Alle Verfahren, an denen Tiermodelle beteiligt sind, wurden vom lokalen institutionellen Tierpflegeausschuss und dem Tierprüfungsausschuss von JoVE überprüft.
>1. Isolierung und Kultivierung von Primärzellen
- Euthanasieren eines 6 Wochen alten männlichen oder weiblichen B6; 129-Gt(ROSA)26Sortm1(CAG-cas9*,-EGFP)Fezh/J durch CO₂-Erstickung oder ein anderes von der IACUC zugelassenes Protokoll.
Anmerkung: Diese CRISPR/Cas9-Knockin-Mäuse haben eine Cre-rekombinaseabhängige Expression von cas9-Endonuklease und EGFP, die von einem CAG-Promotor geleitet wird. Die im Genom dieser Mäuse vorhandene Upstream-Lox-Stop-Lox (LSL)-Sequenz verhindert die Expression von Cas9 und EGFP in Abwesenheit von Cre-Rekombinase. In Kombination mit einzelnen Guide-RNAs (sgRNAs) und einer Cre-Quelle ermöglichen sie die Editierung einzelner oder mehrerer Mausgene in vivo oder ex vivo.
- Sezieren Sie die Zunge der eingeschläferten Mäuse mit einer chirurgischen Schere.
- Dissoziieren Sie das Gewebe manuell, indem Sie das Zungengewebe mit einem Skalpell in sehr kleine Fragmente zerkleinern. Sammeln Sie die Gewebefragmente in einem 15-ml-Röhrchen mit 4,5 ml RPMI-Normalmedium (ohne Serum).
- Geben Sie den Dreifach-Enzymmix (200 μL) (Rezeptur siehe Tabelle 1) zu den Gewebefragmenten.
- Inkubieren Sie das Gewebe-Enzym-Gemisch 30 Minuten lang bei 37 °C und klopfen Sie alle 10 Minuten auf das Röhrchen, um die enzymatische Dissoziation des Gewebes zu verbessern.
- Geben Sie 5 % fötales Rinderserum (FBS), das HBSS/PBS enthält, zum Gewebe-Enzym-Gemisch, um die Enzymwirkung zu stoppen.
- Filtrieren Sie die obige Zellsuspension durch ein steriles 70 μm Nylonnetz, um die dispergierten Zellen und größere Gewebefragmente zu trennen.
- Die filtrierte Zellsuspension wird durch Zentrifugation für 300 x g für 5 min in HBSS/PBS bei RT gewaschen
.
- Resuspendieren Sie das Pellet in Kulturmedium (10 % FBS in RPMI/DMEM) und züchten Sie es in 60-mm-Kulturschalen, bis sich unterschiedliche Zellkolonien gebildet haben.
- Die Kulturzellaggregate werden auf dem Filter in einer 60-mm-Kulturschale mit 3 ml vollständigem Medium (10 % FBS in RPMI/DMEM) aufbewahrt, bis Zellkolonien gebildet werden.
- Untersuchen Sie die Primärzellen mikroskopisch auf das Vorhandensein einer Fibroblastenkontamination nach 1 Woche Kultur. Die aus Aggregaten und Zellsuspensionen entwickelten Primärzellen werden 1 min lang mit 0,25 Trypsin, 0,02 % EDTA-Lösung, bei 37 °C behandelt, um Fibroblasten zu entfernen
Anmerkung: In der Regel produziert die Primärkultur aus Zellaggregaten mehr Kolonien als Einzelzellsuspensionen. Die Zellen aus diesen Kolonien bieten eine bessere Transduktionseffizienz bei der AAV-Transduktion.
| 10X Dreifach-Enzym-Stammlösung: | |
| Kollagenase | 1 g Endkonzentration [10 mg/ml] |
| Hyaluronidase | 100 mg [1 mg/ml] |
| DNase | 20.000 Einheiten Endkonzentration [200 mg/ml] |
| PBS 1X | Stellen Sie bis zu 100 mL her |
Tabelle 1: Rezeptur des in dieser Studie verwendeten Puffers