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作者感谢 Barna 实验室成员提供的有益讨论。

1. 小鼠胚胎干细胞培养
注意：在进行 ALIBi 激活和细胞裂解之前，小鼠胚胎干细胞（mESCs）的操作应遵循细胞培养的标准无菌技术。除非另有说明，完整的小鼠胚胎干细胞应于室温下以 200 × g 离心 3 分钟。除非另有说明，培养基使用前需在水浴中预热至 37 °C。小鼠胚胎干细胞应传代至已过夜明胶包被的新鲜组织培养板中（见步骤 1.1）。
<ol>
	<li>在解冻 L31-FTA 小鼠胚胎干细胞（mESC）的前一天，用 5 mL 的 0.1% 明胶包被 10 cm 培养皿底部。于 37 °C 孵育过夜。</li>
	<li>配制 mESC 培养基组分（表 2），经 0.2 µm 滤器过滤。4 °C 保存，最长可保存 1 个月。</li>
	<li>在解冻当天，将用于稀释解冻细胞的 5 mL 培养基和用于接种细胞的 10 mL 培养基预热至室温或 37 °C。</li>
	<li>从液氮中取出一支含有约 5 × 106 个 L31-FTA mESC 的冻存管，立即在 37 °C 水浴中轻轻摇动管底以快速解冻。</li>
	<li>根据冻存管容量，将 5 mL 培养基中的 0.5–1 mL 轻柔加入冻存管内容物中混匀，然后将冻存管中的全部内容物转移回 5 mL 培养基中。</li>
	<li>通过离心沉淀细胞。吸除上清液。</li>
	<li>用 10 mL 培养基重悬细胞沉淀。</li>
	<li>吸除 10 cm 培养皿中的明胶溶液，并立即将细胞悬液转移至该培养皿中。于 37 °C 孵育。</li>
	<li>每 24 小时（传代当天除外），吸除培养皿中的旧培养基，并更换为 10 mL 新鲜培养基。</li>
	<li>当细胞集落融合度达到 70%–80%（通常为接种后 48 小时），吸除旧培养基，并用 10 mL 的杜氏磷酸盐缓冲液（DPBS）冲洗两次。</li>
	<li>吸除 DPBS 后，向培养皿中加入 2 mL 0.05% 胰蛋白酶（表 2）。于 37 °C 孵育 5 分钟。</li>
	<li>向培养皿中加入 4 mL 冷的 mESC 培养基以中和胰蛋白酶。立即使用 5 或 10 mL 血清移液管在培养皿中反复吹打 15 次，使集落解离为单细胞悬液。</li>
	<li>将细胞悬液转移至锥形离心管中。可选：取部分细胞悬液，使用血细胞计数板进行细胞计数。</li>
	<li>通过离心沉淀细胞。吸除上清液。</li>
	<li>用新鲜培养基重悬细胞沉淀。将 5 × 106 个细胞（通常按 1:6 的传代比例）接种至新的明胶包被的 10 cm 培养皿中，并于 37 °C 孵育。根据需要重复步骤 1.9–1.15，直至准备进行转染。</li>
	<li>为制备冻存细胞储备液，使用胰蛋白酶消化一皿 mESC（如步骤 1.10–1.14 所述）。将细胞沉淀重悬于冻存培养基中（每 5 × 106 个细胞使用 250–500 µL），分装至冻存管中，置于细胞冻存盒中于 -80 °C 缓慢冷冻过夜，随后转移至液氮中长期保存。</li>
</ol>
2. 转染
注意：应在小鼠胚胎干细胞（mESCs）准备传代的当天进行转染。质粒可能在转染后3-5小时即开始表达。一旦开始表达，建议在避光条件下操作细胞，并尽量减少细胞暴露于低于37 °C的环境，以防止过早激活，因为先前的研究表明，Magnet光遗传学结构域不仅在蓝光照射下发生二聚，也在低温暴露时发生二聚31。将培养板置于专用的培养箱中，或在共用培养箱中用铝箔遮蔽某一层架以隔绝光线。当在培养箱外操作细胞时，应提前关闭或遮挡所有室内光源和窗户，并使用红光头灯进行观察。不要将培养箱门长时间打开。每次仅取出少量培养板，并在操作时将培养板放置于隔热表面（例如洁净的泡沫塑料盒盖）上，以尽量减少与室温工作台面的接触。使用前确保培养基充分预热。切勿在发光显微镜下观察培养板。
<ol>
	<li>转染前一天，用明胶包被一个10 cm培养皿。</li>
	<li>转染当天，吸除培养皿中的明胶，并加入7.5 mL培养基，在37 °C预热。同时将低血清培养基在37 °C预热，用于重悬细胞。</li>
	<li>将18.75 µL转染试剂加入250 µL低血清培养基中稀释。轻轻敲击混匀，室温孵育5分钟。</li>
	<li>若共表达编码N端和C端片段的两个质粒，则向250 µL低血清培养基中加入每种质粒各3.75 µg；若仅表达一个质粒（例如GFP阴性对照或全长BirA阳性对照），则加入7.5 µg单一质粒。</li>
	<li>将质粒/低血清培养基混合物加入转染试剂/低血清培养基混合物中，轻弹或颠倒混匀。室温孵育15分钟。</li>
	<li>在此期间，对mESC进行胰酶消化并离心收集（步骤1.10–1.14）。用预热的低血清培养基重悬细胞沉淀，调整细胞浓度至10 × 106 个细胞/mL。</li>
	<li>将7.5 × 106（750 µL）重悬的细胞加入质粒/转染试剂/低血清培养基混合液中。颠倒离心管混匀，室温孵育10分钟，期间偶尔颠倒离心管以保持细胞悬浮状态。</li>
	<li>再次短暂颠倒离心管，将mESC/质粒/转染试剂/低血清培养基混合物加入含有预热培养基的培养皿中。轻轻摇动培养皿，使细胞均匀分布。</li>
	<li>将培养皿置于37 °C孵育3–5小时，使细胞在此期间充分贴壁。 
	注意：从此时起，建议采取前述措施避免光照及低于37 °C的温度暴露。</li>
	<li>轻柔吸除旧培养基，加入新鲜预热的培养基，沿培养皿侧壁吹加，避免冲起细胞。继续在37 °C孵育。</li>
	<li>若计划在转染后24小时进行激活/裂解，则进入第3节操作；若计划在转染后48小时进行激活/裂解，则在转染细胞接种后约24小时更换培养基。</li>
</ol>
3. ALIBi 激活与细胞裂解
注意：在洗脱开始前（步骤 5.4），始终将细胞/样品置于避光条件下操作。细胞在冰上预冷后（步骤 3.15），应始终保持样品低温，并仅使用预冷的试剂，直至洗脱开始。确保工作台面、设备、试剂和塑料器皿无 RNA 酶污染，建议使用新开封的物品，并用 RNA 酶去污染溶液和 70% 乙醇擦拭或冲洗硬质表面。在操作样品或设备时始终佩戴手套。对于拟用于质谱蛋白质组学分析的样品，还需尽量减少角蛋白污染，保持工作区域无尘；遮盖裸露皮肤，并将长发束起。
<ol>
	<li>将离心机预冷至 4 °C。</li>
	<li>关闭光源，将转染后的培养板转移至临时的 37 °C 培养箱中，以避免在将透射蓝光仪放入主培养箱后，培养板暴露于主培养箱内的温度波动中。</li>
	<li>用 70% 乙醇擦拭蓝光透射仪表面，并接通电源。将透射蓝光仪放入主培养箱中，在继续后续操作的同时，让培养箱条件重新平衡。</li>
	<li>将用于添加生物素和环己酰亚胺（CHX）的培养基分装物（每 10 cm 培养板使用 10 mL 培养基）预热至 37 °C。若需运行不额外添加生物素的对照样品，也应单独预热一份仅添加 CHX 的培养基分装物。 
	注意：某些缓冲液组分可在使用前一天配制，并在 4 °C 下过夜保存（见表 2）。请注意，用于 Western blot 或质谱蛋白质组学实验的裂解缓冲液和洗涤缓冲液配方，与用于 RNA 测序实验的配方有所不同。</li>
	<li>将用于添加 CHX 的 DPBS 分装物（每 10 cm 培养板 20 mL）冷却。</li>
	<li>配制 RNase 去除缓冲液、盐洗缓冲液、裂解缓冲液和洗涤缓冲液（见表 2）。对于含有甘油、Triton X-100 等高密度/高黏度组分的缓冲液，应使用移液器吹打混匀，确保成分均匀。使用前将缓冲液置于冰上预冷。 
