Name: 由病原体相关分子模式诱发附睾炎的小鼠模型 (视频) | JoVE Journal
Uploaded: 2025-12-12T13:50:00.000+00:00
Duration: 8 min 30 s
Description: 了解两种小鼠附睾炎手术注射模型，通过间质注射和血管内注射分别靶向附睾起始段与尾段，研究区域特异性炎症反应机制，为生殖健康研究提供有效方法。

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作者感谢马里利亚医学院及圣保罗州立大学生物科学研究所（IBB/UNESP）细胞结构与功能系形态学部门的 Maria Angélica Spadella 和 Rosa Maria dos Santos Sabatini 在组织病理学评估方面的技术支持；感谢圣保罗州立大学生物科学研究所（IBB/UNESP）生物物理学与药理学部门的 Helio Kushima 和 Paulo Mioni 提供的技术协助；感谢圣保罗州立大学生物科学研究所（IBB/UNESP）生物物理学与药理学部门的 Natália Calixto Miranda Santos 和 Beatriz Rezende Santos 在拍摄中的帮助。本研究由圣保罗研究基金会（FAPESP，#2021/04746-3 和 #2021/06718-7）资助；部分由高等教育人员改进协调办公室（CAPES，#88887.657630/2021-00）资助；以及由国家科学技术发展委员会（CNPQ，#303616/2022-9；311179/2016-9）资助。

所有动物实验均遵循美国国立卫生研究院（National Institute of Health, USA）《实验动物护理与使用指南》以及巴西国家实验动物使用控制委员会（CONCEA, Brazil）的相关规定。实验程序已获得巴西圣保罗州立大学生物科学研究所实验动物使用伦理委员会（CEUA-IBB/UNESP, Brazil）的批准（批准编号：6272050320；2269040625）。本研究使用成年雄性C57BL/6小鼠（90–120日龄）。本研究所用试剂与设备详见材料表。
1. 附睾起始段的间质注射
<ol>
	<li>小鼠术前准备
	<ol>
		<li>使用氯胺酮/赛拉嗪（60/20 mg/kg，腹腔注射）诱导全身麻醉（遵循机构批准的方案）。麻醉后，将小鼠仰卧位放置于手术区域。 
		注意：切口前，用力捏压脚趾以确认足底反射消失。可使用吸入性麻醉剂（如异氟烷）替代氯胺酮/赛拉嗪。</li>
		<li>使用电动剃毛笔对小鼠腹部进行剃毛（图2A）。</li>
		<li>用含0.25%（v/v）氯己定和酒精的无菌棉球对腹部进行消毒。</li>
	</ol>
	</li>
	<li>向附睾起始段间质腔注射
	<ol>
		<li>使用15号手术刀，在腹壁右侧轻轻做一条约4 mm的纵向切口（图2A）。 
		注意：注意保护包皮腺。</li>
		<li>用弯头钝端手术镊轻轻分离皮肤。在腹壁第一切口位置，使用15号手术刀在腹膜上轻轻做一条约4 mm的纵向切口。</li>
		<li>小心提起附睾和睾丸，使其进入腹腔空间，同时推动右侧阴囊。 
		注意：为便于后续操作，可使用头戴式放大镜或体视显微镜。</li>
		<li>用弯头手术镊小心牵拉附睾白色脂肪组织（eWAT），以定位附睾起始段。利用eWAT在切口区域轻轻暴露起始段（图2A）。</li>
		<li>将预先装好注射液的Hamilton注射器置于与起始段第1段大致呈90°角的位置。将针尖斜面朝下，小心插入间质腔（图2A 和 补充图1）。 
		注意：避免刺破附睾管；切勿倾斜针头。</li>
		<li>将弯头手术镊置于针头插入部位，轻轻夹住附睾囊膜和针头。缓慢下压注射器推杆，直至全部刺激溶液被推出（图2A）。 
		注意：最大注射体积为10 µL。</li>
		<li>保持弯头手术镊位置不变，小心拔出针头。约30秒后，移除手术弯镊。</li>
		<li>利用eWAT将组织轻柔复位至腹腔内。 
		注意：仅夹持eWAT，切勿夹压起始段。</li>
		<li>定位腹膜，使用持针器和5/0手术缝线进行两针缝合（补充图1）。 
		注意：检查腹膜切口是否完全闭合；必要时增加一针。</li>
		<li>使用持针器和5/0手术缝线对皮肤切口进行两针缝合（图2A）。</li>
		<li>重复步骤1.2.1–1.2.10，对左侧进行间质注射。</li>
	</ol>
	</li>
	<li>术后护理
	<ol>
		<li>术后观察小鼠，确保其恢复良好（检查动物行为、寒战、活动能力及其他毒性迹象）。在动物恢复期间保持其体温。术后小鼠在笼内活动可能减慢，通常在约12–24小时后恢复正常行为。</li>
	</ol>
	</li>
</ol>
2. 尾侧附睾内血管注射
<ol>
	<li>小鼠术前准备
	<ol>
		<li>通过腹腔注射给予氯胺酮/赛拉嗪（60/20 mg/kg）诱导全身麻醉。麻醉成功后，将小鼠仰卧位固定于手术区域。 
		注意：切口前应牢固捏压足趾，确认无足底反射。可使用吸入麻醉剂（如异氟烷）替代氯胺酮/赛拉嗪。</li>
		<li>用食指和拇指置于阴囊下方，检查睾丸和附睾的位置。必要时，轻轻按摩腹部两侧并向阴囊方向推移，使睾丸和附睾位于阴囊内。</li>
		<li>使用电动修毛笔形剃刀对小鼠阴囊进行脱毛（图3A）。</li>
		<li>用含0.25%（v/v）氯己定与酒精的无菌棉球对阴囊进行消毒。</li>
	</ol>
	</li>
	<li>向附睾尾方向逆行注射至输精管管腔
	 
