2026年4月3日
本文介绍一种通过胶原酶A和胰蛋白酶序贯消化从小鼠完整角膜获取高质量单细胞悬液的实验方案。该方法获得的单细胞具有较高的RNA完整性和活性,适用于单细胞RNA测序和流式细胞术等下游应用。y.
本方案主要介绍一种从完整小鼠角膜中获取高质量单细胞的方法。我们的方法可获得具有高RNA完整性的活细胞,适用于单细胞测序及流式细胞术等下游应用。首先,将一只6至8周龄的雌性C57BL6小鼠安乐死后置于无菌解剖台上。
用 PBS 冲洗闭合的眼睑后,使用眼科剪在眼球后极处做一切口,并小心将分离的眼球置于含有冰上预冷的补充激素上皮细胞培养基的培养皿中。用添加了 5% 青霉素-链霉素的 1×PBS 冲洗眼球三次后,使用眼科剪和镊子从后极向角膜缘做一切口。沿角膜缘边界轻轻将角膜从巩膜和结膜上分离,然后使用两把镊子完全移除晶状体和虹膜。
用 PBS 清洗角膜组织三次后,将洁净的组织转移至新管中。加入 1 毫升浓度为 5 毫克/毫升的胶原酶 A 溶液,使用眼科剪将组织剪切成约 0.5 × 0.5 毫米大小的碎片。将含有角膜碎片和胶原酶 A 溶液的试管置于细胞培养孵箱中,在 37 °C 条件下孵育 1 小时。
消化过程中每 10 分钟检查一次组织。当无较大组织碎片残留时,在室温下以 300×g 离心 5 分钟,然后小心吸除上清液。接着将沉淀重悬于 200 µL 0.25% 胰蛋白酶-EDTA 溶液中。
将试管放入设定为 37 摄氏度的细胞培养孵育箱中孵育 10 分钟,以消化残留的组织碎片。最后,使用配有宽口吸头的 P1000 移液器轻轻吹打混合物,以获得单细胞悬液。按照之前的方法离心细胞悬液,并将细胞沉淀重悬于含有 0.04% BSA 的 PBS 中。
使用血细胞计数板对分离的角膜细胞进行计数后发现,从八只角膜中总共获得 1.05 × 10⁵ 个细胞,平均细胞活力为 94.6%,单细胞比例超过 96.3%,证实该细胞悬液适用于后续实验。免疫荧光分析显示,细胞悬液中包含 83.5% 的泛细胞角蛋白(pan-CK)阳性上皮细胞、13.5% 的角蛋白聚糖(keratocan)阳性基质细胞,以及约 3% 的两种标志物均为阴性的细胞。从单细胞悬液中提取的 RNA 其 RNA 完整性数值(RIN)约为 8.8,28S 与 18S 核糖体 RNA 的比值约为 2.15,表明 RNA 质量优良。
获得单细胞后,我们可以表征角膜细胞的功能并探索其表面标志物,这有助于研究细胞间的相互作用。该方法的一个挑战是难以将角膜与其他组织完全分离。
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本文介绍了一种从完整小鼠角膜中分离高质量单细胞悬液的可靠方案。该方法结合了精确的组织解剖与连续的酶消化步骤,能够制备适用于单细胞RNA测序(scRNA-seq)和流式细胞术等下游应用的活细胞。该方案可获得较高的细胞得率、优异的细胞活力,并保持RNA完整性,有助于对角膜细胞异质性进行深入分析。
从小鼠角膜获得高质量的单细胞悬液对于推动发现阶段的眼科研究以及实现高分辨率的细胞图谱分析至关重要。本方案解决了从致密的眼部组织中制备具有活性且RNA完整的单细胞这一关键瓶颈问题,直接影响下游单细胞分析结果的可靠性。高质量的细胞制备可提高靶点验证的预测可信度,并支持从发现研究到临床前研究的转化连续性。
本方案整合了早期发现与临床前研究的衔接环节,能够实现从组织解离到单细胞分析及后续功能研究的无缝过渡。