2025年12月30日
携带 p53 V157F 突变的 Hs578T 乳腺癌细胞表现出显著高于 MCF7 细胞的硫黄素 T 荧光,表明其蛋白质聚集程度更高。多点荧光测量可提高检测富含 β-折叠聚集体的准确性和可靠性,凸显了易聚集型 p53 突变在癌症研究及治疗策略开发中的重要性。
本研究探讨突变型p53 V157F在乳腺癌细胞中的聚集倾向,并评估多点平板读数法用于检测的可行性。目前的实验挑战包括准确检测p53聚集、定量类淀粉样结构,以及确保基于细胞的检测表面测量结果的一致性。首先,在微量离心管中加入10 µL台盼蓝。
向同一管中加入10 µL用DPBS重悬的细胞,并充分混匀以确保均匀。取10 µL制备好的混合液加入计数载玻片,使用自动细胞计数仪对活细胞进行计数。根据细胞活力计数结果,每孔接种30,000个活细胞至96孔培养板中。
将一个孔指定为未染色对照孔,其余三个孔用于染色。使用天平称取0.02克硫黄素T(Thioflavin T)或THT粉末。将粉末加入5毫升去离子水中,并充分混匀,直至粉末完全溶解。
然后将染色组分加入1毫升DPBS中。将THT和Hoechst的储备液加入离心管中,轻轻混匀以确保溶液均匀。现在从96孔细胞培养板的每个孔中移除培养基。
向每个染色孔中加入100 µL配制好的THT和Hoechst染色缓冲液,向未染色对照孔中加入100 µL DPBS。将培养板置于室温避光处孵育30分钟。小心吸出或弃去各孔中的染色液,注意不要破坏细胞单层。
然后向每个孔中加入 100 µL DPBS,静置 30 秒。随后弃去 DPBS。重复洗涤步骤后,向每个孔中加入 100 µL 新鲜 DPBS。
在读取荧光信号前,取下96孔培养板的盖子。将96孔培养板放入酶标仪中。使用450纳米激发波长和490纳米发射波长检测THT荧光,使用360纳米激发波长和460纳米发射波长检测Hoechst 33342荧光。
选择所需的读取区域,然后设置读取参数,包括在读取顶部折射前振荡五秒,以及140毫秒的积分时间。获取荧光数据后,进行计算以得到蛋白质聚集值。最后通过将MCF7细胞中的THT荧光强度比值设为1作为基线对照进行归一化处理。实验在MCF7和Hs578T细胞的染色与未染色孔中,分别采用单点法和四点法进行测量。
Hs578T 乳腺癌细胞与 MCF7 细胞相比,使用单点读数法时硫黄素 T 荧光强度增加了 3.2 倍。当使用四点平均读数法时,Hs578T 细胞的硫黄素 T 荧光强度比 MCF7 细胞增加了 3.86 倍。在四个测量位点,Hs578T 细胞的硫黄素 T 荧光信号均持续高于 MCF7 细胞。
本方案通过硫黄素T染色结合可靠的多点荧光板读数方法,可在细胞环境中实现准确的蛋白质聚集检测。
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本研究探讨了突变型p53 V157F在乳腺癌细胞中的聚集倾向,强调了准确检测p53聚集并定量类淀粉样结构所面临的挑战。该研究强调了采用多点荧光测量以提高检测准确性的必要性。
在乳腺癌细胞中准确检测易于聚集的突变型 p53 是早期肿瘤学研究中的关键挑战,因为机制上的不确定性可能阻碍靶点验证和风险评估。多点硫磺素 T 荧光定量技术能够对类淀粉样聚集物进行可靠且可重复的测量,从而提高对致癌突变功能研究的预测可信度。该能力有助于加强项目筛选,并为针对 p53 驱动型恶性肿瘤的研发项目提供决策依据。
这种多点荧光方法可整合到从发现到临床前研究的连续过程中,架起早期机制研究与针对易聚集靶点的转化研究之间的桥梁。