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1. Vorbereitung der Medien
- Die Medien wurden unter Verwendung von 10% FBS (16140-071 - GIBCO) in DMEM/F-12 (1X), Liquid 1:1 (10565-042 - Invitrogen) mit 0,6% Agar-Lösung gereinigt, granuliert (1.01614.1000-EMD ). Sterile Bedingungen waren während des gesamten Versuchs beibehalten.
- Für die Herstellung von Medien 5mL der FBS (16140-071 - GIBCO) wurde 45ml DMEM/F-12 (1X) hinzu, Liquid 1:1 (10565-042 - Invitrogen) machen Endvolumen von 50 mL. Die vorbereiteten Medien wurde im Wasserbad bei 37 ° C Temperatur gehalten.
- Die Agar-Lösung wurde hergestellt unter Verwendung von Wärme Mikrowellen-Methode. 0,3 Gramm Kristallzucker Agar wurde in 50 mL destilliertem Wasser mit Mikrowelle aufgelöst. Die Agar-Lösung wurde abgekühlt auf 37 ° C Temperatur, indem sie es in das Wasserbad.
- Wir haben gleiches Volumen von Medien aus Schritt 1,2 und 1,3 und bereitete Stammlösung. Das Verhältnis von 0,6% Agar (0,5 ml) und 10% FBS-D-MEM/F-12 Medien (0,5 ml) wurde 1:1, so dass das Gesamtvolumen von 1 ml in jedes Well der 6-Well-Platten.
2. Tissue Verarbeitung
- Glioblastoma multiforme (GBM) Gewebe wurden sofort nach der Operation von Department of Pathology erhalten. Das Gewebe wurde als GBM vom Department of Pathology eingestuft.
- Das Gewebe wurde auf patri-Platte mit einer Pinzette vorsichtig überführt und mit eiskaltem 5mL 1XPBS für 3-fache.
- Serielle Teile der Proben wurden aus dem seziert Proben geschnitten, um Tumor-Blöcke (ca. 10 mm im Durchmesser) mit einem Skalpell (Feather-2976 # 10) und ForceP (Fisher Scientific) zu schaffen.
- Die Blöcke wurden in einer 6-Well-Platte übertragen. Jedes Well wurde mit 1ml von Medien in Schritt 1.4 zu nennen. Das Gewebe hatte genug an der Luft zu halten Gewebe lebensfähig.
- Tumor-Blöcke wurden dann entweder mit DMSO (5%) oder TMZ (2,5 nM) injiziert und inkubiert 16 Stunden bei 37 ° C in angefeuchteter Luft mit 5% CO2. 0,1 ml DMSO (5%) oder TMZ wurde 3-mal in der Tumor-Blöcke injiziert an verschiedenen Orten für die konsequente Behandlung. Das Medikament injiziert wurde, mit Insulinspritze 1ml 0.37X12.7mm 28G1 / 2 (Comfort Point-26027).
- Nach 16 Stunden Blöcke wurden mit 5 ml 1XPBS für 3-mal gewaschen. Nach dem Waschen der Blöcke wurden mit 10 ml 10% v / v Formalin für 24 Stunden (Ricca Chemical Company) in 50 ml-Röhrchen (Basix-5539802) fixiert und für die in Paraffin eingebetteten 4 &mgr; m Abschnitte.
- Die Formalin-fixierten Abschnitt wurde in Becherglas auf der Rührplatte mit "Keine Wärme" platziert und bearbeitet durch die folgenden Lösungen für 30 Minuten in jeder Lösung. 30% Ethanol, 50% Ethanol, 75% Ethanol, 80% Ethanol, 95% Ethanol, 100% Ethanol und Xylol.
- Das Gewebe wurde auf Küchenpapier abgetupft und in geschmolzenem Paraffin (58 bis 60 ° C, Fisher Paraplast Paraffin) für 30 Minuten.
- Das Gewebe in Formen mit Surgipath Blue Ribbon Paraffin eingebettet war, wurde eingebetteten Gewebe auf Raumtemperatur abgekühlt.
- Paraffin eingebettete Gewebeschnitte wurden 4 &mgr; m entnommen und auf Fisher Plus-Objektträger.