	注意：在珠子洗涤步骤中，将含有珠子的离心管在掌上离心机中短暂离心，使内容物沉降至管底。将离心管置于磁力架上 1 分钟，或直至珠子完全迁移至管壁一侧。小心吸除上清液，避免接触珠子沉淀。在珠子沉淀未干燥的情况下，立即加入下一步所用缓冲液。为重悬珠子沉淀，可轻柔吹打，或在磁力架上用手指轻轻滚动封闭的离心管，使珠子在磁铁作用下快速向多个方向移动。最后，将重悬后的珠子上下颠倒数次，确保管壁内侧被充分洗涤。</li>
	<li>通过轻柔吹打或轻轻摇动，重悬链霉亲和素磁珠原液。每 10 cm mESC 培养板，向低吸附蛋白管中转移450 µL 磁珠。</li>
	<li>根据上述关于磁珠洗涤的注意事项，弃去磁珠储存缓冲液，并用 900 µL RNase 去除缓冲液洗涤磁珠两次。 
	注意：应立即进入下一步操作；磁珠在 RNase 去除缓冲液中停留时间过长可能会降低其结合能力。</li>
	<li>用 900 µL 盐洗缓冲液洗涤磁珠一次。</li>
	<li>用 900 µL Wash I 缓冲液洗涤磁珠两次。在第二次 Wash I 缓冲液重悬磁珠后，将磁珠保存在 Wash I 缓冲液中，并置于 4 °C，同时进行激活和细胞裂解操作。</li>
	<li>根据需要，向预热的培养基分装物中加入生物素（终浓度 50 µM；50 mM 储液 1:1,000 稀释）和 CHX（终浓度 100 µg/mL；100 mg/mL 储液 1:1,000 稀释）。保持在 37 °C 直至使用。</li>
	<li>向冷的 DPBS 分装物中加入 CHX（终浓度 100 µg/mL；100 mg/mL 储液 1:1,000 稀释），并保持低温直至使用。 
	注意：接下来的两个步骤描述了通过补充生物素和蓝光照射来激活 ALIBi 的过程。理想的激活时间应足够长，以在后续检测中获得足够的核糖体生物素化水平，但又应足够短，以保持良好的时空分辨率。理想的激活时间可能因细胞类型、实验规模、分裂酶的表达水平、目标细胞器附近核糖体的丰度以及分析技术的灵敏度等参数而异。我们建议以 15 分钟作为起始点，这也是我们在代表性结果（图 2）及配套研究30中所采用的激活时间。</li>
	<li>吸除转染培养板中的培养基。立即每板加入 10 mL 含 CHX ± 生物素的预热培养基。</li>
	<li>对于不进行光照的阴性对照板，将其放入避光培养箱中。对于需要光照的培养板，直接将其放置在透射蓝光仪上方，打开光源，孵育 15 分钟。</li>
	<li>光照结束后，立即每板用 10 mL 含 CHX 的冷 DPBS 洗涤两次。洗涤期间及洗涤后将培养板置于冰上。吸除第二次洗涤液后，倾斜培养板并吸除残留的 DPBS。</li>
	<li>将每块培养板尽可能保持水平地置于冰上，加入 2 mL 冰冷的裂解缓冲液进行裂解。在冰上孵育 5 分钟，期间轻敲培养板 2–3 次，以帮助细胞脱落。 
	注意：若在此期间用铝箔遮光并保持在冰上，可将培养板从细胞培养区域转移至其他黑暗空间。</li>
	<li>使用微量移液器在培养板表面反复吹打裂解液，以脱离残留细胞，注意避免产生气泡，随后将裂解液转移至预冷并标记好的低吸附蛋白管中。 
	注意：可选步骤：对于某些难以裂解的细胞器（如细胞核和核仁），超声处理可能有助于裂解。</li>
	<li>对于难以裂解的细胞器，将实验中所有样品在 4 °C 下以 3 瓦功率超声处理 45 秒。若超声仪设计要求将探头插入开放的样品管中，应先将裂解液从培养板转移至较大体积的离心管中，以防止超声过程中溢出；超声后再转移至 2 mL 离心管中。</li>
	<li>将裂解液在冰上孵育 15 分钟。</li>
	<li>在 4 °C 下以 17,000 × g 离心 3 分钟。将上清液（澄清裂解液）转移至预冷的低吸附蛋白管中，注意不要扰动细胞碎片沉淀。 
	注意：若计划进行 RNA 测序分析，此时可取一份澄清裂解液作为总 RNA 组分（详见补充文件 1中“RNA 测序建议”步骤 1.1）。 
	注意：若所有样品的细胞数量、转染/培养条件和裂解条件保持一致，通常可认为各样品裂解液浓度相近，无需测定总蛋白浓度，可直接进行后续操作。此做法有助于最小化激活与亲和纯化之间的时间间隔。</li>
</ol>
4. 亲和纯化
<ol>
	<li>使用磁力架收集洗涤后的链霉亲和素磁珠，吸除洗涤缓冲液 I。</li>
	<li>将 1,200 µL 澄清裂解液转移至含有洗涤后磁珠的离心管中，轻轻吹打重悬磁珠。将剩余的澄清裂解液储存于 -80 °C。</li>
	<li>将裂解液与磁珠在 4 °C 避光条件下于旋转仪上孵育 1 小时。</li>
	<li>在孵育期间，配制 TEV 洗脱缓冲液（表 2）。</li>
</ol>
5. 洗脱
<ol>
	<li>根据第3节中关于珠子洗涤的说明，将珠子在磁力架上离心沉淀，并将上清液转移至预冷的低吸附蛋白管中。将上清液于 -80 °C 保存。</li>
	<li>用 900 µL 洗涤缓冲液 I 洗涤珠子 2 次。</li>
	<li>用 900 µL 洗涤缓冲液 II 洗涤珠子 1 次。 
	注意：完成此步骤后，样品无需再避光操作。</li>
	<li>向珠子中加入 450 µL TEV 洗脱缓冲液。</li>
	<li>将珠子在室温下于旋转仪上孵育 1 小时。对于使用少量 TEV 洗脱缓冲液的小规模实验，可将离心管置于摇床中以 1,000–2,000 rpm 摇动孵育。</li>
	<li>将珠子置于磁力架上沉淀，将洗脱液转移至低吸附蛋白管中。若计划进行蛋白质组学分析或 Western blot，将洗脱液于 -80 °C 保存；若计划进行 RNA-seq 分析，请参见补充文件 1“RNA 测序建议”中的步骤 1.2 以获取洗脱液保存说明。</li>
	<li>可选：为初步判断亲和纯化是否获得了可观的 rRNA/mRNA（表明核糖体已被成功分离），可使用 TEV 洗脱缓冲液作为空白对照，在微量分光光度计上分析洗脱液。 
	注意：含有激活系统的细胞所产生的洗脱液在 260 nm 处的吸光度应高于缺乏分裂酶、蓝光/生物素或 L31-FTA 的细胞所产生的洗脱液。</li>
</ol>
6. 蛋白质印迹
注意：在裂解液和流穿样品加入Laemmli缓冲液变性之前，建议继续避免光照。我们使用预制胶、市售的转膜缓冲液和电泳缓冲液，以及半干式转膜系统（参见材料表）。SDS-PAGE和蛋白质印迹实验按照这些组分的生产商说明书进行操作，除非下文另有说明。
<ol>
	<li>向裂解液、流穿液和/或洗脱液样品中加入6x Laemmli缓冲液，使终浓度为1x Laemmli缓冲液。在95 °C的加热块或PCR仪中加热10分钟。若管盖或管壁出现冷凝液，短暂离心收集。</li>
	<li>根据凝胶电泳槽制造商的说明，使用电泳缓冲液安装凝胶。上样样品及蛋白分子量标记（ladder）。</li>
	<li>以125 V电压电泳45–75分钟，直至染料前沿接近凝胶底部。在此期间，配制PBST和封闭缓冲液（表2）。</li>
	<li>按照转膜系统制造商的说明进行半干转膜。 
	注意：在所有膜洗涤/孵育步骤中，确保膜完全浸没，并将膜托盘置于摇床或倾斜摇床上。对于10 × 15 cm的托盘，需使用25–50 mL缓冲液。</li>
	<li>从转膜夹心中取出膜后，立即进行下一步操作，以防止膜干燥。 
	注意：可选步骤：膜上出现干燥区域可能导致封闭或探针结合不均，尤其是像链霉亲和素-辣根过氧化物酶这类孵育时间较短的探针。为避免此问题，我们在转膜后将膜先用100%甲醇重新润湿30秒，再用水处理5分钟。该操作类似于转膜后PVDF膜干燥时常规推荐的再润湿方法32,33。</li>
	<li>在室温下用PBST洗涤膜，每次10分钟，共洗3次。</li>
	<li>根据表3中每种Western blot探针的指定条件，进行封闭、洗涤、探针孵育和二抗孵育。</li>
	<li>完成第6.7步的最终洗涤后，按制造商说明混合ECL底物组分，并均匀覆盖于膜上。使用化学发光凝胶成像系统采集图像。</li>
</ol>

