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Methodenartikel

Menschliche Inselzellen der Bauchspeicheldrüse Isolation: Part I: Verdauung und Sammlung von Pankreasgewebe

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DOI:

10.3791/1125

26. Mai 2009

In diesem Artikel

Zusammenfassung

Das Erreichen hoher Qualität und ausreichender Menge menschlicher Inselchen ist einer der führenden Voraussetzungen für eine erfolgreiche Inseltransplantation. In diesem Video, beschreiben wir Schritt für Schritt die Verfahren für die menschliche Inselzellen der Bauchspeicheldrüse Isolation (Teil I: Verdauung und Sammlung von Pankreasgewebe) mit einem modifizierten automatisierte Methode.

Zusammenfassung

Management von Typ 1 Diabetes ist belastend, sowohl für den Einzelnen und die Gesellschaft, im Wert von über 100 Milliarden Dollar jährlich. Trotz der weit verbreiteten Verwendung von Glukose-Monitoring und neue Insulin-Formulierungen, viele Menschen immer noch zu entwickeln verheerenden Folgekomplikationen. Inselzellen der Bauchspeicheldrüse Transplantation kann bei normalen Blutzuckerspiegels bei Diabetes-Patienten wiederherstellen

Protokoll

1. Facility-Setup

  1. Menschliche Insel Isolation ist ein zeitkritischer Vorgang, dass Teamarbeit beinhaltet, und damit vier Personen werden benötigt, um dieses Verfahren durchzuführen. Das Team wird von den Chirurgen, wer und seziert cannulates der Bauchspeicheldrüse.
  2. Das Inselchen Isolation beginnt die Minute das Team in die UIC Insel absperrbar. Team-Mitglieder zu gewährleisten, dass alle notwendigen Instrumente, wie die Zentrifuge, wird geprüft und eingeschaltet ist. Sie machen auch sicher, dass alle Hauben und Flächen desinfizieren.
  3. Zwei Personen richtet die Kanülierung Tisch, Matsch-Maschine, die Verdauung Schaltung, Perfusion Einheit, COBE Reinigung Maschine und OP-Tische.
  4. Gleichzeitig werden zwei weitere Team-Mitglieder bereiten die Medien, die bei der Isolierung benötigt wird.
  5. Als nächstes werden die Bakteriologie Röhrchen (Flaschen, Rohre, Form und Tasche), die Probenahme-Röhrchen (mit Wasch-Fertigspritze) und Beurteilung Rohren und Platten hergestellt.
  6. Bereiten Sie die Reinigung Rohr wie folgt festgelegt: Der 1. Tube leer und markierte bei 150 ml, Röhrchen 2-12 Jahren mit 200 ml M199 Medium mit humanem Albumin (Waschlösung) ergänzt gefüllt und markierte bei 230 ml, und schließlich eine 50 ml konischen Rohr gefüllt mit 50 ml Waschlösung. Sobald diese vorbereitenden Schritte abgeschlossen sind wir bereit sind, beginnt die Vorbereitung und Perfusion des Pankreas.

2. Pancreas Vorbereitung und Perfusion

  1. Zu Beginn der Zubereitung und Perfusion des Pankreas entfernt ein Bediener die Orgel aus der Verpackung mit sterilem Technik. Der Chirurg wird in der Bauchspeicheldrüse die Dekontamination Tabelle zu übertragen.
  2. Der Chirurg wird eine 60 ml Spritze mit der ursprünglichen Bauchspeicheldrüse Konservierungslösung und geben es an einen Betreiber, die es benutzen werden, um vorbereitet "Procurement" Bakteriologie Flaschen füllen zu füllen.
  3. Nach einer Sichtkontrolle zu prüfen, ob die Orgel geeignet für kleine Insel-Isolierung (Wenn die Bauchspeicheldrüse bei der Beschaffung beschädigt oder anatomisch abnormal, sie dürfen nicht für Insel Isolierung verwendet werden), wird der Chirurg bitten, die Kollagenase vorzubereiten. Denken Sie daran, dass Resuspension Zeit zwischen verschiedenen Enzym Marken und viel variiert.
  4. Wenn der Chirurg fertig ist, bringen die Dekontaminationslösungen (Betadine, Fungizone / Cefazolin und HBSS), die Dekontamination Tisch und gießt sie in die entsprechenden Container. Chirurg führt Bauchspeicheldrüse Dekontamination Waschen für eine Minute der Bauchspeicheldrüse in jedem der Dekontaminationslösung. Die Bauchspeicheldrüse ist dann in einem kleinen sterilen Glas, in dem sie gewogen werden gestellt. Nach dem Gewicht in die Batch eingetragen ist, ist die Bauchspeicheldrüse in die Kanülierung Pfanne mit etwas Erhaltung Lösung gegeben.
  5. Der Chirurg wird ausgesetzt und teilweise incise den Hauptkanal und kanülieren jeweils die Hälfte der Bauchspeicheldrüse mit einer Kanüle. Die Kanüle wird durch Naht gesichert werden. Um perfuse der Bauchspeicheldrüse, bewegen sie die Durchblutung Einheit und gießen Sie die Enzymlösung in das Becken. Insgesamt Perfusion beträgt ca. 10 Minuten, bei 80 mmHg für 5 Minuten, dann bei 180 mmHg für 5 Minuten. Pancreas aufgetrieben nach Perfusion.
  6. Bewegen Sie den perfundierten Pankreas der Kanülierung pan, wo das Fettgewebe aus der Bauchspeicheldrüse getrimmt wird sorgfältig. Dann schneiden Sie die Pankreas in 10-12 Stück und Transfer zum Ricordi Kammer für die Verdauung.