3. Immunhistochemie
Die Immunhistochemie wurde wie zuvor beschrieben durchgeführt. 1
- Entparaffinierung und Rehydrierung Objektträger in ein Rack, und führen Sie folgende Schritte aus. Xylol für 3x5 Minuten (3-mal für 5 Minuten), 100% Ethanol für 3x5 Minuten, 95% Ethanol für 1x5 Minuten, 70% Ethanol für 1x5 Minuten in fließendem Leitungswasser für 3 Minuten ausspülen.
- Antigen-Retrieval mit Wärme induzierte Epitopdemaskierungslösung Tauchen Dias in 1X Citratpuffer (Thermo Scientific-AP9003-500) in destilliertem Wasser in ein Becherglas verdünnt. Kochen für 15 Minuten auf einer Heizplatte (stellen Sie sicher, Abschnitte don "t fallen aus der Folie). Die Lösung wird für 30 Minuten bei Raumtemperatur. Spülen Sie die Folien mit 1X PBS für 3x5 Minuten.
- Die Hemmung der internen Peroxid Tauchen die Folien in Methanol (Fisher Scientific-A-452 bis 4) mit 0,3% Wasserstoffperoxid (Fisher in destilliertem Wasser Scientific-BP2633-500-verdünnt) in einem Becherglas 15 Minuten lang. Spülen in 1X PBS für 3x5 Minuten.
- Blocking Abdeckung des Gewebes mit 10% normalem Ziegenserum. Die Objektträger in einer feuchten Box und inkubieren für 1 Stunde bei Raumtemperatur. Waschen Sie die Folien mit 1X PBS für 3x5 Minuten.
- Menschen spezifische Caspase-3 (1:1000, R & D Systems, AF835), Ki67 (1:1, Dako, 15626) mit 1X PBS verdünnt: Primäre Antikörper Schnitte wurden über Nacht bei 4 ° C mit dem Primärantikörper bei folgenden Konzentrationen inkubiert. Spülen Sie die Folien in 1X PBS 3x10 Minuten auf den nächsten Tag.
- Sekundäre Antikörper-Reaktion Abdeckung des Gewebes mit 2-3 Tropfen HRP markierten sekundären Antikörper (vorstellen Systeme). Legen Sie Folien in einer feuchten Box und inkubieren für 1 Stunde bei Raumtemperatur. Waschen mit 1X PBS für 3x10 Minuten.
- Spurensuche für die Chromogen DAB-Kit (Vector Laboratories-SK-4100) Entwicklung für die Erkennung von primären Antikörper nach dem Protokoll des Herstellers.
- Gegenfärbung Tauchen Sie die Dias mit Hämatoxylin (10-15 s econds, stellen Sie sicher, don "t überrannt DAB-Signal). Spülung mit fließendem Leitungswasser für 3 Minuten.
- Dehydration Tauchen Sie die Folien in folgender Reihenfolge, 70% Ethanol für 5 Minuten, 95% Ethanol für 5 Minuten, 100% Ethanol für 3x5 Minuten, Xylol für 3x5 Minuten.
- Deckglas die Folien mit permount Montage-Reagenz (Fisher Scientific-SP-15 bis 100).
- Bilder wurden mit Olympus-Fluoreszenzmikroskop (DP-72) .3.11). In allen Experimenten wurde spezifische Markierung durch die Negativ-Kontrolle ohne Primärantikörper bestätigt.
4. Repräsentative Ergebnisse:
Wir sammelten chirurgischen Proben des Glioblastoma multiforme (GBM). Die Patienten erhielten eine der ersten Operation ohne vorherige Chemotherapien einschließlich Temozolomid (TMZ). Die T1-gewichteten Bild der MRT mit Gadolinium Enhancement in Abbildung 1a gezeigt-eine verbesserte Tumor im rechten Stirnlappen vor der Operation. Die postoperative Bild (Abb. 1b) bestätigt subtotale Entfernung der Läsion nach der Operation. Die chirurgische Gewebe wurden an das Department of Pathology für die klinische Diagnose Zweck geschickt, und die restlichen Exemplare wurden an die Gewebeentnahme im Rahmen des genehmigten Institutional Review Board (IRB)-Protokoll an der Ohio State University Medical Center verarbeitet. Hämatoxylin und Eosin (H & E)-Färbung zeigte die Anwesenheit von Nekrosen, pseudopallisading Zellen und mikrovaskuläre Proliferation (Abb. 1-c). So wurden diese Tumoren histopathologisch als GBM diagnostiziert. Zu beachten ist, erhalten Tumor Explantate nach Inkubation ohne TMZ bis zu 48 Stunden der Zytoarchitektur der GBM. Im Gegensatz dazu mit Inkubation für 72 Stunden oder länger, wir die erhöhte Anzahl der kondensierten Kerne in den Proben festgestellt, was darauf hindeutet einige der Tumorzellen beginnen, Apoptose. Als Ergebnis enthielt Tumorgewebe nach längerer Inkubationszeit lückenhaft Regionen, die Tumorzellen, die bevorzugt in und um Nekrosen (Daten nicht gezeigt) beobachtet wurden verloren.
