2026年4月10日
我们描述了一种物理限制方法,可从Xenopus laevis单细胞胚胎制备微型胚胎。
我们的研究通过在早期发育初期物理性地生成微型胚胎,探究细胞大小如何调控早期胚胎基因组的激活。现有方法难以直接评估细胞大小对基因组激活的影响,而本方法通过直接改变单细胞胚胎的大小来解决这一问题。首先,准备用于约束胚胎的发丝结:将细发丝剪成约五厘米长的小段。
使用镊子将毛发的一端插入 P10 吸头中,深度约为一厘米。然后取适量石蜡置于勺中,加热至石蜡完全熔化。迅速将带有毛发的 P10 吸头浸入熔化的石蜡中,并静置干燥一分钟。
确保将毛发固定在P10枪头末端。使用镊子小心地将毛发打一个单结,调整环的大小至约1.5毫米。
修剪多余的毛发。首先,获取通过标准体外受精程序产生的非洲爪蟾胚胎,并显微注射五乙醇尿苷以标记新生转录本。接着,将15毫升含有0.5× MMR的3%密度梯度培养基加入预先准备好的、覆盖琼脂糖的60毫米培养皿中。
受精后一小时,将胚胎转移至培养皿中。在体视显微镜下,用镊子将胚胎旋转约45至60度,以暴露植物极。用镊子固定胚胎,另一只手持30号针头,小心刺穿植物极。
将连接在P10枪头上的毛发结置于胚胎上方,使动物极位于毛发结内。根据微型胚胎的大小调整毛发结的位置。使用P10移液枪头和镊子,向相反方向拉动毛发结的两端,使其在动物极与植物极之间紧密缠绕于胚胎周围。
轻轻按压胚胎,释放少量细胞质。然后剪断与P10尖端连接处的发结。在制备出所需数量的微型胚胎后,将其置于3%密度梯度培养基中静置约一至两小时。
然后使用P1000移液器小心去除培养基,避免扰动胚胎,并加入15毫升0.1x MMR。待胚胎发育至所需阶段后,移除毛发结。受精后8.5小时获得的胚胎显微图像显示,部分微型胚胎的体积约为对照组胚胎的三分之一,表明早期非洲爪蟾胚胎可通过操作生成微型胚胎。
执行该方案时最重要的挑战是结扎单细胞胚胎以制造微型胚胎。利用本方案获得的微型胚胎可用于成像和测序,以开展机制研究。未来的研究可探索胚胎和细胞大小如何调控早期发育及其潜在机制。
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早期胚胎发育过程中,细胞尺寸迅速减小,而胚胎总体积保持不变,从而改变了核质比(N:C),而核质比调控着关键的发育过程。本文介绍了一种通过使用毛发结扎限制单细胞非洲爪蟾(Xenopus laevis)胚胎以减少细胞质体积、提高核质比,从而生成微型胚胎的方法。由于细胞尺寸的减小,这些微型胚胎启动了早期合子基因组激活(ZGA),为研究尺寸介导的发育机制提供了一种有效工具。
通过物理操作Xenopus胚胎以生成微型胚胎,可直接探究细胞大小和核质比(N:C)如何调控早期发育机制。该方法为解析尺寸介导的调控通路提供了可控的实验体系,有助于在早期发现和靶点验证中建立可预测的信心。该技术在不同胚胎系统中的广泛适用性,进一步增强了其在发育生物学和转化研究中的应用价值。
该方法整合了早期发现与临床前研究的接口,能够实现从机制探究到转化模型构建的假设驱动型研究。