3. Pankreas Verdauung

  1. Zu Beginn der Verdauung Schritt übertragen die Bauchspeicheldrüse an, die leeren Ricordi Kammer, fügen Sie eine 2,5 ml-Fläschchen von Pulmozyme, auf dem Bildschirm put (Vermeidung großes Stück Gewebe Block der Kammer), in der Nähe der Kammer, und füllen Sie das System.
  2. Starten Sie pumpt die Lösung für 5 Minuten. Schütteln Sie die Kammer gleichmäßig verteilen warme Lösung über. Nach fünf Minuten schütteln die Kammer für die gesamte Verdauung Phase. Pflegen Sie die Temperatur bei 37 ˚ C.
  3. Rock the Kammer leicht, bis die Temperatur erreicht 37 °, dann schütteln die Kammer. Nehmen Sie eine Probe alle zwei Minuten und erkennen, ob freie Inselchen in den Anwendungsbereich zu finden sind. Notieren Sie sich den Inselzellen Evaluation Informationen bei der Verdauung Tisch des Chargenprotokolls. Fahren Sie mit dem Prozentsatz der Inseln überwachen, bis es 50% von ihnen frei schwebend und isoliert in der Lösung sind.

4. Tissue-Sammlung

  1. Sobald 50% der Inseln zu finden sind kostenlos in den Proben, die Verdauung durch Zugabe von kaltem RPMI Verdünnungslösung in den Kreis gestoppt. Das Gewebe wird in 500 ml konische Röhrchen mit 30 ml Humanalbumin vorgefüllten gesammelt. Nachdem die Rohre sind gesponnen, Absaugen des Überstandes und Waschen des Pellets mit kalter Waschlösung. Drehen Sie das konische Röhrchen bei 1100 RPM (Umdrehungen pro Minute) für 1 Minute, 4 ˚ C.
  2. Kombinieren Sie alle Sammelröhrchen mit verdaut Pankreasgewebe in einer Einzeldosis von 500 ml konische ausgesetzt. Wenn ein Rohr voller gewaschen Gewebe, Spin und wiederholen Sie den Waschvorgang bis alle Gewebe hat mehrfach gewaschen worden. Spin dieses Rohr und den Transfer des Gewebes in einem 250 ml konischen Rohr. Bringen Sie das Volumen bis zu 250 ml mitM199 Waschlösung mit HA ergänzt und vorbereitet für die Probenahme.
  3. Nehmen Sie eine 1 ml Probe mit einer Pipette und hinzufügen, um eine 15 ml konische Röhrchen mit 9 ml Waschlösung vorgefüllt. Dann durch vorsichtiges Umdrehen des 15 ml konischen Rohr und aus dieser Mischung, Probe aus 1 ml direkt in ein Raster Zählschale. Zählen Sie die Zellen, und berechnen Sie die Anzahl der Zellen mit einem Verdünnungsfaktor von 2500 (10x250).
  4. Drehen Sie das 250 ml konischen Rohr, und fügen Sie 150 ml UW (University of Wisconsin)-Lösung, die normalerweise für die Organkonservierung verwenden. Wenn UW hinzugefügt wird, mischen die Zellsuspension gründlich mit der Pipette. Record und kommunizieren, um die Reinigung Betreiber der Startzeit in UW. Verlassen Sie die Röhre (n) auf Eis und Strudel gelegentlich. Jetzt den Inseln kann weiter gereinigt werden.