<ol>
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</ol>

作者声明无任何利益冲突。

与现有的研究亚细胞翻译的技术相比，ALIBi 具有多项优势，并在核糖体生物学及其他领域具有潜在的未来应用价值。该方案所需时间与连续裂解和离心法相当或更短21,22，且原则上可应用于任何可通过定位于特定亚细胞区域的肽序列进行遗传靶向的亚细胞区室。与组成型活性的 BirA10,24 相比，该方法无需将细胞培养在生物素耗竭的培养基中。先前报道的胎牛血清中生物素浓度范围为 0.04 µM 至 0.2 µM25,42,43；因此，我们所使用的含有 15% 胎牛血清且不含其他生物素组分的 mESC 培养基，其生物素浓度估计为 0.006–0.03 µM。与非特异性的邻近生物素标记方法26</sup...

迫切需要能够从特定亚细胞区室中分离生物样本的工具，以更深入地研究亚细胞结构和物质运输如何影响细胞过程。mRNA翻译就是这样一个典型过程：越来越多的证据表明，翻译具有高度区室化特征，特别是许多mRNA会被定位到其编码蛋白将要驻留的细胞器中1,2。然而，关于翻译机器的亚细胞定位，目前所知仍较少。核糖体起源于核仁和细胞核，在那里由核糖体蛋白（RPs）和核糖体RNA（rRNAs）开始组装。随后，它们被转运至细胞质，完成最后的组装阶段，之后便开始翻译mRNA3,4。经典的翻译场所包括细胞质和内质网；后者是整合膜蛋白以及靶向膜结合细胞器或胞外分泌蛋白的合成场所5。近年来新发现的局部翻译位点还包括线粒体、过氧化物酶体和神经元突起6,7,8,9,10,11,12。有趣的是，越来越多的证据表明，翻译机器的某些特征，如与核糖体相关的蛋白、翻译后修饰、rRNA修饰以及核心核糖体&#160;蛋白的非经典化学计量比，参与调控特定mRNA的翻译以及翻译保真度和速率等参数13,14,15,16,17,18,19,20。例如，已有数百种蛋白被发现可与核糖体相互作用，可能导致亚细胞内核糖体组成的差异13。然而，迄今为止，用于分离亚细胞核糖体群体的技术仍十分有限；因此，关于翻译机器组成如何调控局部mRNA翻译，仍有许多未知。发展出适用于哺乳动物模型系统的、灵活多样的亚细胞核糖体分离方法，将有助于在亚细胞水平上深入探究这些翻译机器的特征。
分离含有核糖体的亚细胞组分的最早方法基于连续裂解和离心的原理21,22。通常，这些方法仅限于特定细胞器，且往往需要较长的处理时间。一种较新的方法基于生物素连接酶BirA，该酶可特异性地将AviTag肽底物生物素化10,23,24。在核糖体已标记AviTag的细胞中，可通过基因工程将BirA定位于目标细胞器。然而，由于BirA在生理浓度的生物素条件下具有活性，因此必须在生物素耗竭的条件下培养细胞，以避免携带AviTag的核糖体发生组成型和非特异性的生物素化10,24。这限制了BirA在对生物素耗竭敏感的细胞类型中的应用25。最后，已有研究开发出非特异性生物素化方法，使用经改造的酶如BioID、TurboID和APEX26,27,28。在诱导后，这些酶会产生一种反应性生物素中间体，可共价修饰酶周围一定半径内的任何赖氨酸残基。非特异性生物素化方法在绘制亚细胞蛋白质组图谱方面非常有用，但在区分位于核糖体附近区域的蛋白质与更紧密靠近核糖体的蛋白质方面提供的信息较为有限。
在此，我们演示了近期开发的一种用于标记和分离亚细胞核糖体群体的方法，称为AviTag特异性定位限制性光照增强生物素化（AviTag-specific Location-restricted Illumination-enhanced Biotinylation, ALIBi）。该方法利用一种经改造的分裂型BirA蛋白，该蛋白与光遗传学增强型Magnet（eMag）开关融合图1A在蓝光照射下发生异源二聚化29；以及一个由FLAG表位、烟草蚀纹病毒（TEV）蛋白酶切割位点和AviTag组成的肽标签（FTA），融合至核糖体蛋白Rpl31上（图1B）。分裂的酶可被基因靶向至特定细胞器，在生理浓度的生物素条件下无活性，且在蓝光照射并添加外源生物素后数分钟内即可重新组装恢复活性。图1C-）。随后进行细胞裂解、亲和纯化，并通过TEV蛋白酶切割实现非变性条件下的酶促洗脱，获得核糖体及共纯化的分子（如mRNA和核糖体相关蛋白），适用于RNA测序和质谱蛋白质组学等下游分析方法。图1A）。因此，该方法不仅能够揭示核糖体的组成，还能鉴定出与核糖体结合的mRNA。在最近一篇描述ALIBi技术首次应用于表征亚细胞核糖体群体的研究文章中，我们成功地将分裂的酶靶向至细胞质、核仁、细胞核、内质网、质膜以及线粒体（表1)30对这些亚细胞区室间翻译机制的比较研究，揭示了内质网和线粒体中翻译过程的新颖且出乎意料的发现，并为未来进一步探究细胞核及核仁中核糖体生物发生因子提供了潜在的研究方向。
本方案详细演示了ALIBi系统的转染与激活、细胞裂解、亲和纯化及样品洗脱的步骤。我们还讨论了如何通过蛋白质印迹法（western blot）验证亲和纯化的成功，并对后续进行RNA测序或质谱（MS）蛋白质组学分析提供了建议（参见补充文件1）。本方案适用于使用小鼠胚胎干细胞（mESCs）的实验，这些细胞在其内源性Rpl31位点处纯合表达与FTA融合的Rpl31蛋白（L31-FTA）；该细胞系可应要求向作者索取。该细胞系的构建策略详见补充文件1以及补充图S1和补充图S2。编码靶向多个细胞器的分裂酶的质粒可在Addgene获取（目录号#235608至235643）。靶向这些细胞器的分裂酶设计原理见补充文件1。本方案假设每个样品来源于在10 cm培养皿中培养的mESCs。我们发现，10 cm培养规模可获得足够用于质谱蛋白质组学分析的材料，而6孔板规模则足以用于蛋白质印迹或RNA测序。