	注意：为便于后续操作，建议使用头戴式放大镜或体视显微镜。
	<ol>
		<li>用食指和拇指置于阴囊下方，轻柔牵拉阴囊皮肤使其固定，使用15号手术刀片在阴囊中线部位做约2 mm的垂直切口，切开皮肤、肉膜层及精索外筋膜（图3A）。</li>
		<li>用食指将左侧睾丸和附睾轻柔推回腹腔，保留右侧睾丸和附睾于阴囊内。</li>
		<li>用食指和拇指固定右侧睾丸和附睾，保持阴囊皮肤轻度张力，使用弯头钝端手术镊小心反复开合，作用于精索内筋膜，直至穿透精索内筋膜和鞘膜。</li>
		<li>松开食指与拇指的压力，通过鞘膜上的开口，将弯头手术镊朝向阴囊基底部插入，轻柔牵拉远端附睾脂肪组织，以定位附睾尾。</li>
		<li>定位输精管，并将直头手术镊置于输精管下方。在输精管上放置血管夹（鳄嘴夹），预留足够空间以便将直头手术镊置于附睾尾与血管夹之间（必要时限制直头手术镊的张开程度，避免损伤输精管）（图3A）。</li>
		<li>将预装注射液的Hamilton注射器以约10–15°角平行于输精管方向定位，针尖斜面朝上插入（图3A 及 补充图1）。</li>
		<li>轻捏直头手术镊以松解输精管，然后缓慢下压注射器推杆，直至完全注入刺激溶液（图3A）。 
		注意：最大注射体积为10 µL。</li>
		<li>移除直头手术镊。在针头插入部位用弯头手术镊夹持固定，轻柔夹闭并小心拔出针头。</li>
		<li>约30秒后，移除弯头手术镊和血管夹。轻柔将输精管复位至阴囊内。</li>
		<li>定位鞘膜开口处，使用持针器和5/0外科缝线进行单针缝合（补充 图1）。 
		注意：检查鞘膜切口是否闭合；必要时追加一针缝合。</li>
		<li>用食指将右侧睾丸和附睾轻柔推回腹腔，将左侧睾丸和附睾移至阴囊内。</li>
		<li>重复步骤2.2.3–2.2.10，在左侧进行管腔内注射。</li>
		<li>使用持针器和5/0外科缝线进行两针缝合，关闭皮肤切口（图3A）。</li>
	</ol>
	</li>
	<li>术后护理
	<ol>
		<li>术后观察小鼠恢复情况，确保其行为正常（检查活动能力、寒战、运动能力及其他毒性反应迹象）。术后保持动物体温，直至完全恢复。预计小鼠术后在笼内活动减慢，约12–24小时后恢复正常行为。</li>
	</ol>
	</li>
</ol>

