，这些特性使其在嵌入式三维生物打印应用中具有优势。为评估其有效性 κ-κ-卡拉胶亚微凝胶悬浮液作为嵌入式打印的支撑浴，采用一种广泛使用的生物墨水，其成分为10%（wt/vol）甲基丙烯酰化明胶和6%（wt/vol）甲基丙烯酰化丝素蛋白复合物（GelMA/SFMA），用于在支撑浴内进行打印试验 κκ-卡拉胶培养基19,20. 使用罗丹明标记 GelMA 以增强可视化效果21如图所示 图 2A，颗粒状的 κ-卡拉胶凝胶浴具有高度透明性，便于实时监测打印过程。喷嘴产生的剪切速率范围为0.66至6 s⁻¹。-1 当喷嘴速度在 10–90 mm/s 范围内变化时。 κκ-卡拉胶亚微凝胶浴在以交替速率6 s⁻¹进行连续循环剪切时，仍能在20 s内表现出自愈合行为-1 和 0.01 s-1 (补充图2）。一种尺寸为15 x 15 x 2 mm的网格结构3，层厚为 150 µm，持续存在于 κ-卡拉胶亚微凝胶浴中。值得注意的是，该网格表现出显著的完整性和分辨率，单根纤维直径约为 200 µm 宽度和丝状结构间距约为 350 µm，经共聚焦激光扫描显微镜（CLSM）图像验证（图2B，C此外，这种三维网格结构具有多孔网络，孔隙之间相互连通。这些是影响打印性能并最终影响细胞行为（如细胞存活、增殖和分化潜能）的关键特性。
为进一步确认该方法的适用性 κ-利用κ-卡拉胶亚微米凝胶介质生成复杂组织和器官结构，采用 GelMA/SFMA 墨水以80%的高填充密度制备了人心脏模型和三叶瓣心脏瓣膜。所打印的心脏模型精确复制了三维解剖形态，包括主要静脉和动脉图 2D），并在去除水分后表现出机械稳定性（图2E）。三叶式心脏瓣膜显示出明显的小叶结构及其支撑结构（图2F）。此外，这些结构中的纤维很容易剥离（图 2G）。此外，像食管这样的分级循环模型也能被精确重建。如图所示 图 2H 和 2I，打印出的食管显示出清晰的分层结构，各层之间界限分明，能够复制相应的食管组织层次，表明该 κ-κ-角叉菜胶亚微凝胶培养基支持组织工程所需的结构复杂性。尽管当前模型尚无法完全复制真实人体组织和器官的全部功能，但该 κ-κ-角叉菜胶亚微凝胶浴可能提供一种可行且具有前景的策略 体外 复杂组织和器官的构建，在科研、治疗和诊断领域具有潜在应用价值。
具有纵向与横向各向异性的网格支架可模拟食管的肌层图 3A，B），由独特的内环形肌层和外纵行肌层构成。为复制这种各向异性的结构 体外，将兔食管平滑肌细胞（eSMCs）小心地包埋于 GelMA/SFMA 生物墨水中。通过利用 κκ-卡拉胶亚微凝胶培养基中，成功构建了含有eSMCs且高度模拟食管双层肌层结构的仿生支架。培养5小时后，通过活/死细胞染色评估包封于水凝胶中的细胞活力。结果显示水凝胶网络内绝大多数为活细胞（绿色染色），仅有少量死细胞（红色染色），表明细胞具有较高的存活率图3C）。定量分析显示，存活率显著高达92%（图3D）。这些结果表明水凝胶材料具有良好的生物相容性，同时打印与交联方法在维持细胞完整性方面具有良好的效果。为进一步观察 GelMA/SFMA 构建物中细胞的形态，培养 3 天后采集了鬼笔环肽（绿色）/DAPI（蓝色）染色图像。如图所示 图3E，大量eSMCs在仿生结构中伸出丰富的伪足，并沿微纤维排列，如培养3天后所示。三维重建进一步证实了食管肌层结构的精确复制补充图3）。此外，在第1、7和14天采用CCK-8法评估eSMC的增殖情况。在450 nm处的吸光度值从第1天到第7天和第14天显著增加，反映出强烈的增殖行为（补充图4。这些结果表明了该方法的巨大潜力 κκ-卡拉胶亚微凝胶培养基在促进高质量仿生生物打印中的应用
<img alt="生物墨水挤出装置；κ-卡拉胶凝胶粘接；流变学：应力、黏度、模量图谱" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/66806/66806fig01.jpg" data-altupdatedat="1788304762000" data-alt="图1"> 
图1：自组装 κκ-卡拉胶亚微凝胶培养基及其流变学分析 (A) 示意图展示 κ通过氢键和阳离子相互作用形成的κ-卡拉胶亚微凝胶漂浮物，用于包埋式三维生物打印。B0.35%（wt/vol）琼脂糖凝胶中的流体坡度 κ-卡拉胶亚微凝胶在 25 °C. (C) 凝胶-溶胶转变的测量 κ-κ-角叉菜胶亚微凝胶通过振幅扫描，范围从0.1%到100% 25 °C. (D0.35%（wt/vol）自修复性能分析 κ-在交替施加1%和100%应变的连续循环剪切条件下卡拉胶亚微凝胶的 25 °C. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/66806/66806fig01large.jpg" target="_blank">请点击此处以查看此图的放大版本。</a>