Um zu untersuchen, ob dieser Tumor Explantation Proben zuverlässig für die Zwecke der Wirksamkeit von Medikamenten testen genutzt werden, testeten wir die Wirkung des TMZ-Behandlung. Abbildung-2 stellt den Ablauf der Experimente in dieser Studie. Eine kürzlich durchgeführte Studie zeigte, dass intratumorale Injektion von TMZ stärker auf das Wachstum auswirken Kontrolle von malignen Gliomen ist als die der systemischen Verabreichung dieses Medikaments 2. Nach Inkubation für 16 Stunden wurden diese Explantate mit Paraffin-und serielle Schnitte wurden für die Färbung vorbereitet eingebettet. Immunhistochemie von TMZ behandelten GBM Gewebe zeigte eine erhebliche Reduzierung der Ki-67-positive Tumorzellen im Vergleich mit den Kontrollproben. Im Gegenzug hat die Immunhistochemie mit einem Apoptose-Marker, Caspase-3, keine signifikanten Unterschiede zwischen TMZ behandelt Gliom Proben und die Kontrollproben (Abbildung-3).
Treatment-Effekt mit TMZ wurde durch die Kombination dieser Explantation Ansatz zusammen mit entweder in vitro-Kultur oder Durchflusszytometrie charakterisiert. Genauer gesagt, haben wir versucht, die Auswirkungen auf die Stammzellen-like Tumorzellen (SCLTC) zu bestimmen. Daher folgende intratumoralen Behandlung mit TMZ, führten wir Kugel-Assay und Durchflusszytometrie dieser Tumor Explantate. Die TMZ behandelten Proben wurden dissoziiert in einzelne Einzelzellen und diese einzelnen Zellen wurden in einer geringen Dichte ausgesät (1 Zelle pro Mikroliter oder weniger) in 96-Well-Platten in serum-freiem Medium mit bFGF und EGF ergänzt. In der Kontrollgruppe wurde die Bildung von Tumor-Kugeln aus dem Tumor Explantate nach 7 Tagen Inkubation beobachtet. Da die Kugel Bildung einer Eigenschaft SCLTC 3 4 ist, zeigt Änderungen in der Zahl der Tumor-Kugeln durch eine medikamentöse Behandlung die Wirkung auf SCLTC. Ebenso wurde der Durchflusszytometrie der dissoziierten Tumor Explantate mit einem Zelloberflächenmarker, CD133, aus der Wirkung auf SCLTC verifizieren. Wenn SCLTC in heterogenen Tumorzellen in GBM selektiv durch eine medikamentöse Behandlung beseitigt werden, könnte man sagen voraus, dass die Durchflusszytometrie sollten Abnahme des CD133-positive Fraktion durch Behandlung (Daten nicht gezeigt) zu erkennen.

Figure.1 Kernspintomographien (MRI) eines Patienten GBM. Representative Zahlen von vor der Operation Bild-1a und nach der Operation Bild-1b. Figure-1c ist H & E Färbung von frischen GBM Gewebeprobe. Original-Vergrößerung, 40X.

Abbildung. 2 Die experimentellen Strom von Block Kultur Experiment. Figure-2a. Bild von frischen chirurgischen GBM erhielt von der Pathologie. Figur-2b zeigt Dissection von Tumor-Block in 10mm kleine Stücke mit Hilfe chirurgischer Klinge. Figure-2c ist das Medikament (TMZ) Behandlung von Tumor-Blöcke mit Insulinspritze.
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Abbildung. 3 Immunhistochemie. Immunhistochemie von GBM Gewebe Blöcke mit DMSO oder TMZ mit aktivierter Caspase-3 und Ki67 injiziert. Hämatoxylin wurde für die Kernfärbung verwendet. Original-Vergrößerung, 40X.