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1. Funktionelle Charakterisierung der erworbenen Docetaxel-Resistenz durch Koloniebildungsassay
HINWEIS: In diesem Protokoll wurde die Chemoresistenz mit Hilfe von Koloniebildungsassays bewertet. Alternative Methoden zur Bewertung der Zellviabilität (z. B. MTS-Assays) können je nach Präferenzen der Prüfärzte verwendet werden.
- Plattieren Sie 2.000 Zellen (DU145 oder 22Rv1, sowohl elterlich als auch Docetaxel-resistent) pro Well in 6-Well-Platten mit 2 ml Medium pro Well.
- Nach 24 Stunden werden steigende Konzentrationen von Docetaxel (Elternzellen: 0,25, 0,5, 1, 2,5 und 5 nM; DR-Zellen: 50, 125, 250, 500 und 1.000 nM). Sowohl für DU145- als auch für 22Rv1-Zelllinien. Geben Sie DMSO nur in eine Vertiefung als Kontrolle mit der gleichen Lautstärke, die für die höchste Docetaxel-Dosis verwendet wird.
- Nach 72 h aspirieren Sie das arzneimittelhaltige Medium und fügen Sie frisches Docetaxel-freies Medium hinzu.
- Inkubieren Sie die Platten 1-2 Wochen lang, bis die Kolonien unter dem Mikroskop sichtbar sind.
- Um die Kolonien zu färben, waschen Sie sie vorsichtig mit 2-3 ml PBS und inkubieren Sie sie mit 2-3 ml kristallvioletter Lösung (0,1 % w/v in 10 % Formalin) für 20 Minuten in der Gewebekulturhaube oder einem Abzug.
- Fleckenlösung entfernen, Platten mit 2-3 mL H2O waschen, H2O entfernen und Platten an der Luft trocknen.
- Analysieren Sie das Ergebnis, indem Sie die Vertiefungen visualisieren und die Kolonien mit Hilfe eines Markierungsstifts manuell zählen (um zu vermeiden, dass dieselben Kolonien zweimal gezählt werden) und stellen Sie den Prozentsatz der Zellviabilität in einem Diagramm dar. Machen Sie digitale Bilder der Platten für die Darstellung der Figur (Abbildung 1A).