<img alt="3D打印生物材料、表面形貌图、组织支架显微图像、生物材料浮力测试和比色分析" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/66806/66806fig02v3.jpg" data-altupdatedat="1788304762000" data-alt="图2"> 
图2高保真嵌入式3D打印罗丹明标记的GelMA/SFMA墨水 κ-卡拉胶亚微凝胶悬浮液浴 (A) 嵌入式3D打印过程中的实时观察 κ-卡拉胶亚微凝胶悬浮液浴。B, C) 共聚焦激光扫描显微镜图像，展示所打印网格的（B）三维重建和（C）内部结构。D, E) 水溶液中的3D打印心脏模型照片（D）及其自然状态下的照片（E）。F三叶式心脏瓣膜图片及（G) 构建物中的纤维被剥离下来。H顶部和（I) 使用 GelMA/SFMA 油墨打印的食管模型的正面照片，展示出分层的四层结构。 <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/66806/66806fig02largev3.jpg" target="_blank">请点击此处以查看此图的放大版本。</a>
<img alt="3D生物打印肌肉组织示意图，荧光显微镜，细胞活力图" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/66806/66806fig03.jpg" data-altupdatedat="1788304762000" data-alt="图3"> 
图3：基于嵌入式细胞负载生物打印的 κ-卡拉胶亚微凝胶悬浮液浴 (A, B) 食管（A）内环形与外纵行肌层结构示意图，以及（B）通过嵌入式3D生物打印技术制备的各向异性食管肌层仿生支架示意图。C活/死染色图像及（D) GelMA/SFMA支架中培养的eSMCs在5小时的定量活力。E第3天在 GelMA/SFMA 支架中培养的 eSMCs 的投影图像。从左至右：细胞核、F-肌动蛋白，以及合并视图。 <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/66806/66806fig03large.jpg" target="_blank">请点击此处以查看此图的放大版本。</a>
补充图1： (A扫描电子显微镜图像显示了均匀的形貌 κ-卡拉胶亚微凝胶。 (B) 直径分布 κ-carrageenan 微粒的粒径通过激光粒度分析仪测定。 <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/66806/Supplementary%20Figure%201.zip" target="_blank">请点击此处下载此文件。</a>
补充图2： 自恢复分析 κ-0.35%（wt/vol）的卡拉胶亚微凝胶在交替进行 0.01 秒的持续循环剪切作用下-1 和 6 秒-1 速率在 25 °C. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/66806/Supplementary%20Figure%202.zip" target="_blank">请点击此处下载此文件。</a>
补充图3： 打印网格的三维重建图像。<a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/66806/Supplementary%20Figure%203.zip" target="_blank">请点击此处下载该文件。</a>
补充图4： 通过CCK-8法检测包封在GelMA/SFMA水凝胶中的eSMCs在1、7和14天后的增殖活性（n = 3）。采用单因素方差分析（one-way ANOVA）进行统计学显著性分析，随后在三组之间进行Tukey事后检验，**p&lt;0.01，****p &lt; 0.0001。数据以均值 ± 标准差表示。<a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/66806/Supplementary%20Figure%204.zip" target="_blank">请点击此处下载该文件。</a>

