Name: 兔模型中视神经挤压的手术方法 (视频) | JoVE Journal
Uploaded: 2025-07-08T14:20:00.000+00:00
Duration: 6 min 15 s
Description: 学习在兔模型中进行视神经挤压手术的标准眼科技术。该方法通过瞳孔反应和视觉诱发电位验证视功能损伤，为研究视神经病变和开发治疗策略提供可靠的实验模型。

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本工作由国家眼科研究所资助，资助编号为 K08-EY033407 和 P30-EY026877，以及“预防失明研究”组织。

本研究中使用了新西兰白兔（4.4 - 4.8 kg）。动物实验设计遵循ARVO关于眼科与视觉研究中动物使用指南。斯坦福大学机构动物护理和使用委员会对这些实验进行了审查并批准实施（方案编号：APLAC-33781）。
1. ONC
<ol>
	<li>按照兽医服务中心（VSC）指南对兔子（n = 4）进行麻醉，以确保整个操作过程中兔子充分镇静且无痛。简要而言，皮下注射氯胺酮（30 mg/kg）和赛拉嗪（3 mg/kg）。 
	注意：通过评估多个麻醉深度参数（包括脚趾夹捏反应和下颌张力）来确认麻醉的手术平面。</li>
	<li>在手术开始时，皮下注射缓释布托啡诺（0.15 mg/kg）以提供镇痛，并给予马罗皮坦柠檬酸盐（2 mg/kg）以促进平稳恢复。每5–15分钟监测一次动物的生命体征和麻醉深度，以确保其健康状况。</li>
	<li>提供热源，例如电热垫或循环水毯，并根据体温调节设置。</li>
	<li>根据需要通过面罩提供1-4%异氟烷或1-6%七氟烷以维持麻醉。</li>
	<li>在操作前约5-15分钟，给予丙帕卡因（0.5%）、去氧肾上腺素（2.5%）和托吡卡胺（1%）滴眼液的联合用药。 
	注意：眼药水可提供局部麻醉和散瞳作用27.</li>
	<li>将兔子侧卧放置，使右眼暴露（图1）。使用标准无菌技术，将5%聚维酮碘溶液涂抹于眼部、睫毛及眼周皮肤进行消毒。</li>
	<li>再次滴用丙帕卡因眼药水以加强局部麻醉。</li>
	<li>为保持无菌，用保鲜膜覆盖动物标本28，于右眼处留出一个约眼睛大小的小孔开口（图1).
	<ol>
		<li>仅握住每张保鲜膜的顶部和底部边缘进行操作，因为它们已粘贴在桌面下方，不会影响无菌状态。</li>
		<li>佩戴无菌手套，并确保所有经高压灭菌的手术器械在操作过程中始终处于无菌区域内。每只动物使用一套全新的器械。</li>
	</ol>
	</li>
	<li>在近角膜缘的上方周边角膜处放置一条部分厚度角膜牵引缝线（8-0），轻柔地将眼球下转，以更好地暴露位于上方的兔视神经图2A).</li>
	<li>进行结膜环切术（即在角膜周围切开结膜）29 使用Westcott剪刀和0.12 mm镊子从10点方向到2点方向进行操作。</li>
	<li>使用Wescott剪刀仔细钝性分离Tenon囊，以暴露其下方的上直肌和上斜肌。</li>
	<li>使用肌肉钩分离上部肌肉（图2B).</li>
	<li>使用标准斜视手术技术，以双针8-0缝线固定钩状肌肉30 (图2C）。简要步骤如下：将缝线全层穿过上方肌肉的中心位置，并使用外科结打结固定。然后，将针以半层厚度从肌肉中心沿肌肉长度方向穿至肌肉边缘。反手持针，从肌肉背面全层向前穿出。将持针器穿过线环以夹住针体。 
	注意：拉紧第一根缝合针可收紧并固定肌肉的一半；然后使用第二根缝合针以镜像方式固定肌肉的另一半。</li>
	<li>使用Wescott剪刀将肌肉从眼球上分离，注意不要剪断置于肌肉上的缝线。</li>
	<li>用角膜缝线轻柔地向下牵拉眼球，并向上牵拉肌腱缝线以暴露眶内锥体腔隙图 2D).</li>
	<li>轻轻钝性分离周围的眼眶组织，以充分暴露视神经。
	<ol>
		<li>不要切割眼眶内的任何组织，仅使用钝性分离。避免损伤涡静脉（图 2D).</li>
		<li>必要时使用肌肉钩来定位并分离视神经（图2E). 
		注意：兔的视神经位置略偏上方，周围被眶后组织（包括白色脂肪）包绕。该神经呈白色，直径约1 mm。长 posterior ciliary 动脉沿视神经乳头下方的3点和9点子午线走行，可作为定位视神经的解剖标志。31.</li>
	</ol>
	</li>
