2025年5月16日
本方案提供了在小鼠中诱导胸主动脉夹层的详细分步操作流程。具体包括β-氨基丙腈和血管紧张素II所需剂量的精确计算、渗透压泵的填充步骤,以及渗透压泵的植入技术。
本研究通过BAPN和血管紧张素II诱导建立了胸主动脉夹层(TAD)的小鼠模型,提供了详细的程序,为探索TAD发病机制或治疗方法提供了宝贵的工具。BAPN-血管紧张素II组合提供了一种建立小鼠TAD模型的方法,该模型实现了高TAD发生率,并复制了类似于在人类TAD中观察到的病理生理学特征。未来,我们的研究团队将整合临床和基础研究来说明心血管发病机制,优先通过机制洞察和转化创新发现新的治疗策略。
[主持人]称重每只小鼠并记录最大体重,以计算实验所需的血管紧张素II质量。使用计算模板根据最大体重确定每只小鼠的血管紧张素II质量。然后计算每只小鼠制备130微升血管紧张素II溶液所需的血管紧张素II的总质量。使用提供的模板确定实验所需的血管紧张素 II 溶液和生理盐水的填充量。使用分析天平称量无菌微管中血管紧张素II的计算量。将计算出的生理盐水体积加入微管中。使用涡旋混合器彻底溶解粉末,直到没有可见颗粒残留。使用分析天平称量每个渗透泵,包括泵体和流量调节剂。将灌装管连接到新打开的 1 毫升无菌注射器上,并小心地吸出制备的血管紧张素 II 溶液。将灌装管保持在向上位置,清除注射器上的任何气泡。轻轻地将灌装管的末端插入渗透泵的顶部开口,直到管无法进一步插入。将泵直立并缓慢按下注射器柱塞,直到血管紧张素 II 溶液出现在出口处。然后停止并小心地取出灌装管。接下来,小心缓慢地将流量调节器插入泵开口,直到慢速器和泵顶部之间没有间隙。使用分析天平称量负载的泵,并记录该值。在植入前,将装满的泵放入37摄氏度的无菌盐水中,使调节剂头朝上至少六个小时。将鼠标放在手术表面上的俯卧位。用手术刀小心地在皮肤上做一个 1 厘米的横向切口。使用一对弯曲的镊子抓住切缘,用另一对镊子钝地解剖皮下组织,为渗透泵创建一个口袋。将装满的泵插入口袋中,流量调节器头指向鼠标的尾端。使用 6-0 不可吸收的缝合线整齐地对齐切缘并闭合皮肤。该图说明了所有实验组主动脉夹层和破裂的发生率。BAPN加血管紧张素II组100%的小鼠发生主动脉夹层,其中35%发生破裂,超过BAPN或BAPN加生理盐水组观察到的55%或60%发生率,而对照组未发生夹层或破裂。与对照组的主动脉相比,BAPN、BAPN 加生理盐水和 BAPN 加血管紧张素 II 组的主动脉大体形态显示进行性变形。与对照组相比,所有 BAPN 治疗组的最大胸主动脉直径均显着更大,治疗组之间没有显着差异。苏木精和曙红染色显示对照组主动脉壁薄而均匀,而所有BAPN治疗组均显示增厚和炎症浸润。弹性蛋白 Van Gieson 染色显示对照组有完整的弹性纤维,所有 BAPN 治疗组均显示有进行性纤维碎裂并形成假腔。
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本方案提供了在小鼠中诱导胸主动脉夹层的详细逐步操作流程。内容包括 β-氨基丙腈和血管紧张素 II 所需剂量的精确计算,以及渗透泵植入技术。
稳定的胸主动脉夹层(TAD)动物模型对于降低早期心血管靶点假设的风险以及推动临床前研究的转化连续性至关重要。联合口服BAPN和皮下输注Ang II的小鼠模型具有更高的可重复性和疾病相关性,有助于提高治疗机制研究的预测可信度。该优化模型通过提供一个可靠的平台用于机制探究和候选药物评估,从而加强了研发管线的决策能力。
该模型可融入从发现到临床前研究的连续过程,架起早期机制研究与TAD疗法候选药物评价之间的桥梁。