<table><tbody><tr><td>-80 &amp;deg;C 储存</td><td></td><td></td><td>用于细胞培养</td></tr><tr><td>0.1% 明胶水溶液</td><td>默克密理博</td><td>ES-006-B</td><td>用于细胞培养</td></tr><tr><td>0.2 &amp;micro;m 滤器单元</td><td>Fisher</td><td>04-977-158</td><td>用于细胞培养</td></tr><tr><td>0.5% 胰蛋白酶-EDTA (10X)</td><td>Thermo Fisher Scientific</td><td>15400-054</td><td>用于细胞培养</td></tr><tr><td>1 M MgCl&lt;sub&gt;2&lt;/sub&gt;</td><td>Thermo Fisher Scientific</td><td>AM9010</td><td>用于裂解 &amp;amp; 亲和纯化</td></tr><tr><td>1 M Tris pH 7.5</td><td>ThermoFisher</td><td>15567027</td><td>用于裂解 &amp;amp; 亲和纯化</td></tr><tr><td>1 M Tris pH 8</td><td>ThermoFisher</td><td>AM9855G</td><td>可选步骤：将FTA插入内源性核糖体蛋白基因座</td></tr><tr><td>1.5 毫升与 2 毫升微量离心管，已高压灭菌</td><td></td><td></td><td>用于转染</td></tr><tr><td>1.5 mL、2 mL 和 5 mL 蛋白质低结合微量离心管</td><td>Eppendorf</td><td>022431081, 022431102,&lt;br/&gt; 0030108302</td><td>用于裂解 &amp;amp; 亲和纯化</td></tr><tr><td>10 厘米组织培养板</td><td></td><td></td><td>用于细胞培养</td></tr><tr><td>10 M NaOH</td><td>默克密理博</td><td>72068-100ML</td><td>用于裂解 &amp;amp; 亲和纯化</td></tr><tr><td>10x Tris/甘氨酸/SDS 电泳缓冲液浓缩液</td><td>Bio-Rad</td><td>1610772</td><td>对于蛋白质印迹法</td></tr><tr><td>37 &amp;deg;C 组织培养箱 x 2</td><td></td><td></td><td>用于细胞培养。其中一台作为细胞培养的主要培养箱，并为转染细胞提供光照。在ALIBi激活当天，需要在第二台培养箱中准备临时空间，以便在主培养箱内设置透照器时安置转染细胞。</td></tr><tr><td>37 &amp;deg;C 水浴锅</td><td></td><td></td><td>用于细胞培养</td></tr><tr><td>5 M NaCl</td><td>ThermoFisher</td><td>AM9010</td><td>用于裂解 &amp;amp; 亲和纯化</td></tr><tr><td>50 mM 生物素</td><td>ThermoFisher</td><td>B20656</td><td>用于裂解 &amp;amp; 亲和纯化</td></tr><tr><td>6x Laemmli 缓冲液</td><td>FIsher</td><td>50-196-784</td><td>对于蛋白质印迹法</td></tr><tr><td>70% 乙醇</td><td></td><td></td><td>用于消毒</td></tr><tr><td>乙腈</td><td>Fisher</td><td>A955</td><td>可选：用于质谱样品制备</td></tr><tr><td>AcTEV 蛋白酶试剂盒</td><td>ThermoFisher</td><td>12575015</td><td>用于裂解 &amp;amp; 亲和纯化</td></tr><tr><td>ALIBi C片段质粒</td><td>Addgene</td><td>#235615, 235636 &amp;ndash; 235641</td><td>转染实验需要中量制备规模。</td></tr><tr><td>ALIBi N-fragment 质粒</td><td>Addgene</td><td>#235614, 235635, 235642, 235643</td><td>中量制备规模是转染所必需的</td></tr><tr><td>铝箔</td><td></td><td></td><td>裂解 &amp;amp; 亲和纯化</td></tr><tr><td>碳酸氢铵</td><td>默克密理博</td><td>5.3305</td><td>可选：用于质谱样品制备</td></tr><tr><td>抗FLAG抗体</td><td>默克密理博</td><td>F3165</td><td>对于蛋白质印迹法</td></tr><tr><td>抗GAPDH抗体</td><td>细胞信号转导</td><td>5174</td><td>对于蛋白质印迹法</td></tr><tr><td>抗小鼠二抗</td><td>GE Healthcare</td><td>NA931V</td><td>对于蛋白质印迹</td></tr><tr><td>抗兔二抗</td><td>GE Healthcare</td><td>NA934V</td><td>对于蛋白质印迹</td></tr><tr><td>抗Rpl12抗体</td><td>Abcam</td><td>ab175219</td><td>对于蛋白质印迹</td></tr><tr><td>抗Rpl31抗体</td><td>Abcam</td><td>ab103991</td><td>蛋白质印迹法</td></tr><tr><td>抗Rpl5抗体</td><td>ProteinTech</td><td>15430-1-AP</td><td>对于蛋白质印迹</td></tr><tr><td>抗V5抗体</td><td>ThermoFisher</td><td>R960-25</td><td>蛋白质印迹法</td></tr><tr><td>Apyrase</td><td>新英格兰生物实验室</td><td>M0398L</td><td>用于裂解 &amp;amp; 亲和纯化</td></tr><tr><td>β-巯基乙醇 (55 mM)</td><td>Thermo Fisher Scientific</td><td>21985-023</td><td>用于细胞培养</td></tr><tr><td>蓝光透照仪</td><td>克莱尔研究化学</td><td>DR46B（小型）或 DR196（大型）</td><td>裂解 &amp;amp; 亲和纯化</td></tr><tr><td>牛血清白蛋白 (BSA)</td><td>Fisher</td><td>BP1600-100</td><td>蛋白质印迹法</td></tr><tr><td>C18 萃取柱头 (OMIX C18 tips)</td><td>安捷伦</td><td>A57003100</td><td>可选：用于质谱样品制备</td></tr><tr><td>细胞冷冻容器</td><td></td><td></td><td>用于细胞培养</td></tr><tr><td>适配 15 mL 和/或 50 mL 锥形管的离心机</td><td></td><td></td><td>用于细胞培养</td></tr><tr><td>适用于 1.5-2 mL 微量离心管的离心机</td><td></td><td></td><td>用于裂解 &amp;amp; 亲和纯化。应具备制冷至4°C的能力，转速可达17,000 g。理想情况下，该设备应放置于一个在转移离心管进出时可临时遮光的房间内。</td></tr><tr><td>Clarity ECL 试剂盒</td><td>Bio-Rad</td><td>170-5061</td><td>蛋白质印迹法</td></tr><tr><td>Criterion 凝胶电泳槽</td><td>Bio-Rad</td><td>1656001</td><td>对于蛋白质印迹法</td></tr><tr><td>Criterion TGX 预制胶，4-20%</td><td>Bio-Rad</td><td>5671095</td><td>用于蛋白质印迹。另有其他孔板规格与布局可供选择。