本研究介绍了一种新型 κκ-卡拉胶亚微凝胶悬浮浴，展现出显著的可逆阻塞-解阻塞转变特性。这些特性有助于在嵌入式三维生物打印中构建仿生组织和器官。成功打印出具有高分辨率和细胞生长能力的心脏/食管样组织，展示了高质量的生物打印与组织工程应用。

利用颗粒状水凝胶支撑浴进行嵌入式三维（3D）生物打印已成为构建仿生结构的关键技术……

基于微凝胶悬浮浴的3D生物打印技术为利用软性水凝胶制备复杂的3D结构提供了一个多功能平台，但其打印分辨率和精度较低，仍限制了所打印产物在组织工程中的实际应用。现有的微凝胶浴通常粒径较大且分散性差，导致打印出的丝状结构直径较大且形态不规则。因此，制备粒径小、形态均一的微凝胶浴仍面临重大挑战。本方案通过一种易于操作的机械研磨策略，制备出均匀且具有生物相容性的阳离子交联κ-卡拉胶亚微米凝胶浴，用于高保真生物打印。由于κ-卡拉胶亚微米凝胶具有均一的特性，粒径小至565纳米，且菌落状态低至0.35%，可实现精确的组织与器官构建，具有极高的保真度和分辨率。首先，将1.75克κ-卡拉胶粉末加入盛有500毫升PBS的1000毫升玻璃瓶中。制备κ-卡拉胶悬浮液浴后，将一根70毫米的磁力搅拌子放入玻璃瓶中。拧紧玻璃瓶盖，然后将其松开半圈。将玻璃瓶置于70°C的水浴中加热。然后以 300 RPM 的速度开启磁力搅拌器。将瓶子放置在搅拌器上，持续搅拌直至聚合物完全溶解。使用 0.22 微米滤膜，将完全溶解的κ-卡拉胶溶液过滤至已灭菌的玻璃瓶中。将κ-卡拉胶溶液在4°C下保存12小时，以诱导阳离子交联凝胶化。然后使用60毫米磁力搅拌子，将κ-卡拉胶水凝胶进行机械研磨，直至其完全转变为液态。首先，打开微挤出泵控制器。选择相应体积的注射器，并将挤出速率设置为 0.08 毫升每分钟。然后将水凝胶体积除以挤出速率，并结合预期打印时间，计算出挤出持续时间。接下来，将内径为 210 微米的针头安装到注射器上，并将其插入生物打印机的注射器插槽中。调整注射器控制器，确保注射器的活塞与螺杆紧密接触。然后将3 mL制备好的κ-卡拉胶悬浮液注入35 mm细胞培养皿中。根据代码设置，将培养皿放置在平台上，并确认打印头位于培养皿底部上方1 mm处。然后，将包含代码的SD卡插入3D生物打印机中。激活代码文件，启动生物打印机，并点击控制器上的开始按钮。接着，将打印出的结构暴露于405纳米的蓝光下照射一分钟，以启动光交联反应。使用1 mL移液器去除κ-卡拉胶凝胶，随后加入3 mL PBS洗涤并弃去。首先，当培养的食管平滑肌细胞达到80%融合度时，吸除培养基，并用5 mL PBS洗涤平滑肌细胞。然后向培养瓶中加入 2 毫升 0.2% 胰蛋白酶 EDTA，孵育 2 分钟以消化细胞。加入 2 毫升 DMEM 终止消化过程，并将细胞悬液转移至 15 毫升离心管中。以 675 ×g 离心 3 分钟。小心吸除上清液，并将细胞沉淀重悬于复合明胶甲基丙烯酰胺和丝素蛋白甲基丙烯酰化生物墨水中。生物打印完成后，用 PBS 洗涤三维食管肌层，随后小心吸除 PBS，加入 3 mL 添加 10% FBS 和 1% 青霉素或链霉素的 DMEM 培养基。