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</ol>

作者声明不存在利益冲突。

本文介绍了两种不同的小鼠局部附睾炎诱导手术注射方法。这些方法用于建立特异性靶向附睾初段的附睾炎实验模型。 通过 间质注射或附睾尾 通过 逆行血管内注射。该详细且可视化的操作指南提高了这些实验方案的清晰度与可及性，旨在增强这些方法的可重复性。
附睾管的直径从近端到远端显著增加，附睾管及其结缔组织隔共同构成一道物理屏障，可抵御细菌的上行感染22,23。多项研究一致表明，逆行性管腔内细菌感染或其他炎性刺激物（如PAMPs）在附睾不同区域引发的反应存在差异：尾部附睾表现出强烈的免疫细胞募集（例如单核吞噬细胞亚群和白细胞）以及炎症介质（如细胞因子和趋化因子）的调节，而近端区域（包括起始段和头部附睾）的反应则较轻微7,20,24,<su...

附睾是一个黏膜性雄性生殖器官，由一条高度盘绕的单管构成，连接输出小管与输精管。附睾对于精子的成熟（获得精子运动能力和受精能力）、浓缩、运输、储存和保护至关重要，直至射精发生1,2。传统上，啮齿类动物的附睾分为四个解剖区域：起始段、头区、体区和尾区1（图1）。此外，附睾的每个区域还可进一步细分为多个区段，这些区段由间质结缔组织隔膜分隔，在小鼠附睾中可识别出共10个区段3（图1）。
由于免疫失调与男性不育之间存在关联，附睾免疫生物学已成为一个不断拓展的研究领域4。过去二十年的研究揭示，附睾中存在免疫系统的多种组分，例如常驻免疫细胞类型（如单核吞噬细胞和淋巴细胞），以及在多种非免疫和免疫细胞类型上表达的病原体识别受体［PRRs，例如Toll样受体（TLRs）和NOD样受体］，这些组分共同形成了具有区域特异性的动态附睾微环境5,6,7,8,9。这些附睾免疫组分在附睾的双重功能中发挥关键作用：一方面协调对具有免疫原性的精子产生免疫耐受，另一方面快速启动针对上行性尿道感染及其他有害刺激的免疫应答4,10。影响附睾内这种复杂免疫平衡的因素仍需进一步研究，因为这些因素可能损害附睾功能，从而对男性生育力产生负面影响。
在此背景下，附睾的炎症性疾病（统称为附睾炎）在各年龄段男性中均十分常见，是男性亚生育力和不育的重要病因学因素4,11,12。附睾炎是18至50岁男性中第五常见的男性泌尿系统诊断，仅在美国每年就有约60万例病例4,13。经输尿管上行感染泌尿生殖道病原体（如Escherichia coli）或性传播疾病（如Chlamydia trachomatis）是附睾炎最常见的病因4,14。大多数附睾炎患者出现尾部附睾疼痛，而头部区域受累较少，这突显了附睾对炎症刺激产生区域特异性反应能力的临床意义10。附睾炎可导致精液参数显著恶化（如精子浓度和活动力下降），并在疾病急性期伴有明显的白细胞精子症4,12,15。值得注意的是，尽管药物治疗成功且症状缓解，仍有相当一部分附睾炎患者持续存在少精子症或无精子症16,17。附睾炎对精子质量产生长期影响的机制目前仍不清楚。
人类急性附睾炎样本十分罕见，因为附睾活检存在禁忌，其风险在于穿刺可能导致病原体不受控制地扩散，从而引发败血症和器官损伤，以及因导管破裂导致精子泄漏至间质腔室4。因此，附睾炎的动物模型成为研究该疾病机制的相关工具，可用于评估炎症反应及其后果4,12。在这一领域，啮齿类动物（大鼠和小鼠）是研究附睾炎最常用的模式生物，适用于受控的实验环境4,12。目前已建立多种细菌性附睾炎的啮齿类动物模型，其差异主要体现在病原体类型（如尿路致病性 E. coli 和 C. trachomatis）、感染途径（如逆行性管腔注射和间质注射）、感染部位（如起始段和附睾尾）以及注射后的时程（如数小时至数天）4,12。
病原体相关分子模式（PAMPs）的应用是研究附睾炎的一种有价值工具，因为它能够通过激活特定的模式识别受体（如TLRs）和信号通路，探究由不同病原体（如细菌、病毒和真菌）相关的多种分子所触发的疾病病理生理机制。5,18,19,20,21例如，分别来源于革兰氏阴性菌和革兰氏阳性菌细胞壁的病原相关分子模式（PAMP），如脂多糖（LPS；TLR4 激动剂）和脂磷壁酸（LTA；TLR2/TLR6 激动剂），已通过多种给药途径（包括静脉注射、腹腔注射或）用于诱导附睾炎 通过 直接注射至附睾区域10在这些条件下，LPS和LTA均已被证明可在大鼠和小鼠的附睾中诱导炎症反应，伴随特定区域和时间依赖性地调控一组独特的炎症介质并募集免疫细胞。19,20特别是，将PAMPs特异性地施用于小鼠附睾头部初始段的间质区，或输精管管腔内靠近尾部附睾的区域，最近已成为研究附睾对不同炎症刺激产生近端与远端反应的相关模型，从而为理解该器官不同区域的免疫微环境及其对疾病结局的贡献提供了研究框架4,18,19.
本文介绍了两种不同的实验方案，分别通过间质注射和逆行血管内注射途径，在小鼠附睾的不同区域（即起始段和附睾尾）诱导直接的炎性刺激。这两种方法相结合，可实现病原体相关分子模式（PAMPs）的区域性递送，并可在炎症过程中对附睾的相对区域进行评估。