</td></tr><tr><td>环己酰亚胺</td><td>默克密理博</td><td>C7698-5G</td><td>裂解 &amp;amp; 亲和纯化</td></tr><tr><td>脱氧胆酸盐</td><td>MilliporeSigma</td><td>S1827</td><td>裂解 &amp;amp; 亲和纯化</td></tr><tr><td>二硫苏糖醇</td><td>ThermoFisher</td><td>PIA39255</td><td>可选：用于质谱样品制备</td></tr><tr><td>DPBS，无钙，无镁</td><td>ThermoFisher</td><td>14190-250</td><td>用于细胞培养</td></tr><tr><td>ES级胎牛血清</td><td>默克密理博</td><td>ES-009-B</td><td>用于细胞培养</td></tr><tr><td>乙醇</td><td>金盾</td><td>412828</td><td>蛋白质印迹法</td></tr><tr><td>乙醇</td><td>默克密理博</td><td>459828</td><td>可选：用于质谱样品制备</td></tr><tr><td>甲酸</td><td>默克密理博</td><td>A117</td><td>可选：用于质谱样品制备</td></tr><tr><td>片段大小分析仪及耗材</td><td></td><td>安捷伦</td><td>可选：用于 RNA 测序文库制备。Agilent 2100 Bioanalyzer</td></tr><tr><td>冻存液</td><td>ThermoFisher</td><td>12648-010</td><td>用于细胞培养</td></tr><tr><td>化学发光凝胶成像系统</td><td></td><td></td><td>蛋白质印迹法</td></tr><tr><td>凝胶上样吸头</td><td></td><td></td><td>对于蛋白质印迹法</td></tr><tr><td>凝胶电泳槽电源</td><td></td><td></td><td>蛋白质印迹法</td></tr><tr><td>甘油</td><td>默克密理博</td><td>G5516-100ML</td><td>用于裂解 &amp;amp; 亲和纯化</td></tr><tr><td>guanidinium-phenol reagent (TRIzol)</td><td>ThermoFisher</td><td>15596-018</td><td>可选：用于 RNA 测序文库制备</td></tr><tr><td>适用于大样本体积的异硫氰酸胍-苯酚试剂（TRIzol LS）</td><td>ThermoFisher</td><td>10296010</td><td>可选：用于RNA测序文库制备</td></tr><tr><td>胍-酚 RNA 提取试剂盒 (DirectZol kit)</td><td>Zymo</td><td>R2060</td><td>可选：用于RNA测序文库制备</td></tr><tr><td>HALT 蛋白酶抑制剂</td><td>ThermoFisher</td><td>78425</td><td>用于裂解 &amp;amp; 亲和纯化</td></tr><tr><td>血细胞计数器</td><td></td><td></td><td>用于细胞培养</td></tr><tr><td>七氟丁酸</td><td>ThermoFisher</td><td>52411</td><td>可选步骤：用于质谱分析的样品制备</td></tr><tr><td>高pH组分分离试剂盒</td><td>ThermoFisher</td><td>84868</td><td>可选：用于质谱样品制备</td></tr><tr><td>羟胺</td><td>默克密理博</td><td>467804</td><td>可选步骤：用于质谱分析的样品制备</td></tr><tr><td>IGEPAL CA-630</td><td>默克密理博</td><td>I8896</td><td>可选：用于将 FTA 插入内源性核糖体蛋白基因座</td></tr><tr><td>引导RNA评分算法的实施</td><td>Benchling</td><td>https://www.benchling.com/</td><td>可选：用于选择向导RNA，以将FTA序列插入内源性核糖体蛋白基因座。该用户友好界面实现了Doench, J.G.等人开发的向导RNA评分算法，旨在最大化CRISPR-Cas9的活性并最小化其脱靶效应。Nature Biotechnology. 34 (2), 184&amp;ndash;191, doi: 10.1038/nbt.3437 (2016).</td></tr><tr><td>速溶脱脂奶粉</td><td>Safeway</td><td>116100001</td><td>对于蛋白质印迹</td></tr><tr><td>绝缘表面，即聚苯乙烯泡沫塑料盒盖</td><td></td><td></td><td>用于转染</td></tr><tr><td>碘乙酰胺</td><td>ThermoFisher</td><td>A39271</td><td>可选步骤：用于质谱分析的样品制备</td></tr><tr><td>敲除DMEM</td><td>Thermo Fisher Scientific</td><td>10829-018</td><td>用于细胞培养</td></tr><tr><td>L-谷氨酰胺 (100x)</td><td>默克密理博</td><td>TMS-002-C</td><td>用于细胞培养</td></tr><tr><td>L31-FTA 小鼠胚胎干细胞</td><td></td><td></td><td>可根据需要向 Barna 实验室索取，邮箱：mbarna@stanford.edu</td></tr><tr><td>配备4-10倍放大倍率的显微镜</td><td></td><td></td><td>对于细胞培养</td></tr><tr><td>Lipofectamine 2000</td><td>ThermoFisher</td><td>11668-019</td><td>关于转染</td></tr><tr><td>液氮储存</td><td></td><td></td><td>用于细胞培养</td></tr><tr><td>LysC</td><td>和光</td><td>125-05061</td><td>可选：用于质谱样品制备</td></tr><tr><td>适用于1.5-2 mL管子的磁力架</td><td>ThermoFisher</td><td>CS15000</td><td>用于裂解 &amp;amp; 亲和纯化</td></tr><tr><td>甲醇</td><td>VWR</td><td>EM-MX0475-1</td><td>蛋白质印迹法</td></tr><tr><td>微量离心管旋转仪</td><td></td><td></td><td>用于裂解 &amp;amp; 亲和纯化</td></tr><tr><td>微量移液器与无菌或高压灭菌的微量移液器吸头</td><td></td><td></td><td>用于细胞培养</td></tr><tr><td>适用于 96 孔板的 Microseal 封板膜</td><td>Bio-Rad</td><td>MSB1001</td><td>可选：将 FTA 插入内源性核糖体蛋白基因座</td></tr><tr><td>微量分光光度计</td><td>ThermoFisher</td><td>NanoDrop 2000</td><td>可选</td></tr><tr><td>质粒中提试剂盒 (Plasmid Plus Midi Kit)</td><td>Qiagen</td><td>12945</td><td>可选：用于将FTA插入内源性核糖体蛋白基因座</td></tr><tr><td>mLIF (10,000 U/&amp;micro;L)</td><td>双子座</td><td>400-495 10^7</td><td>用于细胞培养</td></tr><tr><td>多重索引试剂盒 (NEBNext 用于 Illumina 的多重寡核苷酸 (索引引物组 1 和 2))</td><td>NEB</td><td>E7335S, E7500S</td><td>可选：用于 RNA 测序文库制备</td></tr><tr><td>MyOne C1 链霉亲和素 Dynabeads</td><td>Thermo Fisher</td><td>65002</td><td>用于裂解 &amp;amp; 亲和纯化</td></tr><tr><td>免称量 DTT</td><td>ThermoFisher</td><td>PIA39255</td><td>裂解 &amp;amp; 亲和纯化</td></tr><tr><td>非必需氨基酸（100x）</td><td>默克密理博</td><td>TMS-001-C</td><td>用于细胞培养</td></tr><tr><td>非表达质粒骨架（TOPO 载体试剂盒）</td><td>ThermoFisher</td><td>450031</td><td>可选方案：将 FTA 