32.11
Forscher können ein Protein von Interesse mit einer bekannten Proteinsequenz, auch Tag genannt, markieren, um seine Reinigung und Detektion zu erleichtern.
Um ein Protein zu markieren, wird seine Nukleotidsequenz zunächst in einen Expressionsvektor eingefügt, der einen Fusionstag enthält.
Der Vektor wird dann in eine Wirtszelle eingeführt, die ein rekombinantes oder Fusionsprotein produzieren kann.
Je nach vorgesehener Downstream-Anwendung können verschiedene Arten von Schweißetiketten verwendet werden.
Epitop-Tags können verwendet werden, um Proteine zu untersuchen oder nachzuweisen, gegen die keine Antikörper verfügbar sind. Wenn ein Protein mit einem bekannten Epitop-Tag, wie z. B. dem c-Myc-Peptid, markiert ist, kann es mit kommerziell erhältlichen Antikörpern gegen c-Myc leicht nachgewiesen oder aufgereinigt werden.
Histidin-Tags, die 2 bis 10 Histidinreste enthalten, können ebenfalls an ein Protein fusioniert werden. Polyhistidin-markierte Proteine können mit Hilfe von Metallionen-Affinitätschromatographie-Säulen aufgereinigt werden, die zweiwertige Nickel- oder Kobaltionen enthalten.
Fluoreszierende Markierungen, wie grün fluoreszierendes Protein oder GFP, emittieren Fluoreszenz, wenn sie Licht ausgesetzt werden. Daher kann ein GFP-markiertes Protein mit Hilfe der Fluoreszenzmikroskopie in lebenden Zellen sichtbar gemacht werden.
Proteine sind an mehreren zellulären Prozessen und biochemischen Reaktionen beteiligt. Um ein spezifisches Protein von Interesse zu analysieren, muss…
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