2025年8月8日
尽管原核生物缺乏细胞器系统,但其细胞内存在特定的亚细胞区域,这些区域含有定位的蛋白质。对亚细胞区域中酶和蛋白质进行定性与定量分析,对于开发药物和疫苗靶点具有重要意义。本文以Triton X-114为例,介绍钩端螺旋体蛋白的亚细胞分级分离及其分析方法。
我们正在分离钩端螺旋体中的亚细胞蛋白质,以研究蛋白质的定位,这有助于识别致病性革兰氏阴性菌中的毒力因子。目前,亚细胞蛋白质组学采用高通量质谱技术并优化分级分离方法,以更高精度解析病原体的蛋白质结构。一个典型应用是毒力因子的检测。我们利用基于Triton-X-114的分离技术、液相色谱-串联质谱(LCMS-MS)、SDS-PAGE以及免疫印迹法来提取并鉴定细菌中特定区室的蛋白质。在提取过程中保持蛋白质完整性、优化去污剂条件以及避免不同细胞组分之间的交叉污染,仍是该领域的主要挑战。我们的目标是绘制致病菌在感染过程中蛋白质组的动态变化图谱,并尝试发现潜在的毒力因子。
[旁白] 首先,在添加了1% BSA的Ellinghausen-McCullough Johnson Harris培养基中培养问号钩端螺旋体(Leptospira interrogans)。经过七天的培养后,将钩端螺旋体培养物的生物学重复样品转移至50毫升离心管中。在4°C条件下,以2,500 G离心45分钟。将上清液倾倒至含有消毒剂的烧杯中并弃去。保留细胞沉淀用于下一步操作。用1毫升添加了5毫摩尔氯化镁的PBS缓冲液将每个细胞沉淀洗涤三次。每次洗涤后,在4°C条件下以10,000 G离心10分钟。用1毫升裂解缓冲液处理收获的钩端螺旋体细胞沉淀。在低于25°C的条件下,使用移液器轻轻混匀缓冲液与沉淀,直至溶液明显变浑浊。将混合物在4°C条件下孵育过夜。用移液器混匀过夜孵育后的提取物,然后在4°C条件下以15,000 G离心30分钟。小心地将上清液倾倒至干净的小瓶中,并保留细胞沉淀用于下一步。现在,向保留的沉淀中加入50微升含有蛋白酶抑制剂混合物的缓冲液。持续涡旋震荡该离心管5分钟,然后在4°C条件下再孵育5分钟。随后在4°C条件下以15,000 G离心30分钟。接着,将提取的上清液中的Triton-X-114浓度调整至2%。将混合物在37°C条件下孵育1小时,然后在30°C条件下以2,000 G离心5分钟以促进相分离。静置混合物1分钟以完成分离。为分离上层水相,使用无菌注射器穿刺界面并将水相转移至另一小瓶中。
通过SDS-PAGE电泳及随后的免疫印迹分析,证实LipL41蛋白存在于水相、去垢剂相及沉淀组分中,表明其分布于所有细胞区室。FlaB蛋白仅在沉淀组分中被检测到,证实其定位于与内膜相关的胞周间隙。
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本研究聚焦于从钩端螺旋体中分离亚细胞蛋白质,以了解其定位,从而有助于鉴定致病性革兰氏阴性菌中的毒力因子。研究采用高通量质谱分析和优化的分级分离技术,以提高病原体蛋白质分析的精确度。
使用Triton X-114对Leptospira进行亚细胞蛋白分级分离,可精确绘制蛋白质定位图谱,直接为病原体研究中的靶点验证和机制性风险排除提供依据。该实验流程有助于鉴定特定区室的毒力因子,从而提高早期抗感染药物发现的预测可信度。该方法通过在革兰氏阴性菌中实现可重复且定量的亚细胞蛋白质组学分析,解决了项目筛选过程中一个关键的转折点问题。
这种分级分离方法可融入传染病研究中从早期假设验证到先导物鉴定及临床前验证的整个发现流程。