2024年10月4日
本文介绍一种经济且可重复的方法,用于演示组氨酸在山羊肠道中的膜转运过程。该过程通过肠上皮细胞膜两侧的钠离子梯度驱动,实现组氨酸与钠离子的共转运。本方法采用体验式学习教学法,以增进对溶质在生物膜间转运机制的理解。
本文提出了一种面向生物学专业本科生的教学工具,用于演示膜转运的概念。我们的目标是通过一种简单、易于操作且成本低廉的实验方案,展示组氨酸(一种氨基酸)穿越肠上皮细胞膜的转运过程,该实验几乎可在任何实验室中进行。目前本科实验教学面临的一个挑战是,动物解剖已被禁止。
现在,由于这一原因,我们从一家常见的供应商处获取肠道组织。然而,我们获得的肠道组织存在一个问题,即它们并非来自同源系动物。因此,我们所获得的动物样本之间会存在变异性。
目前,尚缺乏简单且易于操作的实验来帮助学生理解膜转运的概念。大多数现有方法使用危险化学品,不适合在本科教学环境中开展。因此,本技术展示了一种XVIVO装置,该装置不依赖于无细胞提取物,而是使用可来源于多种可获取哺乳动物组织的组织样本,这正是本方法的明显优势所在。
首先,将山羊内脏放入磷酸盐缓冲液(PBS)中,确保完全浸没以进行清洗。分离小肠与大肠。使用剪刀去除外部结缔组织。
使用10毫升注射器以PBS轻柔冲洗小肠,以去除未消化的食物残渣,获得一个中空的小肠袋。使用直尺测量小肠的全长。将小肠分为三部分:十二指肠,其余部分均等分为空肠和回肠。
使用刀片去除所有结缔组织,以清洗空肠。将空肠切成12至15厘米长的节段。用PBS洗涤节段后,将其置于含有PBS的培养皿中。
使用玻璃棒将空肠部分翻转,使绒毛暴露于外侧。用 PBS 轻柔冲洗翻转后的空肠部分。检查翻转后的空肠边缘是否有任何泄漏。
然后将倒置的空肠部分切成五厘米长的肠段。用细绳结扎每段肠的一端。向肠段内注入 PBS 以重新检查是否有肉眼可见的渗漏。
将囊的另一端系紧,制成外表面带有绒毛的空的翻转囊。用滤纸轻拍翻转囊,重新检查是否有外部泄漏。首先,准备两组各三个50毫升试管,内含不同浓度的氯化钠溶液。
将制备好的肠囊分别浸入指定的试管中,每组分别放置30分钟和60分钟。到达指定时间后,将肠囊内的溶液排入单独的1.5毫升微量离心管中,并测定其体积。使用2毫升注射器抽吸肠囊内的液体。
为组氨酸创建标准曲线,需使用组氨酸储备液和水配制不同浓度的组氨酸溶液。然后向每支试管中加入磺基水杨酸和硝酸钠。室温孵育5分钟后,向每支试管中加入1毫升碳酸钠和乙醇。
最后,在490纳米波长处测定吸光度。采用Poly反应测定组氨酸时,在组氨酸浓度达到300微摩尔以下时符合朗伯-比尔定律。在空肠肠上皮细胞中,组胺的摄取与钠离子浓度之间存在相关性。
本研究介绍了一种经济高效且可重复的方法,用于演示组氨酸在山羊肠道肠上皮细胞膜上的转运过程。该方法利用钠离子共转运机制,突出显示了钠离子梯度在溶质移动中的作用。
利用离体肠囊进行膜转运实验,为研究与营养吸收及转运蛋白生物学相关的氨基酸吸收机制提供了一个可操作的系统。通过定量测量组氨酸在钠离子梯度下的转运情况,可实现对作用机制的去风险化分析,并增强早期转运蛋白靶点验证的预测可靠性。该方法为溶质转运蛋白功能的评估提供了可重复的实验平台,有助于指导发现阶段的研发管线决策。
这种离体肠囊实验位于早期发现和靶点验证工作流程之中,可用于先导化合物的鉴定以及转运体功能的机制研究。