2026年6月22日
该雄性玉米小孢子母细胞免疫定位方案在减数分裂过程中保持了细胞的三维完整性。该方法可在经多聚甲醛固定并保存的材料中,动态追踪最多三种独立抗体的细胞内定位,此外还可使用染色DNA的DAPI。
我们的研究致力于开发一种三维方法,用于研究玉米雄性花粉母细胞,并在单细胞水平上可视化减数分裂蛋白。除了玉米之外,该方案还可应用于水稻、黑麦、大麦和小麦的花粉母细胞研究。实验开始时,获取处于V13阶段的玉米植株,其花序仍处于茎内生长阶段。
在进行小孢子母细胞减数分裂期花药固定的这一周,戴上手套轻轻按压茎部膨大处的突起,检查其是否已足够柔软以便切开。在配制好所需缓冲液后,准备一个湿润室:将5到10张湿润的纸巾放入塑料盒内,去除湿润室中多余的水分。
使用剃刀刀片在花序位置切开茎秆,以暴露雄穗分枝和侧生分枝。解剖并采集侧生分枝后,将其包裹在湿润的培养皿毛巾中,并将培养皿置于室温下。利用体视显微镜,将小花中的新鲜花药收集至含有2毫升1×缓冲液A或BA的35毫米培养皿中。根据大小和颜色鉴定减数分裂时期。
将花药转移至新的35毫米培养皿后,向花药中加入3毫升固定液。用封口膜密封培养皿,防止甲醛挥发。将35毫米培养皿置于放置在旋转摇床中的较大培养皿上,在室温下以40至60转/分钟的速度振荡45分钟。
用3毫升1 XBA冲洗花药。将花药转移至一个小的培养皿后,密封培养皿,并在室温下以40至60 RPM的速度置于旋转摇床上振荡45分钟。使用洁净的镊子将花药转移至含有3毫升1 XBA的小型35毫米培养皿中。
用封口膜将培养皿密封后,将小培养皿放入一个较大的培养皿中。用铝箔包裹后,于4°C保存至使用。第一天,通过等体积混合丙烯酰胺和2 XBA,配制2毫升丙烯酰胺溶液。
在加入亚硫酸钠和过硫酸铵之前,将丙烯酰胺溶液在真空下脱气 5 到 10 分钟。根据所准备载玻片的数量,将 100 微升丙烯酰胺与 2 XBA 1:1 混合液分装至 1.5 毫升离心管中。将 2 厘米 × 2 厘米的帕拉膜片置于培养皿上方,并将其放置在解剖体视显微镜下。
用剪刀修剪移液枪头后,将50微升含花药的BA溶液移取到Parafilm上。再将25微升BA溶液移取到Parafilm的另一区域。用镊子夹住花药后,使用解剖刀切去其顶端。
一旦将小孢子母细胞挤出,使用移液器将其转移至25微升BA液滴中,并轻轻混匀。取10微升小孢子母细胞混合液滴加到另一张盖玻片上。迅速将5微升亚硫酸钠和5微升过硫酸铵加入含有丙烯酰胺和两份XBA的1.5毫升离心管中。
吸取5 µL该混合液滴加到盖玻片上,并与花粉母细胞混合。以45度角将一片多聚赖氨酸包被的盖玻片覆盖在上方。室温下静置30至50分钟,使其充分聚合后,用刀片小心地将盖玻片分开。
然后将它们垫面朝上放入培养皿中。用1毫升含有1毫摩尔乙二胺四乙酸(EDTA)和1% Triton的1×PBS溶液在室温下冲洗盖玻片2小时。选择来自不同宿主物种的一抗并进行配制和混合,以确保检测时信号相互区分。
向含有垫片的盖玻片中央加入 50 微升稀释的一抗溶液。然后将培养皿放入湿盒中,4°C 孵育过夜。第二天,配制 500 毫升洗涤缓冲液,其中包含 1×PBS、0.1% Tween 20 和 1 毫摩尔 EDTA。
使用移液器移除过夜溶液。用一毫升洗涤缓冲液将盖玻片洗涤两次。移除缓冲液后,再次加入一毫升洗涤缓冲液,并在室温下孵育一小时。
重复此洗涤步骤七次。最后一次洗涤后,盖上培养皿,置于湿盒中过夜。用封闭缓冲液将二抗按1:50的比例稀释,进行配制。
吸去洗涤液后,向每块垫片中央加入50 µL稀释后的二抗。然后将培养皿置于湿盒中,室温孵育2小时。吸去孔中溶液后,用1 mL洗涤缓冲液在室温下洗涤4次,每次1小时。
用一毫升 PBS 清洗孔板,每次 10 分钟,重复此过程两次。向孔板中加入 500 微升 DAPI(配制为终浓度 1 微克/毫升),室温孵育 30 分钟。将长期保存在 4 摄氏度的金颗粒取出后,使其解冻至室温。
用一毫升 PBS 清洗载玻片 30 分钟,重复两次。除去最后一次清洗液后,在垫片中央加入两滴长效抗荧光淬灭剂。将盖玻片从孔中取出后,将其封固在已标记的载玻片上。
使用真空装置从盖玻片边缘去除多余的甘油,并用两层指甲油封片。在显微镜下选择适当的激发波长和滤光片观察样品并采集图像。DAPI染色显示出清晰的细胞核以及染色质,同时可见质体和线粒体DNA较弱的天然细胞质染色。
在前细线期,染色体上和细胞质中均无减数分裂第一分裂缺失蛋白1(Absence of first division one,AFD1)、无联会蛋白1(asynaptic one,ASY1)以及联会复合体中央元件蛋白Zipper1(Zipper1,ZYP1)的定位信号。在后续阶段,信号逐渐集中于染色体上,而在完全联会之前,仍有大量ZYP1保留在细胞质中。减数分裂黏连蛋白AFD1仅在偶线期之后才形成线性结构。
伴随着联会复合体线性纤维的形成,当ZYP1和AFD1被加载到线性结构中后,ASY1信号变得相对较弱。该方案使研究人员能够研究蛋白质的共定位与动态变化、天然亚细胞定位、染色体三维结构、减数分裂进程以及分裂时期的判定。
本方案的主要挑战在于谨慎选择相容的一抗和二抗组合。后续研究可通过比较雄性和雌性减数分裂,进一步探究无合线现象背后的分子机制。
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本方案描述了一种三维保存程序,用于在玉米雄性造孢细胞减数分裂前期 I 期间,将其减数分裂相关蛋白保留在天然的亚细胞位置。与传统的铺展和压片技术不同,该方法能够维持细胞质、细胞核以及核内结构的信息,从而实现对参与重组、配对和联会的关键蛋白进行可靠的免疫定位。该方法可高效固定减数分裂期的花药,分离并释放造孢细胞,并同时检测三种关键蛋白。
保持亚细胞蛋白质定位对于靶点验证中的机制性风险消除至关重要,尤其是在研究减数分裂等复杂生物学过程时。这种三维免疫定位方法可维持蛋白质天然的空间环境,从而更可靠地解析其在重组、配对和联会过程中的功能。通过避免传统铺展技术造成的信息丢失,该方法有助于在早期发现流程中实现更高的预测可信度。
该方法通过保留蛋白质的定位,支持早期发现生物学研究,从而实现假设验证和通路解析。它提供定量且具有空间分辨率的结果,用于比较分析,从而提升筛选的准备性。该方法通过保持从亚细胞结构到表型结果的机制保真度,促进了转化医学研究。