	<li>使用持针器夹闭视神经60秒以诱导 crush 损伤，之后将出现可见的压痕（图 2F，G。压榨部位位于视神经乳头后方约3 mm处，以避免损伤眼动脉。使用带锁止功能的持针器，以确保所有视神经压榨处理中施加的力保持一致，从而使各实验兔的视神经损伤程度具有可比性。</li>
	<li>将上部肌肉重新复位至其在眼球上的原始位置图 2H）。将先前用于固定上直肌和上斜肌的两根针部分厚度穿过原肌肉附着点。拉紧缝线并打外科结30.</li>
	<li>通过间断缝合将结膜缝合至角膜缘以完成操作（图 2I).</li>
	<li>在操作结束时，皮下注射加温的晶体液（10 mL/kg）和美洛昔康（0.5 mg/kg）以提供镇痛。关闭气体麻醉以恢复动物意识，并通过肌肉注射阿替美唑（0.3 mg/kg）逆转赛拉嗪的作用。在恢复期间，皮下注射缓释布托啡诺（0.15 mg/kg）。</li>
	<li>术后2-3天内每天皮下注射美洛昔康（0.5 mg/kg）一次，必要时可增加给药次数。在术后2-3天内提供支持性护理，包括额外的环境丰富化装置（如玩具）和饮食丰富化，必要时继续提供。</li>
	<li>根据需要在术后给予额外的皮下补液。术后前三天每日监测动物两次，之后每周或根据需要进行监测。</li>
</ol>
2. 瞳孔反应
注意：为评估视觉功能，需在视神经挤压伤前（第 -3、-2 和 -1 天）和伤后（第 +1、+2 和 +3 天）按照下述步骤检测双眼的瞳孔对光反射反应。
<ol>
	<li>使用智能手机摄像头，在弱光（中等光照）条件下拍摄左右眼的图像。</li>
	<li>从约15厘米的距离，将笔灯直接照射右眼，拍摄眼睛图像，然后对左眼重复相同操作。 
	注意：瞳孔反应应在5-10秒内趋于稳定。</li>
	<li>使用Image J软件，从所获取的图像中计算瞳孔直径与角膜缘到角膜缘直径的比值。</li>
</ol>
3. 闪光视觉诱发电位（VEP）
注意：为了评估从视网膜经视神经至视觉皮层的视觉通路完整性，需在暗室条件下，按照下述步骤分别于视神经挤压伤前（第 -2 天）和损伤后（第 +7 天和第 +14 天）记录双眼的视觉诱发电位（VEP）波形。
<ol>
	<li>根据VSC指南对兔子进行麻醉。简要而言，肌肉注射氯胺酮（15 mg/kg）、右美托咪定（0.05 mg/kg）和咪达唑仑（0.3 mg/kg）。 
	注意：气体麻醉可能会减弱VEP信号，因此应尽可能避免使用。</li>
	<li>使用丙美卡因（0.5%）、去氧肾上腺素（2.5%）和托吡卡胺（1%）的混合滴眼液。</li>
	<li>在皮下插入三根针状电极，位置如图3A所示：内眦之间（黑色导线，参考电极）、肩胛骨之间（绿色导线，接地电极）以及枕外隆突处（红色导线，记录电极）6。</li>
	<li>将眼睑拉钩置于左眼，并遮盖右眼以防止任何光线照射。</li>
	<li>使用手持设备（图3B、C）记录VEP波形，同时给予闪光刺激（8.0 cd·s/m2，0.99 Hz）。 
	注意：记录前应确保噪声水平&#60; 20 µV。</li>
	<li>至少重复此记录过程三次。 
	注意：三次重复测量取平均值，并视为一个数据点。</li>
	<li>对右眼执行相同的操作流程，确保此时左眼被遮盖以防止光线照射。</li>
	<li>从采集到的VEP波形中确定P1潜伏期和振幅。P1潜伏期定义为初始负向波峰（N1）之后第一个正向波峰（P1）出现的时间，通常出现在约60 ms左右。P1振幅计算为P1与N1处振幅之差。</li>
</ol>
4. 轴突标记与成像
<ol>
	<li>视神经钳夹损伤后一周，使用29 G胰岛素注射器将顺行轴突示踪剂霍乱毒素B亚单位（CTB；与Alexa Fluor 488偶联）以每眼50 µL（1 µg/µL CTB溶于PBS中，无菌过滤）的剂量玻璃体内注射至双眼。</li>
	<li>视神经钳夹损伤后两周，通过静脉注射戊巴比妥钠（100 mg/kg）和苯妥英钠（12.8 mg/kg）处死兔，并通过心脏听诊确认死亡。</li>
	<li>摘除眼球，使用Westcott剪刀去除残留组织，并将眼球在4%多聚甲醛（溶于PBS）中于4 °C固定24小时。</li>
	<li>用PBS清洗眼球4小时后，解剖固定后的视神经并进行纵向冷冻切片。</li>
	<li>用PBS清洗切片，每次5分钟，共清洗3次。</li>
	<li>将切片在含4',6-二脒基-2-苯基吲哚（DAPI；1:1,000）的PBS中孵育5分钟。</li>
	<li>用PBS清洗切片，每次5分钟，共清洗3次。</li>
	<li>将切片封片于封片介质中，并使用共聚焦显微镜成像。</li>
</ol>

