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Southern Blotting ist eine Technik, bei der eine markierte DNA-Sonde mit einer Ziel-DNA hybridisiert, um eine bestimmte Sequenz innerhalb eines Genoms nachzuweisen.
Die Technik ist nach Edwin Southern benannt, dem britischen Biologen, der sie als erster entwickelt hat.
Das Verfahren besteht aus fünf Hauptschritten: Elektrophorese, Denaturierung, Membrantransfer, Hybridisierung und Visualisierung.
Zunächst wird die genomische DNA durch Restriktionsenzyme verdaut, und die resultierenden DNA-Fragmente werden auf ein Agarosegel geladen und mittels Gelelektrophorese getrennt.
Zur Denaturierung oder Trennung der doppelsträngigen DNA in zwei einzelsträngige DNA, oder ssDNA, wird das Gel in einer Natriumhydroxidlösung eingeweicht.
Das Gel wird dann auf einen Schwamm in einer DNA-Neutralisationslösung gegeben, die Natriumchlorid und Trispuffer enthält, um seinen pH-Wert auf 7,0 zurückzusetzen.
Als nächstes wird eine Nylonmembran auf das Gel gelegt und mit einem Stapel Papiertücher beschwert. Die ssDNA wird durch Kapillarwirkung auf die Membran übertragen, während die hohe Salzkonzentration in der neutralisierenden Lösung die Bindung der DNA unterstützt.
Bei Bestrahlung mit UV-Strahlen wird die DNA kovalent mit der Membran vernetzt. Dies verhindert die Diffusion und immobilisiert die DNA-Banden.
Die Membran wird dann in einer Lösung aus denaturierter Lachsspermien-DNA getränkt. Die Lösung umhüllt die Membran und verhindert eine unspezifische Bindung an die Sonden-DNA.
Bei den Sonden handelt es sich um kurze, einzelsträngige DNA, die eine komplementäre Sequenz zu den Ziel-DNA-Fragmenten haben. Zur Visualisierung werden die Sonden entweder mit einem radioaktiven Phosphor – P-32 – oder einem Enzym markiert, das ein leicht nachweisbares Produkt erzeugt.
Wenn die Membran in einer Pufferlösung, die die Sonden enthält, getränkt und auf 42 °C erwärmt wird, paart sich die Ziel-ssDNA mit der komplementären Sonden-DNA, um eine markierte, hybride, doppelsträngige DNA zu bilden.
Nach der Hybridisierung über Nacht wird die Membran gewaschen, um die ungebundenen Sonden zu entfernen.
Für radioaktiv markierte DNA wird die Membran zur Detektion mit einem Röntgenfilm belichtet.
Enzymmarkierte Sonden können nachgewiesen werden, indem ein geeignetes Substrat hinzugefügt und die Banden sichtbar gemacht werden, während sich die Farbe oder Lumineszenz entwickelt. Da die markierten Sonden nur an die interessierende DNA-Sequenz binden, weist jede sichtbare Bande auf das Vorhandensein der Ziel-DNA hin.
Die Agarosegelelektrophorese ist sehr nützlich, um DNA-Fragmente nach Größe zu trennen. Wenn man eine DNA-Leiter mit Fragmenten bekannter Länge neben…
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