RESEARCH
Peer reviewed scientific video journal
Video encyclopedia of advanced research methods
Visualizing science through experiment videos
EDUCATION
Video textbooks for undergraduate courses
Visual demonstrations of key scientific experiments
BUSINESS
Video textbooks for business education
OTHERS
Interactive video based quizzes for formative assessments
Products
RESEARCH
JoVE Journal
Peer reviewed scientific video journal
JoVE Encyclopedia of Experiments
Video encyclopedia of advanced research methods
EDUCATION
JoVE Core
Video textbooks for undergraduates
JoVE Science Education
Visual demonstrations of key scientific experiments
JoVE Lab Manual
Videos of experiments for undergraduate lab courses
BUSINESS
JoVE Business
Video textbooks for business education
Solutions
Language
zh_CN
Menu
Menu
Menu
Menu
DOI: 10.3791/67374-v
Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.
在这里,我们提出了一种方案来研究原代人单核细胞衍生的巨噬细胞与三维 (3D) 胶原蛋白 I 基质中肿瘤球体的相互作用,并有可能比较微环境的可溶性和物理特性对细胞侵袭的影响。
我们想研究癌症和免疫细胞的相互作用,以更好地了解它们在转移过程中如何相互作用。在大多数情况下,体内模型是在免疫系统的背景下研究有关 3D 癌细胞侵袭的研究问题的常规方法,或者系统的孤立组件是重点。一种允许分析细胞行为的方法,它模拟了体内情况的复杂性,但允许在显微镜下更直接地纵特定的环境特征。
我们证明,当未改变的癌细胞与已耗尽运动蛋白 KIF16B 的巨噬细胞共培养时,它们将减少对 3D 胶原蛋白 I 基质的侵袭。这表明 KIF16B 驱动的巨噬细胞表面蛋白回收在肿瘤微环境中的作用。我们希望继续改进我们的方法,以允许在巨噬细胞癌细胞环境的界面处可视化基质降解,从而更好地了解降解和粘附机制。
首先,在 37 摄氏度和 5% 二氧化碳的 25 平方厘米细胞培养瓶中用癌细胞培养基培养 H1299 GFP 细胞,直到它们达到 80% 汇合。用 DPBS 洗涤细胞一次,然后加入 1 毫升胰蛋白酶-EDTA,持续 2 至 3 分钟,直至细胞分离。通过添加 2 mL 癌细胞培养基来终止酶促反应。
接下来,将分离的细胞悬液放入 15 mL 试管中,以 245 G 离心 5 分钟。除去含有胰蛋白酶溶液的上清液,然后用 5 毫升 DPBS 洗涤沉淀。离心后,将沉淀重悬于 5 mL 癌细胞培养基中。
使用 Neubauer 室对细胞进行计数。将 8, 000 个细胞转移到最终体积为 25 μL 癌细胞培养基的 96 孔超低粘附板中。将细胞在 37 摄氏度和 5% 二氧化碳下孵育三天。
三天后,在显微镜下检查球体的均匀性。采集人血样后,将 20 毫升血液从输液袋转移到 50 毫升反应管中。将 15 mL 淋巴细胞分离培养基加入新的 50 mL 试管中。
小心地将 20 毫升血液转移到含有淋巴细胞分离培养基的试管中,不要混合,然后将混合物在 4 摄氏度下以 450 G 离心 30 分钟。离心过程中,将 10 mL 冷 RPMI 1640 培养基加入新的 50 mL 试管中。离心后,将致密的白色相从含血管转移到准备好的含 RPMI 的试管中,并用冷 RPMI 填充至 50 mL。
将悬浮液在 4 °C 下以 450 G 离心 10 分钟,然后弃去上清液。将沉淀重悬于 10 mL 冷 RPMI 中,并用 RPMI 1640 填充至 50 mL。再次离心混合物,然后将沉淀重新悬浮在 50 毫升 RPMI 中。
再次离心样品,并将细胞沉淀重悬于 1.5 mL 冷单核细胞缓冲液中。接下来,在细胞悬液中加入 250 μL 抗 CD14 MicroBeads,并在冰上孵育 15 分钟。在孵育过程中,通过将过滤器连接到磁性分离架上来制备分离柱。
向柱中加入 900 μL 单核细胞缓冲液进行平衡。孵育后,将细胞悬液倒入过滤器上,使其在重力作用入废液管。加入 1 mL 单核细胞缓冲液以洗涤含有与磁珠结合的细胞的色谱柱。
将柱下的废液管更换为含有 20 mLL RPMI 的新鲜 50 mLL 试管。向柱中加入 3 mL 单核细胞缓冲液。从磁力架上取下色谱柱并贴上邮票。
将细胞压入准备好的 50 毫升试管中,并用 RPMI 填充至 30 毫升。在光学显微镜下使用 Neubauer 计数室对细胞进行计数,并用 RPMI 将细胞数调整为每毫升 6 个细胞的幂次方 10 的两倍。将 1 毫升细胞悬液接种到 6 孔室的每个孔中,并在 37 摄氏度下与 5% 二氧化碳孵育 2 到 4 小时。
孵育后,检查细胞是否正确粘附,并用 1.5 毫升单培养基替换 RPMI。继续孵育长达 6 天,直到单核细胞分化为巨噬细胞。在六孔板中从供体血液样品中获得原代人巨噬细胞后,加入 500 μL Accutase,孵育 40 分钟以分离巨噬细胞。
然后加入 500 μL 培养基并转移到 15 mL离心管中进行离心。然后用 2 毫升 DPBS 洗涤细胞一次,并用 Neubauer 室计数。在 40 微升胶原蛋白 I 混合物中稀释所需数量的巨噬细胞,并短暂涡旋试管。
要清洗球体,请将 300 微升 DPBS 添加到 96 孔板的孔中。使用带有切割端的 1 毫升蓝色移液器吸头收集带有 DPBS 的类固醇。一旦类固醇进入吸头,将移液器短暂推到成像室的底部,以通过表面张力转移肿瘤类固醇。
尽可能多地去除与类固醇转移的残留 DPBS。将 40 微升胶原蛋白 I 巨噬细胞混合物迅速添加到含有类固醇的成像室中。在潮湿条件下,在 37 摄氏度和 5% 二氧化碳下孵育板 30 分钟,以充分聚合胶原蛋白混合物。
聚合后,小心地向每个孔中加入 25 μL 癌细胞培养基,并继续孵育 3 天。在所需的时间点使用激光扫描显微镜对活体样品进行成像。在侵袭的第 3 天,测量 H1299 GFP 球体面积为 40、307 平方微米,而球体周长为 1700.17 微米,表明随着时间的推移而增长。
观察到癌细胞从球体集体侵袭。鉴定出 51 个分离的颗粒,作为单个癌细胞侵袭的指标。椭球体保持 1.10 的纵横比和 0.18 的圆度,显示出低变形。
View the full transcript and gain access to thousands of scientific videos
Related Videos
09:18
Related Videos
22.4K Views
02:02
Related Videos
1.6K Views
03:18
Related Videos
683 Views
12:19
Related Videos
59.4K Views
05:34
Related Videos
33.8K Views
09:23
Related Videos
14.7K Views
07:46
Related Videos
25.4K Views
08:15
Related Videos
16.3K Views
06:27
Related Videos
9.5K Views
07:44
Related Videos
12.4K Views