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Diskussion

Es gibt eine Vielzahl von Faktoren, die die Isolierung Ergebnis 9,10. Unter ihnen spielt die Verdauung der Pankreasgewebe eine herausragende Rolle. Basierend auf unserer eigenen menschlichen Inselzellen isoliert Erfahrung, fassen wir folgende kritische Punkte, die potenziell beeinflussen könnten das Inselchen Ertrag und Qualität.

  1. Die Verdauung ist unterschiedlich, wenn verschiedene Arten von Enzymen genutzt werden.
  2. Sobald 40-50% der Inseln komplett aus acinärem Gewebe getrennt, sollte die Verdauun...

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Danksagungen

Unterstützt durch Mittel aus dem University of Illinois at Chicago sowie Inselzell Resource Center NIH (RFA-RR 05 bis 003), der Christopher-Stiftung, die Efroymson Foundation, und die Tellabs-Stiftung.

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Materialien

Liste der in diesem Artikel verwendeten Materialien
NameUnternehmenKatalognummerKommentare
Eisschlamm-MaschineGerätTaylor CompanyK4036546steriles Eis herstellen
ZentrifugeGerätBeckman Coulter Inc.424803
MZ6 Invertiertes Mikroskop TLBD4.1GerätLeica Microsystems4103
Zellkulturschale mit 2-mm-RasterGerätNalge Nunc international174926Bestimmung der Inselzellanzahl
Digitaler Wasserbad EX7GerätNesLab105361058
ThermometerGerätIBI:IR60444
MonoBloc-Waage AB 104-SGerätMettler Toledo1119430864Pankreasgewicht messen
MasterFlex II DrehzahlreglerGerätCole-ParmerJ00006445Fließgeschwindigkeit während der Digestion einstellen
Digital Sight DS L1GerätNikon Instruments217267
PerfusionsanlageGerätIndividuell angefertigtn/v
Kühlvorrichtung für PerfusionsanlageGerätFisher Scientific3013P
Ricordi-KammerGerätUniversity of Miamin/v
RPMI-VerdünnungslösungReagenzMediatech, Inc.99783024
University of Wisconsin (UW)-LösungReagenzDURAMED1000-46-06
Hank’s gepufferte Salzlösung (HBSS)ReagenzMediatech, Inc.99-597-CM
25 % menschliches AlbuminReagenzGRIFOLSNDC 61953-0002-2
M199-Medium (Spüllösung)ReagenzMediatech, Inc.99-784-CM
Kollagenase NB1 GMP-GradReagenzSERVA ElectrophoresisN0002937
Neutrale Protease NB1 GMP-GradReagenzSERVA ElectrophoresisN0002936
BetadineReagenzCardinal Health29906-004
CefazolinReagenzWest-Ward PharmaceuticalNDC 0143-9924-90
DithizonReagenzSigma-AldrichD5130

Referenzen

  1. Shapiro, A. M., et al. Islet transplantation in seven patients with type 1 diabetes mellitus using a glucocorticoid-free immunosuppressive regimen. N Engl J Med. 343, 230-238 (2000).
  2. Nano, R., et al. Islet isolation for allotransplantation: variables associated with successful islet yield and graft function. Diabetologia. 48, 906-912 (2005).
  3. Barbaro, B., et al. Improved human pancreatic islet purification with the refined UIC-UB density gradient. Transplantation. 84, 1200-1203 (2007).
  4. Lakey, J. R., Rajotte, R. V., Warnock, G. L., Kneteman, N. M. Human pancreas preservation prior to islet isolation. Cold ischemic tolerance. Transplantation. 59, 689-694 (1995).
  5. Fridell, J. A., et al. Comparison of histidine-tryptophan-ketoglutarate solution and University of Wisconsin solution for organ preservation in clinical pancreas transplantation. Transplantation. 77, 1304-1306 (2004).
  6. Potdar, S., et al. Initial experience using histidine-tryptophan-ketoglutarate solution in clinical pancreas transplantation. Clin Transplant. 18, 661-665 (2004).
  7. Salehi, P., et al. Human islet isolation outcomes from pancreata preserved with Histidine-Tryptophan Ketoglutarate versus University of Wisconsin solution. Transplantation. 82, 983-985 (2006).
  8. Ricordi, C., Lacy, P. E., Scharp, D. W. Automated islet isolation from human pancreas. Diabetes. 38, Suppl 1 140-142 (1989).
  9. Hanley, S. C., Paraskevas, S., Rosenberg, L. Donor and isolation variables predicting human islet isolation success. Transplantation. 85, 950-955 (2008).
  10. Toso, C., et al. Factors affecting human islet of Langerhans isolation yields. Transplant Proc. 34, 826-827 (2002).

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Nachdrucke und Genehmigungen

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