插入内源性核糖体蛋白基因座</td></tr><tr><td>轨道式或倾斜式摇床</td><td></td><td></td><td>对于蛋白质印迹法</td></tr><tr><td>PBS 粉末</td><td>Fisher</td><td>BP661-10L</td><td>蛋白质印迹法</td></tr><tr><td>pCAGEN</td><td>Addgene&amp;nbsp;</td><td>11160</td><td>可选：用于设计额外的细胞器靶向ALIBi分裂酶构建体</td></tr><tr><td>PCR 热循环仪管</td><td></td><td></td><td>蛋白质印迹法</td></tr><tr><td>青霉素/链霉素（100x）</td><td>ThermoFisher</td><td>15140163</td><td>用于细胞培养</td></tr><tr><td>pH 试纸</td><td>Fisher</td><td>8881-1</td><td>可选：用于质谱样品制备</td></tr><tr><td>用于膜孵育的塑料托盘</td><td></td><td></td><td>对于蛋白质印迹法</td></tr><tr><td>适用于1.5-2 mL离心管的掌上离心机</td><td></td><td></td><td>用于裂解 &amp;amp; 亲和纯化</td></tr><tr><td>PCR管用掌上离心机</td><td></td><td></td><td>对于蛋白质印迹法</td></tr><tr><td>poly(A) mRNA 分离试剂盒 (NEBNext Poly(A) mRNA Magnetic Isolation Module)</td><td>新英格兰生物实验室</td><td>E7490</td><td>可选：用于RNA测序文库制备</td></tr><tr><td>适用于基因分型的聚合酶预混液（MyTaq Hot Start Red Mix）</td><td>BioLine</td><td>BIO-25048</td><td>可选步骤：将FTA插入内源性核糖体蛋白基因座</td></tr><tr><td>蛋白分子量标准</td><td>赛默飞世尔科技</td><td>26617</td><td>蛋白质印迹法</td></tr><tr><td>蛋白沉淀试剂盒（ProteoExtract 试剂盒）</td><td>默克密理博</td><td>539180</td><td>可选步骤：用于质谱分析的样品制备</td></tr><tr><td>蛋白酶K</td><td>默克密理博</td><td>3115879001</td><td>可选：用于将 FTA 插入内源性核糖体蛋白基因座</td></tr><tr><td>纯化水</td><td></td><td></td><td>对于蛋白质印迹实验，例如使用 Milli-Q（MilliporeSigma）过滤系统制备的水。</td></tr><tr><td>嘌呤霉素</td><td>默克密理博</td><td>P8833</td><td>可选：将 FTA 插入内源性核糖体蛋白基因座</td></tr><tr><td>PX459</td><td>Addgene</td><td>62988</td><td>可选：用于将FTA插入内源性核糖体蛋白基因座</td></tr><tr><td>红光头灯</td><td></td><td></td><td>用于转染</td></tr><tr><td>低血清培养基 (OptiMEM)</td><td>ThermoFisher</td><td>11058021</td><td>关于转染</td></tr><tr><td>RNA 柱式纯化试剂盒（RNA Clean） &amp;amp; Concentrator-5 试剂盒</td><td>Zymo</td><td>R1016</td><td>可选：用于RNA测序文库制备</td></tr><tr><td>RNA 文库制备试剂盒（NEBNext Ultra II Directional RNA Library Prep kit）</td><td>新英格兰生物实验室</td><td>E7760S</td><td>可选步骤：用于RNA测序文库制备</td></tr><tr><td>RNA 不粘附 1.5 毫升微量离心管</td><td>ThermoFisher</td><td>AM12450</td><td>可选：用于RNA测序文库制备</td></tr><tr><td>RNAseZap</td><td>Thermo Fisher Scientific</td><td>AM9784</td><td>用于裂解 &amp;amp; 亲和纯化</td></tr><tr><td>半干式转印试剂盒，内含 5x 转印缓冲液、PVDF 膜及转印滤纸组</td><td>Bio-Rad</td><td>1704272</td><td>对于蛋白质印迹</td></tr><tr><td>半干式转印系统</td><td>Bio-Rad</td><td>1704150</td><td>对于蛋白质印迹法</td></tr><tr><td>适用于 1.5-2 mL 微量离心管的振荡器</td><td></td><td></td><td>裂解 &amp;amp; 亲和纯化。应能达到最高 1000-2000 rpm 的转速。</td></tr><tr><td>超声波细胞破碎仪 (Microson Ultrasonic Cell Disruptor XL)</td><td>Misonix</td><td>XL-2000</td><td>裂解 &amp;amp; 亲和纯化</td></tr><tr><td>无菌 15 mL 与 50 mL 锥形管</td><td></td><td></td><td>用于细胞培养</td></tr><tr><td>无菌冻存管，容量 1.5-2 mL</td><td></td><td></td><td>用于细胞培养</td></tr><tr><td>无菌血清移液器和移液管</td><td></td><td></td><td>用于细胞培养</td></tr><tr><td>链霉亲和素-HRP</td><td>ThermoFisher</td><td>N100</td><td>对于蛋白质印迹法</td></tr><tr><td>SUPERase RNAse 抑制剂</td><td>ThermoFisher</td><td>AM2696</td><td>用于裂解 &amp;amp; 亲和纯化</td></tr><tr><td>SuperSignal West Femto 最大灵敏度底物试剂盒</td><td>赛默飞世尔科技</td><td>34095</td><td>蛋白质印迹法</td></tr><tr><td>热循环仪或加热块</td><td></td><td></td><td>蛋白质印迹法</td></tr><tr><td>硫脲</td><td>默克密理博</td><td>T8656</td><td>可选：用于质谱样品制备</td></tr><tr><td>组织培养超净工作台</td><td></td><td></td><td>用于细胞培养</td></tr><tr><td>组织培养空间及可遮光房间内的实验台空间</td><td></td><td></td><td>用于裂解 &amp;amp; 亲和纯化</td></tr><tr><td>TMT 6plex 标记</td><td>ThermoFisher</td><td>90066</td><td>可选：用于质谱样品制备</td></tr><tr><td>三乙基碳酸氢铵</td><td>ThermoFisher</td><td>T7408</td><td>可选：用于质谱样品制备</td></tr><tr><td>Triton X-100</td><td>默克密理博</td><td>T8787-250ML</td><td>用于裂解 &amp;amp; 亲和纯化</td></tr><tr><td>台盼蓝 (0.4%)</td><td>生命科技</td><td>15250-061</td><td>用于细胞培养</td></tr><tr><td>胰蛋白酶</td><td>ThermoFisher</td><td>90057</td><td>可选：用于质谱样品制备</td></tr><tr><td>Turbo DNAse</td><td>ThermoFisher</td><td>AM2238</td><td>裂解 &amp;amp; 亲和纯化。可选：用于RNA测序文库制备</td></tr><tr><td>Tween-20</td><td>MilliporeSigma</td><td>P9416</td><td>对于蛋白质印迹</td></tr><tr><td>超纯水</td><td>ThermoFisher</td><td>10977023</td><td>用于裂解 &amp;amp; 亲和纯化</td></tr><tr><td>尿素</td><td>默克密理博</td><td>U6504</td><td>可选步骤：用于质谱分析的样品制备</td></tr></tbody></table>