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<li>Del Amo, E. M., Urtti, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Rabbit+as+an+animal+model+for+intravitreal+pharmacokinetics%3A+Clinical+predictability+and+quality+of+the+published+data%5BTitle%5D)+AND+%22Exp+Eye+Res%22%5BJournal%5D)">Rabbit as an animal model for intravitreal pharmacokinetics: Clinical predictability and quality of the published data.</a> Exp Eye Res. 137, 111-124 (2015).</li>
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作者无任何利益冲突或竞争性经济利益。

本研究介绍了一种在兔子中实施ONC手术的详细方案，强调采用一种侵入性更小的方法来暴露视神经。既往报道缺乏全面的描述、可视化操作指导，或依赖于更具侵入性的技术，需要植入物、外眦切开和/或骨切除19,20,21,22,23,24,25。我们的方法采用了斜视和眼整形手术中常用的标准化眼科技术，能够实现可重复且一致的视神经损伤。
该操作过程约需20-30分钟完成，且未出现术后并发症，包括角膜擦伤、角膜溃疡、结膜炎、眶隔前蜂窝织炎和眶蜂窝织炎、视网膜动脉阻塞、视网膜静脉阻塞以及球后出血。手术成功的关键步骤包括仔细分离眶内脂肪和结缔组...

视神经钳夹（ONC）技术是一种实验性方法，用于建立受控的视神经损伤模型，以研究视神经病变1,2,3。通过在视神经局部造成损伤，导致轴突受损和视网膜神经节细胞退化，ONC模型可模拟多种视神经病变的病理特征，例如外伤性视神经病变和青光眼4,5,6,7。该受控模型为进一步深入研究眼科学和神经科学领域中神经损伤、退变及潜在再生的机制提供了重要平台8,9,10,11,12,13,14。
ONC 技术及其相关研究已广泛采用啮齿类动物模型，因其具有体型小、易于操作和维护成本低等优势。此外，啮齿类动物拥有丰富的基因操作工具，这对于基因治疗和分子干预至关重要12,14,15。尽管如此，啮齿类与人类之间显著的解剖学和生理学差异可能限制其研究结果的可转化性。由于眼球尺寸存在巨大差异（大鼠眼轴长度为 6.3 mm16，而人类为 22.5 mm），在啮齿类动物中开发的治疗方法可能难以直接应用于人类。兔眼的眼轴长度（15.3 mm17,18）更接近人类眼球尺寸，因此相较于啮齿类动物，兔子是开发手术技术和药代动力学研究更理想的模型。虽然已有研究将兔子用于 ONC 模型，但目前的文献对手术方法描述不足，和/或采用了睑裂切开术或骨窗技术19,20,21,22,23,24,25。兔子与人类眼球之间存在一些解剖学差异，例如存在有髓神经纤维、视网膜相对无血管化，以及缺乏胶原性的筛板结构，这些因素限制了其完全的可转化性；然而，兔子仍可作为最终向人类应用转化的过渡性模型。
尽管已有研究报道在猪4,6、山羊5,9和非人灵长类动物5,26等较大动物模型中开展视神经钳夹（ONC）技术，但这些模型的操作复杂性和/或高昂成本限制了其广泛应用。因此，兔子提供了一种经济且眼球足够大的折中选择。
针对这一需求，本研究提出了一种为兔模型优化的视神经钳夹（ONC）手术技术。通过在兔模型中应用ONC技术，我们旨在弥补当前动物模型的不足，加深对视神经损伤和神经退行性疾病的理解，并开发新的治疗策略。

