November 11th, 2025
低密度中性粒细胞 (LDN) 在多种疾病中显着增加。LDN 通常通过细胞分选分离。我们提出了一种获得纯净且可行的LDN的实用方法。外周血密度梯度离心后,将细胞与磁性微珠一起孵育,然后通过磁柱分离LDN。
我们研究外周血单核细胞中的低密度中性粒细胞,以表征其功能,以界定它们在不同疾病中的作用。低密度中性粒细胞在健康血液中较为罕见,但在系统性红斑狼疮和癌症等疾病中,低密度中性粒细胞显著增加。首先,将10单位的肝素/毫升作为抗凝剂加入15毫升的锥形离心管中。
然后加入两毫升6%右旋糖酐T500,加入PBS。通过静脉穿刺从一名健康成年人志愿者身上抽取10毫升血液。在另一根新鲜的15毫升离心管中,加入5毫升密度梯度介质。
小心地移出血浆,不接触红细胞,将其叠加在培养基上形成两个独立相。以516克离心,温度4摄氏度,离心20分钟。要分离PBMCs,应在PBMC带以上抽取并丢弃血浆,同时不扰动细胞。
收集血浆与培养基之间的单核细胞带,最大限度地减少培养基的收集。向装有PBMCS的管子加入20毫升PBS,然后以400克离心机离心,温度为4摄氏度5分钟。小心抽取上清液,刮除管子以分离沉淀。
加入10毫升冷PBS以使细胞重新浮起。要分离中性粒细胞,吸出培养基后刮管以分离细胞。然后加入10毫升冷PBS。
现在将细胞转移到一个新的50毫升锥形离心管和离心机中。抽吸上清液,再刮一次管子。现在将10毫升冷的低渗溶液移液移入管子,轻轻混合。
轻轻搅拌一分钟。迅速加入10毫升冷高渗溶液,使溶液达到等渗状态。然后使用诺伊鲍尔腔计算中性粒细胞,确保纯度超过95%,离心分离悬浮液以获得细胞颗粒。
然后将颗粒重新浸泡在冷PBS中。将外周血单核细胞以400克离心,在四摄氏度下离心五分钟。去除上清液后,将细胞重新悬浮在120微升冷洗缓冲液中。
然后将35微升CD66b磁珠移液到细胞悬浮液中。将混合物在黑暗中以摄氏4度孵育30分钟。现在用移液器将一毫升冷洗缓冲液移入管子。
用400克离心机加热管子三分钟。去除上清液后刮除管子以分离细胞沉淀。然后把细胞重新悬浮在一毫升的洗涤缓冲液中。
将磁性分离柱放置在磁铁上。向柱中加入0.5毫升洗涤缓冲液,使其完全通过。将一毫升的重悬细胞转移到柱上,让缓冲液一滴滴一滴通过。
清洗后,将柱转移到微型离心管中。然后将一毫升洗涤液移液移入色管。现在把活塞插入柱子顶部。
轻轻施加压力以洗脱细胞。然后取下活塞,将柱子放到新的微型离心管上。再往柱中加入一毫升洗涤缓冲液。
然后再次插入活塞,轻轻施加压力以洗出剩余细胞。将两根微型离心管分别用800克离心三分钟。将两管的细胞颗粒重新悬浮到一毫升的冷PBS中。
保持细胞悬浮液冷藏。将纯化细胞重新悬浮在由1%胎儿牛血清制成的标记缓冲液中,浸泡在PBS中。将250微升悬浮液转移到1.5毫升微离心管中。
将针对中性粒细胞膜分子的相应抗体加入试管。然后在四摄氏度下培养细胞30分钟,避免光线。现在用移液器吸一毫升PBS到管子里。
将管子放入微型离心机中,以800克旋转三分钟。抽取上清液。敲击管子以破坏颗粒。
并将细胞重新浸泡在0.5毫升的1%对甲醛中。然后将细胞保持在四摄氏度,保护光线,直到流式细胞术分析。利用流式细胞术分析样本,每个样本捕获10,000个事件。
健康个体中低密度中性粒细胞约占外周血单核细胞的5%,而描述的磁隔离方案中低密度中性粒细胞恢复率约为98%。中性粒细胞表达膜标记CD10、CD11b、CD15、CD62L和CD66b。磁纯化的低密度中性粒细胞表达与中性粒细胞相同的膜标记。
纯化的低密度中性粒细胞表现出多叶核,大小与中性粒细胞相似。中性粒细胞和低密度中性粒细胞均在PMA刺激下产生活性氧,低密度中性粒细胞产生的活性氧水平高于中性粒细胞。低密度中性粒细胞在PMA刺激下释放中性粒细胞外陷阱,这一点通过DNA与弹性蛋白酶和瓜氨酸共定位得到证明。
纯化中性粒细胞和低密度中性粒细胞在PMA处理后释放的NETs,动力学和量相似。我们的方案提供了一种快速且可重复的方式,获得高度纯度和功能性的低密度中性粒细胞。我们解决了缺乏标准化且高效时间的低密度中性粒细胞从人体血液中分离出的方案问题。
该方案不需要对复杂仪器进行特殊培训,而且比FACS更经济、更快捷。
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本研究聚焦于外周血单核细胞中发现的低密度中性粒细胞(LDN),这些在健康个体中罕见,但在多种疾病中显著增加。文章介绍了一种通过密度梯度离心和磁分离技术分离纯净且活力良好的LDN的实用方法。
Efficient isolation of low-density neutrophils (LDN) addresses a critical bottleneck in immunology-focused drug discovery, enabling robust functional studies of disease-associated neutrophil subpopulations. This rapid magnetic-microbead method delivers high-purity, viable LDN, supporting mechanistic de-risking and target validation in autoimmune, oncology, and infectious disease pipelines. Scalable, reproducible LDN purification enhances predictive confidence for translational biomarker and preclinical model development.
This method integrates into the discovery-to-preclinical continuum by enabling rapid, reproducible LDN isolation for mechanistic studies, assay development, and translational research.