基于重组肽标签特异性定位限制性光照增强生物素化的亚细胞核糖体亚群分离

Isolation of Subcellular Ribosome Subpopulations Based on Recombinant Peptide Tag-Specific Location-Restricted Illumination-Enhanced Biotinylation

越来越多的证据表明，mRNA 翻译是细胞内一个高度区室化的过程，特定 mRNA 的亚细胞运输和定位对于确保具有区室特异性功能的蛋白质在适宜的微环境和适当数量下合成至关重要。然而，迄今为止，针对翻译这些 mRNA 的核糖体进行亚细胞分离和表征的技术仍十分有限，因此关于翻译机器的组成如何影响局部 mRNA 翻译调控，仍有许多未知之处。
本文展示了AviTag特异性的定位限制性光照增强生物素标记技术（ALIBi），该方法结合了表位标记、新开发的光遗传激活型分裂生物素连接酶以及亲和纯化技术，可快速且特异性地标记并分离定位于任意特定亚细胞区域的核糖体。首先，利用CRISPR/Cas9基因编辑技术将AviTag肽段、烟草蚀刻病毒（TEV）蛋白酶切割位点以及FLAG表位标签融合至一种核糖体蛋白上。在该细胞系中表达与细胞器靶向结构域融合的分裂型生物素连接酶，该酶在正常生物素浓度下处于非活性状态。当补充生物素并施加蓝光照射激活后，该连接酶可对邻近区域的AviTag标记核糖体进行生物素化，从而通过链霉亲和素包被的磁珠实现对生物素化核糖体及其结合蛋白和mRNA的亲和纯化。随后通过TEV蛋白酶切割实现非变性条件下的洗脱，获得的样品可用于后续分析，包括利用RNA测序或质谱蛋白质组学对核心核糖体蛋白、核糖体相关蛋白以及核糖体结合mRNA的表征。
在本实验方案中，我们回顾了将AviTag与核糖体蛋白融合以及将分裂的生物素连接酶靶向至目标细胞器的设计原则。我们展示了ALIBi系统的激活、细胞裂解、亲和纯化及样品洗脱的操作过程。最后，我们讨论了典型实验结果及常见问题的排查方法。

Western blot（方案第6部分）是初步评估实验是否成功最便捷的方法。当使用链霉亲和素-HRP探针检测膜时，所有系统组分均存在的细胞裂解液中应出现一条对应于生物素标记的L31-FTA的条带（图2A，第20泳道）。如果细胞转染了全长BirA作为阳性对照，则同一条带通常会更明显（图2A，第1–4泳道）。当缺失一个或多个系统组分时，该条带应变弱或消失（图2A，其余所有泳道）。由于哺乳动物细胞内源性含有多种分子量在70–80 kDa和120–130 kDa范围内的生物素化羧化酶蛋白34,35，因此在所有裂解液样本中通常均可观察到这些分子量的条带。此外，也可使用抗V5抗体探针膜以确认分裂BirA片段的表达。
通过蛋白质印迹（Western blot）检测裂解液、穿流液和洗脱液样品，可以评估亲和...

AviTag特异性定位限制性光照增强生物素化（ALIBi）是一种新型的光遗传学激活方法，用于标记和亲和纯化亚细胞区域的核糖体亚群，以进行后续的测序和蛋白质组学分析。

