2025年9月12日
本研究介绍了一种利用完整肠组织和多光子显微镜进行三维成像的方法,用于定量分析分泌的黏液,从而实现对氯化氨甲酰胆碱等刺激物作用下黏液动态变化的精确体积分析和可视化。
我们的研究聚焦于微生物与黏膜组织相互作用的机制,强调黏液在调控这些相互作用中的关键作用。传统的二维黏液定量方法无法捕捉空间和体积细节。本方案可实现精确的三维分析,揭示现有方法所忽略的分子干预引起的结构和分布变化。
该方案将激素成像与三维定量相结合,提供了对肠道黏液结构的可靠且可重复的测量方法,适用于多种实验条件和分子干预,超越了传统的二维评估。首先,将一只6至8周龄的麻醉小鼠置于加热垫上,以维持其体温。用酒精对小鼠皮肤表面进行消毒,并在左下腹部做一切口,暴露盲肠,同时保持麻醉状态。
现在,识别回肠或近端结肠。将肠段置于无菌纱布上,用无菌 PBS 冲洗,并用动脉夹固定两端,以形成一个三厘米长的闭合肠段。
在麻醉状态下,向结扎的肠段内注射不超过 200 µL 的无菌 PBS 或卡巴胆碱氯化物试剂。处理 30 分钟后,从安乐死的动物体内取出肠段。用镊子夹住肠段,于无菌 PBS 中轻轻冲洗。
纵向切开肠段,保留一小部分不切断,再用无菌 PBS 冲洗组织一次。将组织平铺于六厘米培养皿中,切开剩余部分。用铜丝片段将其固定在琼脂糖基底上。
现在,向培养皿中加入 10 毫升 4% 多聚甲醛溶液,固定组织 12 至 24 小时。孵育后,移除多聚甲醛溶液,并用 PBS 至少洗涤组织三次,以去除残留的多聚甲醛。接着,将组织浸入 10 毫升封闭缓冲液中,该缓冲液由添加了 0.4% Triton X-100 和 3% BSA 的 PBS 组成,在 4 摄氏度下孵育 12 至 24 小时。
移除封闭缓冲液。用含有麦芽凝集素(wheat germ agglutinin)和鬼笔环肽(phalloidin)的染色液对组织进行染色。在PBS处理的小肠和结肠组织中,WGA阳性的黏液主要定位于上皮表面的杯状细胞内。
经氯化氨基甲酰胆碱处理后,小肠和结肠肠腔内WGA阳性黏液的量均明显增加,但黏液呈散在分布,而非形成连续层。氯化氨基甲酰胆碱处理后,小肠和结肠中杯状细胞相关的WGA阳性黏液体积均显著减少,表明发生了主动分泌。PBS处理组织中所有杯状细胞的黏液体积均低于1,000立方微米。
大于1,000立方微米的WGA阳性物质被归类为管腔内分泌的黏液。在小肠和结肠组织中,氯化氨甲酰胆碱处理使分泌黏液的总体积增加了约5至20倍。
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本研究提出了一种利用整装组织和多光子显微镜对肠道黏液进行三维成像的新方案。该方法能够精确地对黏液在不同刺激下的动态变化进行体积分析和可视化观察。
准确的肠道黏液三维定量分析解决了胃肠道研究在发现阶段的一个关键空白,实现了对黏液分泌的绝对体积和空间分布的分析。该技术可提高评估黏膜屏障功能及分子干预影响的预测可靠性,支持在早期靶点验证和机制性风险排除中做出基于风险评估的决策。本实验方案具有良好的可重复性,并能提供定量结果,因而可作为推进黏膜生物学与免疫学研究管线发展的基础性工具。
本方案通过支持胃肠道研究工作流程中的假设验证、定量检测和机制性风险排除,融入从发现到临床前研究的连续过程。