<table><tbody><tr><td>带角度的钝头手术镊&amp;nbsp;</td><td>Bonther</td><td>xtycga1012</td><td></td></tr><tr><td>带角度手术镊</td><td>Bonther</td><td>pwghvv1012</td><td></td></tr><tr><td>蓝色伊文思溶液</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>E2129</td><td></td></tr><tr><td> bulldog 镊子夹&amp;nbsp;</td><td>Bonther</td><td>jtkpqs1012</td><td></td></tr><tr><td>氯己定</td><td>Rioqu&amp;iacute;mica</td><td>Riohex 0.25%</td><td></td></tr><tr><td>弯头手术镊</td><td>Bonther</td><td>506e6e1012</td><td></td></tr><tr><td>电动修边笔（笔形）</td><td>-</td><td>-</td><td></td></tr><tr><td>Hamilton 注射器</td><td>Hamilton</td><td>80400</td><td></td></tr><tr><td>头戴式放大镜&amp;nbsp;</td><td>OptiVISOR</td><td>-</td><td></td></tr><tr><td>氯胺酮</td><td>Venco Animal Health</td><td>Ketalex</td><td></td></tr><tr><td>LPS&amp;nbsp;（来自大肠杆菌 E. coli 055:B55）</td><td>Invivogen</td><td>Tlrl-pb5lps</td><td></td></tr><tr><td>脂磷壁酸（LTA，来自金黄色葡萄球菌 Staphylococcus aureus）</td><td>Invivogen</td><td>Tlrl-pslta</td><td></td></tr><tr><td>持针器</td><td>Bonther</td><td>8pihbf1012</td><td></td></tr><tr><td>5/0 规格手术缝线</td><td>Shalon Medical</td><td>n550cti20</td><td></td></tr><tr><td>无菌生理盐水</td><td>-</td><td>-</td><td></td></tr><tr><td>直头手术镊</td><td>Bonther</td><td>ejaiuz1012</td><td></td></tr><tr><td>赛拉嗪</td><td>Syntec</td><td>Xilazin</td><td></td></tr></tbody></table>

由病原体相关分子模式诱导的附睾炎小鼠模型

Mouse Models of Epididymitis Induced by Pathogen-Associated Molecular Patterns

附睾炎是门诊泌尿科临床中高度常见的疾病，也是男性不育的重要影响因素。细菌感染，包括性传播细菌和常见尿路致病菌，是附睾炎最常见的病因因素。然而，细菌性附睾炎的发病机制、自然病程及结局背后的病理生理机制仍不甚清楚。在此方面，啮齿类动物模型是研究附睾在受到各种炎症或感染刺激时所产生机制反应的有力工具。大鼠和小鼠的研究表明，来源于革兰氏阴性菌和革兰氏阳性菌的细菌源性病原相关分子模式（PAMPs），如脂多糖（LPS）和脂磷壁酸（LTA），可引发附睾的急性炎症反应。这些炎症反应的严重程度因受累附睾区域不同而异，并与精子参数不良相关。本文详细描述了两种不同的手术方法，通过将PAMPs注射至附睾头段的间质区或输精管朝向尾段附睾的管腔区，在小鼠体内诱导附睾炎，从而可分别研究附睾近端和远端区域的炎症反应。预期这些附睾炎实验模型将有助于未来深入理解附睾对入侵病原体反应的调控机制，为减轻附睾炎对男性生育力的不良影响提供新的治疗干预途径。

