2025年11月21日
本方案通过放线菌素D处理、逆转录定量PCR及非线性回归分析,定量测定小鼠胚胎干细胞中基因间和基因内增强子RNA的稳定性和半衰期。采用位置特异性标准化策略,以准确建模依赖于上下文的增强子RNA降解动力学。
我们的实验室在分子水平上研究表观遗传学,重点关注RNA修饰和增强子。我们最近发现,在小鼠胚胎干细胞中,RNA m5C修饰酶Nsun2受到基因内增强子的调控。首先,每孔加入两毫升明胶,对六孔细胞培养板的孔进行预包被。
将培养板在37摄氏度下孵育10分钟。吸出每孔中的明胶,然后用1毫升磷酸盐缓冲液(PBS)洗涤每孔一次。将培养板置于紫外光下至少15分钟以进行灭菌。
使用完全细胞培养基,每孔2毫升,将小鼠胚胎干细胞接种到明胶包被的培养板上。在37摄氏度、含5%二氧化碳的湿润培养箱中培养细胞。接着,将放线菌素D溶于二甲基亚砜,配制浓度为1毫克/毫升的储存液。
接种细胞后两天或收获当天,将放线菌素D储存液加入培养基中。在转录抑制处理后的0、5、10、15、20和30分钟收集样品。转录抑制后,增强子RNA的表达在5分钟内迅速下降,而信使RNA则下降较为缓慢,并在30分钟内保持相对稳定。半衰期分析显示,增强子RNA的半衰期约为2至3分钟,而信使RNA的半衰期显著更长,超过60分钟。
对于Pou5f1基因间增强子RNA,以TBP信使RNA或以0分钟时的循环阈值进行归一化,所得的半衰期估计值相似。新生RNA测序数据显示,与阴性对照相比,Nsun2增强子区域的RPKM值升高。RT-qPCR分析证实,与阴性对照相比,Nsun2两个基因间增强子RNA在Nsun2增强子区域的归一化表达水平更高。
用于基因间增强子的标准化方法是恰当的,因为相对于阴性对照的表达模式与使用RPKM观察到的模式一致。本研究提供了一种测量和标准化快速降解增强子短半衰期的方法。我们解决了目前尚无明确方法来比较基因间和基因内增强子活性的问题。
它简化了数据处理,并通过清晰、精确的步骤实现小鼠胚胎干细胞(mESC)衰变的快速计算。
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本方案通过放线菌素D处理、逆转录定量PCR及非线性回归分析,对小鼠胚胎干细胞中基因间和基因内增强子RNA的稳定性和半衰期进行定量测定。采用位点特异性归一化策略,以准确模拟依赖于上下文环境的eRNA降解动力学。
在小鼠胚胎干细胞中对增强子RNA(eRNA)稳定性进行定量评估,有助于弥补早期发现阶段转录调控动态研究中的关键空白。准确测量eRNA的降解动力学参数,能够实现机制层面的风险排除,并为基因调控元件的靶点验证策略提供依据。该能力可提升在治疗发现流程中调控增强子活性的预测可靠性。
这种定量的eRNA稳定性方法可整合到从早期发现到先导物鉴别的连续流程中,既支持假设验证,也支持下游检测方法的开发。