2025年12月19日
本方案描述了利用哺乳动物 Neuro-2a 细胞系表达并定量神经元型烟碱乙酰胆碱受体亚基的方法。通过 pH 敏感性荧光标签结合共聚焦显微镜,可精确评估受体在质膜上的定位情况,以及在 pH 中性细胞内区室中的表达情况,从而促进对 nAChR 转运过程及药物学调控机制的研究。
了解烟碱型乙酰胆碱受体向哺乳动物细胞质膜的转运过程,对于研究分子伴侣介导的调控机制以及评估靶点选择性治疗药物至关重要。将pH敏感探针与活细胞共聚焦显微镜结合使用的主要优势在于能够高空间分辨率地确定亚基的位置。首先,将试剂预热至37摄氏度。
将nAChR亚基DNase完全解冻,并将转染试剂置于室温。将所有试剂用70%乙醇清洁后放入生物安全柜中。为表达α-7 nAChR,在微量离心管中,将α-7和NACHO质粒DNase加入低血清培养基中稀释。
加入DNA后,通过移液轻轻混匀。或者,为了表达α4β2受体,将每种亚基DNA各4微克稀释至总共250微升的低血清培养基中,并轻轻混匀。调整亚基比例以优化特定受体亚型的表达。
对于含有额外质粒的α4β2受体,加入等量的每种质粒DNA。接着,在新的微量离心管中,将8 µL转染试剂逐滴加入250 µL低血清培养基中。室温孵育5分钟后,将稀释后的DNA与稀释后的转染试剂逐滴混合于同一管中。
用移液器轻轻混匀,在室温下孵育20分钟。在复合物形成的同时,将培养皿中的培养基更换为1毫升无血清EMEM。将500微升DNA转染试剂复合物逐滴加入每皿中。
轻轻晃动培养板以使液体均匀分布,尤其注意覆盖玻底表面。将培养板置于37°C孵育24小时,并在4–6小时后更换培养基。用抽吸法移除旧培养基。
在室温下,用两毫升磷酸盐缓冲液(PBS)清洗培养皿三次,每次10分钟。然后向培养皿中加入2毫升pH 7.4的成像缓冲液。将成像用培养皿插入共聚焦显微镜的载片架中,并将载片架放入预热的环境培养室中。
将蠕动泵管路连接到成像培养皿支架上,并关闭环境培养箱。接着启动成像软件,为感兴趣的荧光染料选择相应的激光器。使用10–60倍物镜扫描培养皿,定位待成像的细胞。
根据需要增加放大倍数,并调整焦深。选择所需的分辨率,使用选定的物镜拍摄单张图像。在培养皿图上记录成像位置,以便在更换缓冲液后重新定位相同的细胞。
使用相同的采集设置,对培养皿上的多个区域重复成像。仅保留连接至蠕动泵的出口管路,缓慢将 pH 7.4 缓冲液从培养皿中抽吸至废液容器中。随后将进口管路转移至 pH 5.5 淬灭缓冲液中。
打开蠕动泵,以每分钟1.5毫升的流速加入pH 5.5的缓冲液,确保细胞保持附着状态。20分钟后,关闭泵,并将细胞在缓冲液中继续孵育20分钟,以达到平衡。孵育结束后,对已保存的位置重复进行成像。
开始图像定量分析时,打开 ImageJ 并载入待分析的图像。图像将以堆栈形式显示,每个捕获的通道均在同一画框中呈现。导航至相差通道。
如果图像显得过亮,请选择“处理”并选择“增强对比度”,然后单击“确定”。使用放大镜工具放大单个细胞。使用自由选择工具在相位通道中勾勒出细胞的轮廓。然后切换到与目标荧光染料相对应的荧光通道。
通过选择“分析”并点击“设置测量”来设定所需的测量参数。确保勾选“面积”、“平均灰度值”和“积分密度”。要测量选定区域,请选择“分析”,然后点击“测量”。
通过追踪所选细胞附近的空白区域,进行三次背景测量。完成所有目标细胞的测量后,将测量数据复制并粘贴到 Excel 中进行分析。然后根据三次背景测量结果计算平均背景均值。
使用提供的公式计算每个细胞的校正后总细胞荧光值(CTCF)。采用相同的工作流程,分析缓冲液更换后获得的图像。将所有结果导出至数据分析软件进行统计处理。
在未转染的N2a细胞中观察到微弱的α-BTX AF647染色,而在转染了α-7 DNA的细胞中则检测到强烈的斑点状标记。定量分析证实,与未转染的对照组相比,转染α-7的N2a细胞中α-7 nAChRs在细胞膜上的表达显著升高。在pH 7.4条件下,可在细胞膜上观察到完整的α-7 pHuji荧光信号。
在转染的N2a细胞中。在pH 5.5时,alpha-7 pHuji荧光减弱,显示出受体内化定位。细胞外的alpha-7 pHuji受体荧光占受体表达的大部分。
定量结果显示,82.6%的α-7 pHuji受体位于质膜上,而17.4%处于细胞内。当pH恢复至7.4时,荧光信号恢复,证实pHuji信号具有可逆性。在pH 7.4条件下,表达α-4 SEP和β-2 pHuji的N2a细胞中,两个亚基均显示出强烈的膜荧光。
在 pH 5.5 条件下,荧光被淬灭,表明部分 alpha-4 SEP 和 beta-2 pHuji 亚基定位于细胞内部。定量结果显示,76.5% 的 alpha-4 SEP 位于质膜,23.4% 位于细胞内。在三重转染细胞中,alpha-4 SEP 表现出 82.8% 的膜定位和 17.2% 的内部表达。
在同一细胞中,63.4%的beta-2 pHuji亚基定位于细胞膜上,而36.6%位于细胞内。利用本方案,我们表征了新型分子伴侣对烟碱型受体表达与转运的影响,并评估了新的靶向选择性治疗药物。本方案的优势在于可适用于同源和异源烟碱型受体,能够量化受体在细胞内的相对定位。
我们的方法能够实现烟碱型受体在质膜上的快速且稳定的表达,有助于分子伴侣介导的转运分析以及药物发现工作。
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本文详细介绍了在哺乳动物 Neuro2a(N2a)细胞中表达并定量神经元烟碱型乙酰胆碱受体(nAChRs)表面与细胞内定位的可靠方法。通过采用pH敏感性荧光标记物和活细胞共聚焦显微镜技术,该方案可实现对同源和异源nAChR亚基的精确定位与定量,有助于研究受体转运、分子伴侣效应以及药理学调控。
对哺乳动物细胞中神经元型烟碱乙酰胆碱受体(nAChR)定位的定量成像,解决了神经药理学研发管线中靶点验证和作用机制去风险化的一项关键挑战。该方法可精确评估受体的转运过程及细胞表面表达水平,直接为早期治疗假设的验证和分子伴侣蛋白的评价提供依据。该技术有助于提高中枢神经系统靶向药物发现中先导化合物识别和项目组合筛选的预测可信度。
该定量成像工作流程贯穿早期发现、先导物识别及临床前研究,支持针对nAChR干预措施的假设验证和机制确认。