<table><tbody><tr><td>8-0 涂层薇乔紫线缝合线 TG140-8 双针</td><td>Ethicon</td><td>J547G</td><td>用于视神经压榨手术</td></tr><tr><td>Antisedan（盐酸阿替美唑 5.0 mg/mL 溶液）</td><td>Zoetis</td><td>NDC:54771-6293</td><td>用于术中应用</td></tr><tr><td>Bonn 打结镊，斜头 0.2 mm，钛材质</td><td>Titan Medical</td><td>TMF502</td><td>用于视神经压榨手术</td></tr><tr><td>Castroviejo 弯头持针器，钛材质</td><td>Titan Medical</td><td>TMH105</td><td>用于视神经压榨手术</td></tr><tr><td>Castroviejo 缝合镊，1×2，0.12 mm，直头，钛材质</td><td>Titan Medical</td><td>TMF411</td><td>用于视神经压榨手术</td></tr><tr><td>Cerenia（柠檬酸马罗匹坦 10 mg/mL 溶液）</td><td>Zoetis</td><td>NDC:54771-8179</td><td>用于术中应用</td></tr><tr><td>一次性不锈钢皮下针电极</td><td>Natus</td><td>019-476600</td><td>用于视觉诱发电位检测</td></tr><tr><td>Euthasol（戊巴比妥钠 390 mg/mL 和苯妥英钠 50 mg/mL）</td><td>Virbac</td><td>NDC: 51311-050</td><td>用于安乐死</td></tr><tr><td>Graefe 肌肉钩，钛材质</td><td>Titan Medical</td><td>TME133</td><td>用于视神经压榨手术</td></tr><tr><td>胰岛素注射器 1/2 mL，29 G，1/2&quot;</td><td>Monoject</td><td>8881600350</td><td>用于玻璃体内注射</td></tr><tr><td>Jameson 肌肉钩</td><td>Titan Medical</td><td>TME122</td><td>用于视神经压榨手术</td></tr><tr><td>McPherson 打结镊，直头 0.2 mm，钛材质</td><td>Titan Medical</td><td>TMF501</td><td>用于视神经压榨手术</td></tr><tr><td>Normosol-R（等渗平衡电解质溶液；晶体液）</td><td>ICU Medical Inc.</td><td>NDC:0990-7670</td><td>用于术中应用</td></tr><tr><td>氧氟沙星滴眼液 0.3%</td><td>Bausch &amp;amp; Lomb</td><td>60505-0560-0</td><td>用于术后应用</td></tr><tr><td>Olympus FLUOVIEW FV3000</td><td>Olympus</td><td>FLUOVIEW FV3000</td><td>共聚焦激光扫描显微镜</td></tr><tr><td>盐酸去氧肾上腺素 2.5% 滴眼液</td><td>Bausch &amp;amp; Lomb</td><td>82260-102-10</td><td>用于术前应用</td></tr><tr><td>ProLong Gold 抗荧光淬灭封片剂</td><td>Invitrogen&amp;nbsp;</td><td>P36934</td><td>封片介质</td></tr><tr><td>盐酸丙帕他卡因 0.5% 滴眼液</td><td>Bausch &amp;amp; Lomb</td><td>24208-730-06</td><td>用于术前应用</td></tr><tr><td>RETeval 视觉电生理检测设备</td><td>LKC Technologies, Inc.</td><td>RETeval</td><td>用于视觉诱发电位检测</td></tr><tr><td>托吡卡胺 1.0% 滴眼液</td><td>Bausch &amp;amp; Lomb</td><td>24208-585-64</td><td>用于术前应用</td></tr><tr><td>Westcott 弯头剪刀</td><td>Titan Medical</td><td>TMS401</td><td>用于视神经压榨手术</td></tr></tbody></table>

