2025年12月19日
本文介绍了结合冷冻固定与膨胀显微镜方法(Cryo-ExM)的详细方案,实现高分辨率成像和结构保存,适应各种生物样本。生物样本被冷冻,嵌入膨胀聚合物中,进行变性、扩孔和免疫标记,使得用标准光学显微镜实现超分辨率成像。
我们是细胞生物学家,研究微管在不同模式生物中的作用及其相关功能。我们旨在研究它们在细胞组织、形态发生、纤毛生成和分裂中的作用。在过去五年中,我们通过扩充显微镜技术,促进了对环状分子组成的理解。
由此,我们揭示了它们组装和功能的关键特征。通过结合扩容显微镜与低温凝视,我们的方案实现了高分辨率成像,同时保留了细胞元素的近乎原生结构,克服了超分辨率显微镜的主要局限。扩容显微镜是一种低成本且易于实施的技术,能够让所有实验室都能获得超高分辨率。
首先,用注射器和针头在化学罩下,将每根5毫升管子注入一毫升多干丙酮。把管子竖立放在金属架上,放入液氮中冷冻。将半个30乘30厘米厚壁的聚苯乙烯盒装满干冰,然后用液氮填充Vitrobot型的杜瓦尔,直到蒸发停止。
现在,把蜘蛛从下垂装置上取下,往金属下沉腔室里注入液态乙烷。等待10分钟,让乙烷达到平衡。然后,拿出12毫米厚的封面套,用细镊子轻拍在纸上,吸走盖片上的多余介质。
用装有与低温活塞兼容夹环的镊子将盖套夹半。将镊子夹住盖片放入低温活塞夹,用Whatman纸吸干剩余介质。启动低温活塞,将盖片注入金属腔体内的乙烷溶液中。
然后,迅速将盖纸转移到装有冷冻丙酮的管子中。将装有盖套的管子以大约45度的角度在干冰中孵化。将密封容器放置在设定为50至100转/分钟的轨道摇动器上,并在4摄氏度搅拌过夜,让温度逐渐上升。
接着,取出大部分干冰盒中的干冰。继续在轨道震动器上搅拌45分钟,使温度从零下80摄氏度升至零下20摄氏度。短暂地打开和关闭每个管子以释放内压。
然后,将每个盖玻片转移到12孔板或预装冷藏的100%乙醇溶液的合适容器中。孵化五分钟后,将盖套通过分级乙醇系列重新水合。将封面转印到PBS后,放入显微镜下观察。
用细镊子轻轻划开表面,并将所有盖片朝上放置正确的一面。将盖层放入一个四孔板中,板内填充0.5至1毫升2%丙烯酰胺和1.4%甲醛溶液,浸于PBS中。然后在37摄氏度下将盖玻片在该溶液中孵育,且不搅拌。
接着,将10%APS和凝胶溶液在冰上解冻10分钟后再进行凝胶化。用薄薄的湿纸和防腐剂准备一个湿润的腔室。然后储存在四摄氏度。
10分钟后,将湿润腔体放在冷块上,用于凝胶化。现在,将蛋白固定液中的盖片取下,用纸巾连续两次吸干多余液体。将APS加入胶化溶液中,达到最终0.5%浓度,并进行涡旋2到3秒。
然后,在湿气腔体内滴入两滴35微升的液滴到Parafilm上,轻轻将每个盖片覆盖在一滴液上,细胞朝下进入凝胶溶液中。将湿气箱转移到37摄氏度的孵化箱中,浸泡30到60分钟。变性时,使用直径0.4厘米的活检冲孔工具提取凝胶片段,并将其放入装有一毫升变性缓冲液的六孔板中。
搅拌平板10至15分钟,直到凝胶从盖片上脱落,然后将脱落的凝胶片段转移到装有新鲜变性缓冲液的1.5毫升微离心管中。将凝胶在95摄氏度下孵育90分钟。孵化后,将凝胶放入双倍蒸馏水中清洗10分钟。
用毫米纸测量凝胶直径,以评估凝胶膨胀因子。用约200微升聚赖氨酸溶液清洁盖套。将盖玻片在室温下孵育一小时,然后用双倍蒸馏水清洗三次,以去除多余的聚赖氨酸。
盖片干后,保存在4摄氏度,等待进一步使用。将凝胶正确放置,细胞朝上,放在无绒毛的纸上,晾干以去除多余水分。最后,将干燥的凝胶装在涂有聚D-赖氨酸涂层的盖片上,使其细胞朝下。
冷冻固定比PFA固定更有效地保存了RPE1细胞中的线粒体网络,这一点通过NHS酯和ATP5A染色可见,并且线粒体嵴的分辨是PFA固定时无法看到的。与PFA固定相比,低温固定能更好地保存有丝分裂RPE1细胞中的动态微管,包括胞质和星体微管。布鲁氏锥虫的冷冻固定比PFA固定更好地保存了线粒体的结构和整体细胞结构,这与TDH和NHS酯染色相符。
此外,冷冻固定比基于BIP染色的PFA固定更好地保存了内质网。在冷冻RPE1细胞中观察到裂纹,但这些裂纹并未破坏线粒体或微管等细胞器的超结构。冷冻固定不良表现为气泡状结构和波浪状微管,伴有膜细胞器完整性丧失。
膨胀质量取决于丙烯酸钠溶液的透明度,可用溶液呈现无色或略呈黄色半透明,而不可用溶液则呈现浑浊橙色。
本研究提出了一种结合低温固定和膨胀显微镜(Cryo-ExM)的协议,用于生物样品的高分辨率成像。该方法能够保留细胞元素的近乎原始结构,使标准光学显微镜能够实现超分辨率成像。
Expansion microscopy with cryo-fixation enables nanoscale imaging of cellular structures using standard fluorescence microscopes, overcoming the resolution and preservation limitations of conventional super-resolution methods. This capability supports early discovery and target validation by providing high-fidelity visualization of organelles and cytoskeletal elements in near-native states. The approach enhances predictive confidence in structural biology workflows and broadens access to advanced imaging for diverse R&D teams.
This protocol integrates into the discovery continuum from early target validation through preclinical research, enabling high-resolution imaging without specialized nanoscopy infrastructure.