本文描述了两种不同的小鼠炎症刺激手术注射模型，分别针对附睾近端（间质注射）和附睾尾部（管内注射）。前者在附睾近端诱发炎症反应，而后者在附睾远端诱发炎症反应。
通过腹部切口进行间质注射，利用小鼠睾丸和附睾经由腹股沟管从阴囊移至腹腔的可能性。在仔细暴露切口区域的起始段后，将注射液注入附睾第一段（第1段）的间质间隙（图2A 和 补充图1）。使用伊文思蓝染料显示，注射液在注射后30分钟内主要局限于小鼠附睾第1段，证实了间质隔膜在限制注射物质扩散中的屏障作用22,23。然而，在注射后30分钟，染料已扩散至起始段和附睾头邻近的其他节段（图2B 和 补充图1）。</...

本文描述了两种不同的手术注射模型，用于在小鼠附睾的起始段（间质注射）和附睾尾部（管内注射）诱导炎症刺激。这些方法可用于研究附睾不同区域的部位特异性反应。

附睾炎是门诊泌尿科临床中高度常见的疾病，也是男性不育的重要因素。细菌感染，包括……

我们研究炎症对男性生殖力附睾生理的影响。精准分隔注射炎症诱导剂，且无损伤。小鼠模型中的附睾管需要复杂的外科技能和训练。开始时，将麻醉动物放在手术场上仰卧。使用电动修剪笔，对小鼠腹部进行毛发切除，完全去除毛发。然后，使用浸泡0.25%氯己定溶液的无菌棉。然后用酒精进行腹部无菌。用15号手术刀在腹壁右侧切开大约四毫米的垂直切口。现在，用倾斜钝头的手术钳轻轻分离皮肤。然后，用同一把手术刀在第一次切口侧腹膜上再做一个大约四毫米的垂直切口。通过轻轻推压阴囊右侧，小心地将睾丸中的附睾从腹腔中抬起。使用弯曲的手术钳，轻轻拉出附睾白色脂肪组织，定位附睾的初始段。借助附睾白色脂肪组织，在切口处露出初始节段。接着，将预装注入溶液的汉密尔顿注射器与初始段第一段约90度平行的位置放置。小心地将针插入夹层间隙，斜角朝下。然后，将弯曲的手术钳子放在针头插入点，轻轻捏住附睾囊和针头。缓慢按下注射器活塞，直到整个刺激溶液都被注射完毕。保持弯曲手术产钳的位置，小心取出针头，约30秒后松开弯曲手术钳。接着，利用附睾白色脂肪组织，轻柔地将睾丸组织回归腹腔。用针架和50号手术缝线缝合两针，确定腹膜并闭合，同时用两针缝合皮肤切口。术后观察小鼠，确保术后恢复情况良好。麻醉后，将小鼠置于手术区上仰卧。将食指和拇指放在阴囊下方，按诊并确认睾丸和附睾的位置。如有必要，轻柔地按摩腹部两侧朝向阴囊方向，引导睾丸和附睾就位。使用电动修剪笔对阴囊进行三毛切除术，完全去除毛发，并用浸泡在0.25%氯己定溶液中的无菌棉消毒，然后再用酒精消毒。用食指和拇指轻轻拉伸阴囊皮肤。使用15号手术刀，在阴囊内侧做一个大约两毫米的垂直切口。现在，轻轻将左睾丸和附睾移回腹腔，同时保持右睾丸和附睾在阴囊内。食指和拇指位于右侧睾丸和附睾下方，轻柔地拉伸阴囊皮肤。然后，使用带斜角的钝头手术钳，小心地开合精子筋膜的尖端，以破裂内精筋膜和阴道束膜。接着，减轻食指和拇指的压力，将斜角手术产钳从阴道外套的开口插入阴囊底部。用镊子小心拉出远端附睾脂肪以定位尾骨附睾。现在定位输精管，将直立的手术钳放在输精管下方。将斗牛犬镊子夹固定在输精管上，确保尾骨附睾与夹具之间有足够空间。然后，将预装注射液的汉密尔顿注射器以大约10到15度的角度与输精管平行，针头朝上插入输精管。轻轻挤压直立手术产钳以释放输精管，然后缓慢按下注射器活塞，将整个刺激液注入。现在，取出直立的手术钳。使用弯曲的手术钳，轻轻捏住针头插入部位周围区域，然后小心地拔出注射针。大约30秒后，取出弯曲的手术产钳和斗牛犬镊夹，轻轻将输精管回归阴囊。接下来，识别阴道束缚，用针夹和50号手术缝线缝合。用食指轻轻将右睾丸和附睾推回腹部，将左睾丸和附睾移入阴囊。最后，用针架和5-0号手术缝线缝合阴囊皮肤切口，观察小鼠情况，确保术后恢复正常。初始段间隙注射导致注入的蓝色埃文斯染料主要限制在第一段，注射后最多30分钟，随后扩散至相邻段和附睾。输精管内注射将蓝色埃文斯染料限制在第10段腔内，注射后最多30分钟。组织学照片显微照片确认，盐水对照注射在治疗后72小时内未改变附睾形态。初始节段间质性LPS注射诱发间质性水肿，治疗后72小时内强烈的间质、上皮内和腔内免疫细胞浸润。在尾骨附睾内注射LPS或LTA时，治疗后72小时内出现间质性水肿和间质及腔内腔室的免疫细胞浸润。缺乏可重复的动物模型研究局部附睾炎症及其对男性生育能力的影响。直接区域注射引发炎症的化学物质，能够精确分析附睾结局中区域特异性的免疫反应。