兔模型视神经挤压伤的手术方法

A Surgical Approach for Optic Nerve Crush in a Rabbit Model

视神经 crush（ONC）是一种用于模拟和研究视神经病变机制及潜在治疗干预措施的实验技术。以往的ONC研究主要采用啮齿类动物模型，但这些模型在解剖结构和生理特性上与人类存在显著差异，可能限制其临床转化价值。本文描述了一种在兔体内建立ONC模型的手术技术，兔眼的眼球尺寸与人类更为接近。该手术技术借鉴了斜视和眼整形手术中的眼科操作方法，无需制作骨窗或进行睑裂切开术。本模型通过评估不同光照条件下瞳孔反应以及ONC术前和术后视觉诱发电位（VEPs）进行验证。结果显示，与未处理的对侧眼相比，ONC眼的瞳孔反应和VEP振幅均显著降低，表明损伤后视觉功能丧失，符合预期。该手术技术可为探索视神经损伤机制及测试潜在治疗策略提供模型，对理解与治疗眼部神经退行性疾病具有广泛意义。

为了评估视觉功能，通过计算瞳孔直径（黄色实线）的比值来量化瞳孔反应 图 4A）相对于白对白直径（图中黄色虚线） 图4A在中等光照和闪光照明条件下，如图所示 图4在视神经钳夹（ONC）手术前，瞳孔对光刺激表现出明显的收缩反应。然而，在ONC术后1至3天内，在相同光照条件下，瞳孔直径与术前相比几乎无变化或无明显变化。图 4E；p &#60; 0.0001，配对t检验）。这种反应性的下降表明在ONC手术后视觉功能显著丧失。
为了进一步评估视觉功能，记录了视神经挤压伤（ONC）眼和未治疗的对侧眼的视觉诱发电位（VEP）波形（图5）。尽管P1潜伏期保持稳定且无显著差异，但ONC眼的P1波幅&#160;显著降低（P = 0.032）。波幅的降低证实了视神经损伤后视觉...

本文介绍了使用标准眼科手术技术在兔模型中进行视神经挫伤的详细操作步骤。

视神经 crush（ONC）是一种实验技术，用于模拟和研究视神经病变的机制及潜在的治疗干预手段。

您好，欢迎观看。在本视频中，我们将演示如何在兔模型中使用标准眼科手术技术进行视神经钳夹（ONC）。该实验技术可建立可控的视神经损伤模型，对于研究视神经病变以及探索治疗干预手段至关重要。通过在兔模型中实施ONC，我们旨在加深对神经退行性疾病中视神经损伤的理解，并开发新的治疗策略。接下来进入详细的操作步骤部分。首先，在角膜上缘近角膜缘处的周边角膜位置，置入一条部分厚度的角膜缝线。使用Westcott剪刀和0.12毫米镊子，从10点至2点方向行上方结膜切开。仔细分离Tenon囊，暴露其下方的上直肌和上斜肌。使用肌钩分离上直肌。接下来，将双针Vicryl缝线贯穿上直肌中心全层。以外科结打结固定。将缝针以部分厚度方式从肌肉中心向肌边缘方向穿过肌全长。将针从后端装入，再从肌肉下方向前贯穿全层穿出。持针器穿过线环，夹住缝针。当拉紧缝线时，缝线将锁定该侧肌肉的一半。用第二根针以类似方式固定肌肉的另一侧。使用Westcott剪刀将上直肌从眼球上分离，注意避免剪断缝线。利用角膜缝线轻柔地向下牵拉眼球，同时将肌肉缝线向上方牵拉。轻柔地分离周围眶内组织，充分暴露视神经。避免切割组织，仅使用钝性分离。操作时需注意避免损伤涡静脉。可使用肌钩分离视神经。兔的视神经位置略偏上方，周围被眶后脂肪包绕。神经呈白色，直径约1毫米。使用持针器夹持视神经60秒，以诱导钳夹损伤。钳夹位置位于视神经乳头后约3毫米处，以避免损伤眼动脉。随后，将上直肌复位于眼球原附着位置。使用先前的两根缝针，将上直肌部分厚度地缝合至原始肌肉止点处。收紧缝线并打外科结固定。最后，使用三条可吸收缝线将结膜缝合至角膜缘，完成手术。在术后恢复期间，需为动物提供镇痛和支持性护理。为评估视觉功能，我们在中等光照和闪光条件下测量瞳孔直径与角膜白-白直径的比值。在ONC术前，瞳孔对光刺激表现出明显收缩。而在ONC术后第1天，瞳孔直径几乎无变化，表明视觉功能显著丧失。我们还记录了视神经钳夹眼和未处理对侧眼的闪光视觉诱发电位（VEP）。闪光VEP反映的是从视网膜经视神经至大脑的神经信号传导反应。尽管P1潜伏期保持稳定，但ONC眼的P1波幅显著降低，提示视觉功能严重受损。为评估ONC术后轴突丢失情况，我们对视神经纵向切片进行了荧光成像。在未处理组中，顺行轴突示踪剂CTB在整个视神经中呈现连续标记。而在钳夹组中，轴突标记在钳夹部位终止，表明神经损伤。荧光强度分布图定量证实了这一结果，显示在钳夹部位远端，CTB标记轴突的平均荧光强度显著下降。综上所述，我们提供了在兔模型中实施ONC手术的逐步操作指南，确保实验可重复性。实验过程中未观察到并发症。通过瞳孔反应和VEP评估，验证了ONC技术在诱导视神经损伤和视觉功能障碍方面的有效性。该兔模型相较于大型动物模型更具成本效益，且在解剖和生理上更接近人类。感谢您的观看。