embedded-bioprinting-tissue-like-structures-using-carrageenan-sub

Research

科研

JoVE Journal

Engineering

工程

使用 κ-角叉菜胶亚微凝胶培养基对组织样结构进行嵌入式生物打印

设计并制造了一种笛卡尔式生物打印机，可实现多种材料在精确且可重复的几何形状中的沉积，同时允许对环境因素进行控制。利用该三维生物打印机，可打印出复杂且具有活性的结构，并能够轻松实现重复制备。...

使用三喷头笛卡尔打印机进行细胞构建物生物打印的活性研究

我们描述了一组联合使用的方案，可共同制备出具有组织模拟特性的水凝胶生物墨水，用于生物打印功能完整且存活的三维组织结构 体外...

使用组织特异性水凝胶生物墨水打印细胞化结构

我们提供一种基于微流控生物打印策略的通用方案，用于构建微纤维血管床，其中可进一步将第二种细胞类型接种于该微纤维结构的间隙空间，以生成带血管化的组织和类器官。...

用于构建血管化组织和类器官的微流控生物打印技术

我们开发了一种异质性乳腺癌模型，该模型由永生化的肿瘤细胞和成纤维细胞嵌入可生物打印的海藻酸盐/明胶生物墨水中构成。该模型可重现 体内...

可生物打印的海藻酸盐/明胶水凝胶3D 体外 模型系统诱导细胞球体形成

本文介绍了一种明胶甲基丙烯酰胺的3D生物打印方法。...

基于明胶甲基丙烯酰胺水凝胶生物墨水的3D生物打印方案

本文介绍了一种由交变粘性-惯性力驱动的温和3D打印技术，可用于构建水凝胶微载体。自制喷嘴具有灵活性，可方便地更换以适应不同材料和直径。可获得并收集直径为50-500...

3D打印 体外 通过交替黏性-惯性力喷射法制备水凝胶微载体

本文报道了一种3D生物打印小鼠皮层星形胶质细胞的方法，用于构建类神经组织，以研究星形胶质细胞在中枢神经系统中的功能，以及胶质细胞在神经系统疾病及其治疗机制中的作用。...

利用小鼠皮层星形胶质细胞进行类神经组织工程的3D生物打印

水凝胶形成过程中的剪切处理可产生微凝胶悬浮液，该悬浮液具有剪切变稀特性，但在去除剪切力后能迅速重构。此类材料已被用作生物打印复杂、含细胞结构的支撑基质。本文描述了用于制备支撑床及相容性生物墨水的方法。...

通过凝胶化过程中剪切处理形成琼脂糖流体凝胶用于悬浮3D生物打印

本研究描述了一种在自愈性可退火颗粒-细胞外基质复合材料内进行神经干细胞自由成型嵌入式3D打印的实验方案。该方案能够高保真地程序化构建相互连接的人类神经组织结构。...

微凝胶-细胞外基质复合支撑材料用于人源神经组织嵌入式三维打印

我们介绍一种利用3D生物打印技术在标准六孔板上高通量制备具有可调尺寸和特定图案血管通道的实验方案，该技术被称为“孔板上的血管”（vessels-on-a-plate,...

高通量生物打印方法用于在标准六孔板中灵活构建具有可调尺寸与图案的血管通透性模型

了解使用κ-角叉菜胶亚微凝胶悬浮浴进行高保真嵌入式生物打印的方法。该技术通过机械研磨制备均匀生物相容性微凝胶，实现565纳米粒径，可精确构建心脏及食管样等仿生组织结构，显著提升组织工程应用中的打印分辨率与保真度。

利用κ-卡拉胶亚微凝胶介质嵌入式生物打印类组织结构

探索更多视频