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Research

科研

JoVE Journal

Immunology and Infection

免疫学与感染

由病原体相关分子模式诱发附睾炎的小鼠模型

来源：Conover, M. S., et al., J. 建立并表征小鼠模型中的尿路感染与导管相关性尿路感染。J. Vis. Exp.

小鼠模型中的导管相关性尿路感染

前列腺感染可能是介导慢性前列腺炎盆腔疼痛的一个影响因素。本文描述了制备标准化细菌接种物的操作步骤、将细菌接种至雄性小鼠尿道的方法，以及随时间测定小鼠触觉异常性疼痛的技术方案。...

细菌性前列腺炎小鼠模型中触诱发痛的测定

Citrobacter rodentium 小鼠模型：研究病原体与宿主在感染性结肠炎中的作用

用于研究靶向微血管系统的细菌感染的人源化小鼠模型

动物模型在阐明宿主和病原体特异性机制以促进慢性炎症发展方面已被证明是不可或缺的工具。本文描述了一种利用人类病原体牙龈卟啉单胞菌（Porphyromonas...

一种用于研究病原体诱导局部及全身慢性炎症的小鼠模型

建立尿路感染（UTI）模型的能力对于理解细菌致病机制以及推动新型治疗方法的开发至关重要。本研究的目标是展示能够重现并预测人类中观察到的实验结果的小鼠实验性尿路感染模型以及导管相关性尿路感染模型。...

小鼠模型中尿路感染和导管相关尿路感染的建立与表征

我们正在测量经历早期生活应激范式——新生儿期母体分离的雄性C57BL/6小鼠前列腺中的会阴部机械敏感性及肥大细胞活化情况，以建立慢性前列腺炎/慢性盆腔疼痛综合征的临床前模型。...

新生儿期母体分离小鼠模型中肛周感觉敏感性及前列腺肥大细胞活化的评估

足垫接种模型是体内表征病毒诱导的神经炎症反应的有力工具。特别是，该模型可清晰评估外周神经系统中启动的病毒动力学及相关的免疫病理过程。...

小鼠足垫接种模型用于研究病毒诱导的神经炎症反应

实验性自身免疫性脑脊髓炎是目前最常用的多发性硬化小鼠模型之一。在本方案中，对两种性别的C57BL/6J小鼠使用髓鞘少突胶质细胞糖蛋白肽进行免疫，主要导致尾巴和肢体的上升性轻瘫。本文将讨论EAE的诱导与评估方案。...

在两种性别中建模多发性硬化症：MOG35-55诱导的实验性自身免疫性脑脊髓炎

建立小鼠阴道上行感染、早产及新生儿发病模型

本方案描述了一种基于小鼠前列腺类器官的二维培养模型的建立方法。内容包括类器官解离、细胞接种、分化、上皮完整性评估以及 体外 感染尿路致病性...

建立基于小鼠前列腺类器官的宿主-病原体相互作用研究模型

了解两种小鼠附睾炎手术注射模型，通过间质注射和血管内注射分别靶向附睾起始段与尾段，研究区域特异性炎症反应机制，为生殖健康研究提供有效方法。

由病原体相关分子模式诱导的附睾炎小鼠模型

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