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巨噬细胞-肿瘤球状体共侵袭测定
巨噬细胞-肿瘤球状体共侵袭测定
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Cancer Research
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JoVE Journal Cancer Research
A Macrophage-Tumor Spheroid Co-Invasion Assay

巨噬细胞-肿瘤球状体共侵袭测定

Full Text
1,125 Views
09:01 min
January 24, 2025

DOI: 10.3791/67374-v

Sven Hey1, Stefan Linder1

1Institute for Medical Microbiology, Virology and Hygiene,University Medical Center Hamburg-Eppendorf

AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

在这里,我们提出了一种方案来研究原代人单核细胞衍生的巨噬细胞与三维 (3D) 胶原蛋白 I 基质中肿瘤球体的相互作用,并有可能比较微环境的可溶性和物理特性对细胞侵袭的影响。

我们想研究癌症和免疫细胞的相互作用,以更好地了解它们在转移过程中如何相互作用。在大多数情况下,体内模型是在免疫系统的背景下研究有关 3D 癌细胞侵袭的研究问题的常规方法,或者系统的孤立组件是重点。一种允许分析细胞行为的方法,它模拟了体内情况的复杂性,但允许在显微镜下更直接地纵特定的环境特征。

我们证明,当未改变的癌细胞与已耗尽运动蛋白 KIF16B 的巨噬细胞共培养时,它们将减少对 3D 胶原蛋白 I 基质的侵袭。这表明 KIF16B 驱动的巨噬细胞表面蛋白回收在肿瘤微环境中的作用。我们希望继续改进我们的方法,以允许在巨噬细胞癌细胞环境的界面处可视化基质降解,从而更好地了解降解和粘附机制。

首先,在 37 摄氏度和 5% 二氧化碳的 25 平方厘米细胞培养瓶中用癌细胞培养基培养 H1299 GFP 细胞,直到它们达到 80% 汇合。用 DPBS 洗涤细胞一次,然后加入 1 毫升胰蛋白酶-EDTA,持续 2 至 3 分钟,直至细胞分离。通过添加 2 mL 癌细胞培养基来终止酶促反应。

接下来,将分离的细胞悬液放入 15 mL 试管中,以 245 G 离心 5 分钟。除去含有胰蛋白酶溶液的上清液,然后用 5 毫升 DPBS 洗涤沉淀。离心后,将沉淀重悬于 5 mL 癌细胞培养基中。

使用 Neubauer 室对细胞进行计数。将 8, 000 个细胞转移到最终体积为 25 μL 癌细胞培养基的 96 孔超低粘附板中。将细胞在 37 摄氏度和 5% 二氧化碳下孵育三天。

三天后,在显微镜下检查球体的均匀性。采集人血样后,将 20 毫升血液从输液袋转移到 50 毫升反应管中。将 15 mL 淋巴细胞分离培养基加入新的 50 mL 试管中。

小心地将 20 毫升血液转移到含有淋巴细胞分离培养基的试管中,不要混合,然后将混合物在 4 摄氏度下以 450 G 离心 30 分钟。离心过程中,将 10 mL 冷 RPMI 1640 培养基加入新的 50 mL 试管中。离心后,将致密的白色相从含血管转移到准备好的含 RPMI 的试管中,并用冷 RPMI 填充至 50 mL。

将

悬浮液在 4 °C 下以 450 G 离心 10 分钟,然后弃去上清液。将沉淀重悬于 10 mL 冷 RPMI 中,并用 RPMI 1640 填充至 50 mL。再次离心混合物,然后将沉淀重新悬浮在 50 毫升 RPMI 中。

再次离心样品,并将细胞沉淀重悬于 1.5 mL 冷单核细胞缓冲液中。接下来,在细胞悬液中加入 250 μL 抗 CD14 MicroBeads,并在冰上孵育 15 分钟。在孵育过程中,通过将过滤器连接到磁性分离架上来制备分离柱。

向柱中加入 900 μL 单核细胞缓冲液进行平衡。孵育后,将细胞悬液倒入过滤器上,使其在重力作用入废液管。加入 1 mL 单核细胞缓冲液以洗涤含有与磁珠结合的细胞的色谱柱。

将柱下的废液管更换为含有 20 mLL RPMI 的新鲜 50 mLL 试管。向柱中加入 3 mL 单核细胞缓冲液。从磁力架上取下色谱柱并贴上邮票。

将细胞压入准备好的 50 毫升试管中,并用 RPMI 填充至 30 毫升。在光学显微镜下使用 Neubauer 计数室对细胞进行计数,并用 RPMI 将细胞数调整为每毫升 6 个细胞的幂次方 10 的两倍。将 1 毫升细胞悬液接种到 6 孔室的每个孔中,并在 37 摄氏度下与 5% 二氧化碳孵育 2 到 4 小时。

孵育后,检查细胞是否正确粘附,并用 1.5 毫升单培养基替换 RPMI。继续孵育长达 6 天,直到单核细胞分化为巨噬细胞。在六孔板中从供体血液样品中获得原代人巨噬细胞后,加入 500 μL Accutase,孵育 40 分钟以分离巨噬细胞。

然后加入 500 μL 培养基并转移到 15 mL离心管中进行离心。然后用 2 毫升 DPBS 洗涤细胞一次,并用 Neubauer 室计数。在 40 微升胶原蛋白 I 混合物中稀释所需数量的巨噬细胞,并短暂涡旋试管。

要清洗球体,请将 300 微升 DPBS 添加到 96 孔板的孔中。使用带有切割端的 1 毫升蓝色移液器吸头收集带有 DPBS 的类固醇。一旦类固醇进入吸头,将移液器短暂推到成像室的底部,以通过表面张力转移肿瘤类固醇。

尽可能多地去除与类固醇转移的残留 DPBS。将 40 微升胶原蛋白 I 巨噬细胞混合物迅速添加到含有类固醇的成像室中。在潮湿条件下,在 37 摄氏度和 5% 二氧化碳下孵育板 30 分钟,以充分聚合胶原蛋白混合物。

聚合后,小心地向每个孔中加入 25 μL 癌细胞培养基,并继续孵育 3 天。在所需的时间点使用激光扫描显微镜对活体样品进行成像。在侵袭的第 3 天,测量 H1299 GFP 球体面积为 40、307 平方微米,而球体周长为 1700.17 微米,表明随着时间的推移而增长。

观察到癌细胞从球体集体侵袭。鉴定出 51 个分离的颗粒,作为单个癌细胞侵袭的指标。椭球体保持 1.10 的纵横比和 0.18 的圆度,显示出低变形。

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巨噬细胞-肿瘤共侵袭检测 免疫和癌细胞相互作用 转移研究 体外实验方案 H1299 非小细胞肺癌 三维 (3D) 胶原蛋白基质 基于 SiRNA 的去除 癌细胞侵袭 球状体面积测量 共培养设置

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