越来越多的证据表明，mRNA 翻译是细胞内一个高度区室化的过程，且 mRNA 的亚细胞运输和定位……

Our research investigates how ribosome composition and mRNA translation vary across subcellular domains to regulate local protein synthesis. Current methods lack spatial and temporal precision. ALIBi addresses this through optogenetically controlled proximity labeling of ribosomes.To begin, obtain L31FTA mouse embryonic stem cells and transfect them with ALIBi, GFP control, or full length BirA plasmids. After 24 to 48 hours of transfection, pre-chill the centrifuge to four degrees Celsius. With the lights off, move the transfected plates to a temporary 37-degree Celsius incubator.To prevent temperature fluctuations, once the transilluminator is placed in the main incubator, using 70%ethanol, wipe down the blue light transilluminator. After connecting the transilluminator to power, place it in the main incubator. Allow the incubator conditions to reequilibrate, while continuing the setup.Warm an aliquot of media to 37 degrees Celsius for dosing with biotin and cyclohexamide, or CHX. If preparing control samples without supplemental biotin, warm a separate aliquot for CHX-only dosing. Chill an aliquot of DPBS intended for CHX dosing.Prepare the RNase removal buffer, salt wash, lysis buffer, and wash buffers. Using a pipette, mix buffers containing dense or viscous components to ensure even mixing. Chill the prepared buffers on ice before use.Re-suspend the stock bottle of streptavidin beads by gentle pipetting or rocking. Transfer 450 microliters of beads into a protein low binding tube for each 10 centimeter plate of cells. Place the re-suspended beads on the magnetic rack for one minute, or until the beads have fully migrated.Aspirate and discard the bead storage buffer without touching the bead pellet. Wash the beads two times with 900 microliters of RNAs removal buffer. Wash the beads once with 900 microliters of salt wash.Wash the beads two times with 900 microliters of wash I buffer. Store the beads in the wash I buffer at four degrees Celsius while performing activation and cell lysis. Add biotin and CHX to the warmed aliquot of media and keep at 37 degrees Celsius until use.Add CHX to the cold DPBS aliquot and keep it chilled until use. Aspirate the media from the transfected plates. Immediately add 10 milliliters of warm media containing CHX with or without Biotin to each plate.Place negative control plates in a dark incubator. Place the remaining plates directly on top of the transilluminator. Turn on the transilluminator and incubate the plates for 15 minutes.Wash each plate two times with the 10 milliliters of cold DPBS containing CHX. Place the plates on ice between and after washes. After aspirating the second wash, tilt the plate and aspirate any residual DPBS.Keeping the plate flat on ice, add two milliliters of ice-cold lysis buffer and incubate the plate on ice for five minutes. Tap the plate two to three times during incubation to dislodge cells. Using a micropipette, pipette the lysate up and down across the plate surface to dislodge any remaining cells.Transfer the lysate to a chilled labeled protein low binding tube. In difficult to lyse organelles, sonicate all samples for 45 seconds at four degrees Celsius. And if required, transfer the lysate into a larger tube before sonication.Transfer the sonicated lysate into a two-milliliter tube. Incubate the lysate on ice for 15 minutes. Centrifuge the lysate at 17, 000 G for three minutes at four degrees Celsius.Transfer the supernatant into a chilled protein low binding tube without disturbing the pellet. Using a magnetic rack, pellet the washed strepped avident beads. Aspirate the wash one buffer.Transfer 1, 200 microliters of clarified lysate to the tube containing the washed beads. Pipette up and down gently to re-suspend the beads. Store the remaining clarified lysate at minus 80 degrees Celsius.Incubate the lysate with the beads at four degrees Celsius in the dark on a tube rotator for one hour. During the incubation, prepare the Tobacco Etch Virus, or TEV elution buffer. Pellet the beads on a magnetic rack.Transfer the supernatant to a chilled protein low binding tube. Store the supernatant at minus 80 degrees Celsius. Wash the beads two times with 900 microliters of wash I buffer and once with 900 microliters of wash II buffer.Add 450 microliters of TEV elution buffer to the beads. Incubate the beads in TEV elution buffer for one hour at room temperature on a tube rotator. Pellet the beads on the magnetic rack.Transfer the elute to a protein low binding tube. Store the eluate at minus 80 degrees Celsius if proteomics analysis or Western blot is intended. Cells containing all system components showed a L31-FTA band, which was stronger with full length burray and faint or absent when components were omitted.Endogenous biotinilated carboxylase proteins were detected in all lysates at 70 to 80 kilodaltons and 120 to 130 kilodaltons. ANTV5 probing confirmed expression of the split bore fragments. Biotinillated L31FTA decreased in the flow through relative to the lysate.No biotinillated L31-FTA was present in the eluate following TEV-mediated elution. Anti-flag probing showed a cleaved L31-FTA band at a lower molecular weight than intact L31-FTA ribosomal protein. S12 probing demonstrated the presence of the small ribosomal subunit in the eluate.Anti-V5 probing showed that proteins that do not bind the ribosome were absent from the eluate. When 2.5 fold more lysate was used with the same 450 microliters of streptavidin coated beads, a substantial amount of biotinilated L31-FTA remained in the flow through. Endogenous biotinilated proteins were partially depleted in the flow through.Endogenous biotinillated proteins were absent from the eluet, but were recovered after heating post-dilution beads in lambly buffer. Anti-flag probing detected cleaved L31-FTA at a lower molecular weight than intact L31-FTA. Anti-V5 probing showed that the split burray fragments were absent from the eluate.ALIBi enables the identification of ribosome-bound proteins and mRNAs in specific subcellular regions, revealing differences in translation regulation. The key challenge is maintaining specific proximity labeling through careful control of targeting construct expression and illumination conditions. Following this protocol, affinity purified ribosomes and associated mRNAs can be analyzed using quantitative proteomic and transcriptomic approaches.

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Research

科研

JoVE Journal

Biology

生物学

基于重组肽标签特异性位置限制光增强生物素化的亚细胞核糖体亚群分离

对含有新生肽酰-tRNA的核糖体进行生化分析的主要障碍在于，同一样品中存在其他核糖体，这些核糖体并未参与待分析的特定mRNA序列的翻译。我们开发了一种简单的方法，可特异性纯化仅含有目标新生肽酰-tRNA的核糖体。...

分离含有肽基-tRNA的翻译核糖体用于功能与结构分析

本文描述了一种用于鉴定mRNA上翻译暂停位点的技术。该方法基于在体外翻译目标mRNA时，分离在核糖体上积累的新生多肽链，随后通过变性凝胶电泳对新生肽链的大小进行分析。...

核糖体结合新生多肽的分离 体外 识别mRNA上的翻译暂停位点

本文介绍一种目前常规用于分离稳定结合的核糖体新生肽链复合物（RNCs）的技术。该技术利用了以下发现：当一段长为17个氨基酸的SecM“阻滞序列”被插入（或融合至C末端）几乎任何蛋白质时，可在原核生物（E.

利用SecM阻滞序列作为分离核糖体结合多肽的工具

基于肽段的功能基序及其结合伴侣的鉴定

本方案介绍了多核糖体分级分离的关键改进方法，用于研究体内中枢神经系统（CNS）样本的翻译组。通过分离并比较总RNA与核糖体结合的RNA组分，可实现对翻译和转录调控的全局评估。...

in vivo 中通过多聚核糖体分级分离研究中枢神经系统翻译组

本文介绍了一种利用光亲和标记技术鉴定小分子结合蛋白的方法。该技术的优势在于，目标蛋白的结合及共价标记过程均在活细胞环境中进行，从而避免了细胞裂解可能对天然蛋白结构及结合条件造成的破坏。...

通过活细胞光亲和标记在天然细胞环境中鉴定小分子结合蛋白

我们介绍一种从复杂的生物样品中纯化、检测和鉴定来源于泛素化蛋白质的diGly肽的方法。该方法具有良好的重复性和稳健性，在泛素化修饰组分析的深度方面优于已发表的方法。...

通过肽段富集与质谱法检测蛋白质泛素化位点

本文介绍了利用RiboTag系统从成年雄性小鼠特定生殖细胞群体中免疫沉淀核糖体及其结合RNA的方法。通过合理的杂交育种和严谨的免疫沉淀操作，可获得纯净且可重复的结果，从而揭示生殖细胞的翻译组特征，并有助于深入理解突变表型的作用机制。...

雄性小鼠生殖细胞中的RiboTag免疫沉淀

单分子荧光能量转移是一种用于追踪核糖体蛋白质合成过程中tRNA动态变化的方法。通过追踪单个核糖体，可以识别出非均质的群体，从而揭示其作用机制。该方法也可广泛用于追踪生物分子的构象变化，以阐明多种复杂生物系统中动态特性与功能之间的关系。单分子方法能够观测到传统系综方法因平均效应而无法捕捉的非限速步骤以及低丰度的关键中间态。...

单分子荧光能量转移研究核糖体蛋白质合成

共翻译相互作用在新生肽链的修饰、定位、折叠和组装过程中起着关键作用。本文介绍了选择性核糖体谱分析法，这是一种用于在模式真核生物Saccharomyces...

通过选择性核糖体谱分析全局鉴定共翻译相互作用网络

我们提出了一种两步法高纯度线粒体分离方案，适用于蛋白质组水平的蛋白质鉴定与定量分析。该方案无需基因工程操作，因此适用于从任何原代细胞和组织中提取线粒体进行研究。...

无标记两步法分离线粒体以提升蛋白质发现与定量

Stanford School of Medicine.  AviTag特异性位置限制照明增强生物素化（ALIBi）是一种新型光遗传激活方法，用于标记和纯化核糖体亚细胞群，用于下游测序和蛋白质组分析。

基于重组肽标签特异性定位限制性光照增强生物素化的亚细胞核糖体亚群分离

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