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兔模型中视神经挤压的手术方法

视神经横断是成年中枢神经系统损伤的常用模型。视网膜神经节细胞（RGCs）的轴突被完全横断（轴突切断术）后，90%的细胞在轴突切断术后14天内死亡。该模型易于进行实验操作，且具有高度可重复性。...

视神经横断：中枢神经系统中成年神经元凋亡的模型

视神经横断是成年中枢神经系统损伤的常用模型。该模型非常适合进行多种实验操作，可全局靶向视网膜，或直接靶向受损的视网膜神经节细胞群体。...

哺乳动物中枢神经系统视神经横断后的实验操作方法

本方案展示了如何逆行标记视网膜神经节细胞，以及随后如何制造视神经 crush...

一种用于研究视网膜神经节细胞存活的视神经 crush 损伤小鼠模型

本实验方案的目的是通过光化学方法在大鼠的视神经后段诱导缺血性损伤。该模型对于研究视神经后段缺血性病变的病理生理机制、此类及其他视神经病变的治疗策略，以及中枢神经系统其他缺血性疾病的机制至关重要。...

光化学诱导大鼠后部缺血性视神经病变模型

视网膜色素上皮（RPE）替代策略和基于基因的治疗已被考虑用于多种视网膜变性疾病。在临床转化过程中，需要使用大型眼动物模型来研究适用于患者的手术技术。本文介绍了一种用于视网膜下手术的兔模型，该模型专为RPE移植设计，具有多功能性和成本效益。...

兔眼视网膜下手术的逐步操作方案

以下报告介绍了如何使用适当的染料、接触镜片和激光参数来复制非动脉炎性前部缺血性视神经病变（rNAION）的啮齿类动物模型。同时，我们还揭示了评估rNAION病灶的适当步骤 体内.

非动脉炎性前部缺血性视神经病变的啮齿类动物模型（rNAION）

视网膜神经节细胞（RGCs）的继发性变性在青光眼中较为常见。本研究描述了一种部分视神经横断的创新手术方法。该节省空间的手术方法拓展了模型的应用范围，使得以一种新的方式探索RGCs中的继发性损伤机制成为可能。...

大鼠部分视神经横断模型：一种评估视网膜神经节细胞继发性变性的新型手术方法建立

本文建立了基于小鼠和兔的动物模型，用于角膜上皮机械性和化学性损伤的研究，以筛选新的治疗方法及其潜在机制。...

Ex Vivo 和 In Vivo 角膜上皮机械性与化学性损伤动物模型

本方案描述了一种采用经结膜入路注射大鼠视神经的独特技术。...

经结膜途径向大鼠视神经注射

本方案描述了如何在十三道线地松鼠中测量视动反应，该物种以视锥细胞为主，其视网膜特征与人类黄斑相似。平台设计改进了动物操作过程并降低了焦虑程度，提高了动物在抬高平台上的停留能力，从而实现对视觉功能变化的无创性评估。...

非厌恶性动物固定方法实现对地松鼠视动反射的记录

学习在兔模型中进行视神经挤压手术的标准眼科技术。该方法通过瞳孔反应和视觉诱发电位验证视功能损伤，为研究视神经病变和开发治疗策略提供可靠的实验模型。

兔模型视神经挤压伤的手术方法

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