2026年4月30日
本文介绍了一种捕捉RNA相关染色质DNA-DNA相互作用的方案,用于绘制RNA相关三维基因组组织图谱。
我们开发了RNA相关染色质DNA-DNA相互作用法(RDD方法),用于绘制由特定RNA分子组织的染色质接触图。RDD能够强有力地绘制RNA特异性染色质带带及跨内源性和外源RNA的远程相互作用。首先,将果蝇S2双联细胞衍生的渗透核颗粒重新悬浮于15毫升含Triton X-100的0.1%FA裂解缓冲液中。
将1.5毫升的核悬浮液注入14毫升圆底试管,同时避免气泡形成。以38%幅度对悬浮进行超声处理,持续4.5分钟,使用30秒开启和30秒关闭的循环。将超声处理的染色质收集到15毫升管中,在室温下以3,200克离心20分钟。
将约13毫升的上清液转移到新的15毫升管上。现在,将100微升已准备好的链亲亲和素C1珠加入含有超声染色质的管子,并在室温下旋转20分钟。然后,将管子放在磁性架上,停留一分钟,将含有预先清除的染色质的上清液转移到新的50毫升管中。
将10微升分量存放于零下20摄氏度进行分析。在室温下,将26毫升新鲜制备的杂交缓冲液与13毫升预先清除的染色质一起在旋转器上孵育30分钟。接着,将杂交混合物分成三根15毫升的管子,并在每个样品中加入6微升100微摩尔生物素化探针。
用胶片封住管盖后,晚上以37摄氏度旋转管子。阻断链亲和芬C1珠后,移除阻断缓冲液,将珠子重新悬浮于400微升杂交缓冲液中。现在,将阻断缓冲处理的链甲亲和素C1珠加入先前制备的对应杂交染色质中。
将混合物在室温下旋转2.5小时。丢弃上清液并将珠子转移到1.5毫升管中后,先用800微升洗涤液清洗珠子五次,再用TE缓冲液洗两次。最终清洗后,丢弃上清液,并将珠子重新悬浮在1000微升含1X蛋白酶抑制剂的TE缓冲液中,室温下使用。
对于阻断结合在探针染色质复合体上的链亲和素C1珠上未占位点,向探针染色质复合物中加入220微升变性IPB珠子,并在室温下旋转管子15分钟。孵育后,使用TE缓冲液洗涤链氨亲定C1珠五次。接着,向链霉亲和素C1珠子上的染色质中加入693微升末端修复混合物,充分混合。
然后加入七微升T4 DNA聚合酶。将混合物放入热混合器中,以每分钟800转、12摄氏度的温度孵育30分钟。然后将样品放入搅拌机上,温度为16摄氏度,孵育15分钟。
用800微升冰冷的ChIA-PET缓冲液清洗珠子三次,然后用TE缓冲液洗一次。然后,向链霉亲和素C1珠上的染色质中加入693微升A尾混合液,充分混合。接着,加入7微升Klenow片段,3级引级到5级外切酶减去。
将管子以每分钟12转、37摄氏度的混合器孵育50分钟。用800微升冰冷的ChIA-PET缓冲液清洗三次,然后用轻柔移液洗一次洗脱缓冲液。现在,将1,390微升近接连接混合物加入链霉亲和素C1珠上的染色质,并在室温搅拌机中培养五分钟。
加入10微升T4 DNA连接酶,在室温下以每分钟20转的速度旋转培养五分钟,然后在室温下转为每分钟12转,持续50分钟,并在16摄氏度继续过夜。接着,用800微升冰冷的ChIA-PET缓冲液清洗三次,再用TE缓冲液清洗两次。释放染色质时,向链霉亲生C1珠上的染色质加入480微升LC ChIP洗脱缓冲液,并充分混合。
加入20微升每毫升20毫克蛋白酶K以实现去联。将试管以每分钟950转、65摄氏度的热混合器孵育一夜,然后用酚:氯仿:异戊醇试剂纯化近接DNA。将Tn5标记测试所需的所有成分加入冰上PCR管中,总反应体积为50微升。
在55摄氏度下,将标记反应在热循环器中孵育10分钟,盖子设为70摄氏度,然后保持在4摄氏度。在标记的DNA中加入50微升ChIP洗脱缓冲液和1微升蛋白酶K。将溶液混合后,在65摄氏度、每分钟900转的热混合器上孵育30分钟。
使用DNA纯化试剂盒进行DNA纯化,并使用自动毛细管电泳系统定量DNA。将所有断片连接的DNA加入预先用阻断缓冲液和基因组DNA封闭的M280珠中,混合悬浮液。在室温下将管子在搅拌机上旋转45分钟。
短暂旋转后,将管子放在磁性架上,丢弃上清液。洗涤步骤后,在不混合的情况下向珠子中加入30微升的洗脱缓冲液。按照DNA库的制备套件准备PCR混合物。
将PCR管转移到PCR机器并设置扩增程序。最后,在用磁珠纯化PCR产物后,使用核酸定量器测量10至30纳克的文库DNA,以准备测序样品。超声染色质片段约为1000至3000碱基对,表明成功断裂。
RNA相关染色质的片段大小范围约为1000到3000碱基对。用Tn5标记的染色质显示出显示出显示染色质标记效率的片段分布。扩增后的测序文库显示出约180到1,000碱基对的片段大小分布。
在选定尺寸后,测序文库片段主要在约250至600碱基对范围内富集。RNA关联染色质DNA-DNA相互作用(RDD方法)检测了NC RNA roX2和7SK结合的基因组位置,以及相应的远程染色质相互作用环路。RNA聚合酶II ChIA-PET的数据显示,这些NC RNA与基因表达之间存在明确的调控关系,峰值表明相互作用强度。
通过整合RDD锚定的相互作用与Hi-C全基因组染色质构象图谱及表观基因组标记、新生转录以及RNA聚合酶II的ChIA-PET数据,实现了多维分析。在这些区域,拓扑结合的结构域被清晰可见,RNA引导的染色质环常位于其边界或跨越多个此类结构域。此外,还确定了以RNA为中心的调控枢纽。
RDD方法及锚定染色质相互作用揭示了RNA结合位点及三维基因组组织中的相关DNA-DNA相互作用。关键教义是在聚合酶连接前,保持正确的探针、连接蛋白和染色质比值,并用天然生物素阻断未受限链霉亲和素位点。未来的研究可以探索RNA如何动态地绕线染色质相互作用,跨越发育、扰动和感染。
RNA相关染色质DNA-DNA相互作用方法(RDD)是一种靶向性方法,用于绘制由特定RNA锚定的染色质相互作用图谱。该技术能够同时鉴定与目标RNA相关的基因组位点,并解析这些位点之间的长程DNA-DNA相互作用,从而为基因组空间结构和调控机制提供深入见解。
RNA相关染色质DNA-DNA相互作用方法(RDD)使生物制药研发团队能够绘制由特定RNA锚定的染色质相互作用图谱,从而提供对调控性基因组结构的高分辨率洞察。该技术可在早期发现和临床前关键节点支持作用机制的去风险化及靶点验证,尤其适用于RNA介导的调控通路。RDD与多种细胞类型以及内源性和外源性RNA均兼容,因而适用于复杂的疾病模型和宿主-病原体研究,具有广泛的项目应用价值。
RDD 融入从早期机制研究到临床前模型验证的整个发现过程,支持靶点识别和转化研究。