Methodenartikel

Modell der akuten biliären Pankreatitis: Eine Methode zur Generierung eines Mausmodells für akute biliäre Pankreatitis mittels Infusion des Pankreasgangs

8. Juli 2025

In diesem Artikel

Zusammenfassung

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Quelle: Serra, M. B. et al. Natriumtaurocholat induzierte schwere akute Pankreatitis bei C57BL/6 Mäusen. J. Vis. Exp. (2021)

Dieses Video beschreibt das Verfahren zur Generierung eines Mausmodells mit akuter biliärer Pankreatitis mittels Pankreasinfusion von Natriumtaurocholat. Dieses Modell hilft bei der Untersuchung pathophysiologischer Veränderungen, die durch Natriumtaurocholat in der Bauchspeicheldrüse induziert werden.

Protokoll

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Alle Verfahren, an denen Tiermodelle beteiligt sind, wurden vom lokalen institutionellen Tierpflegeausschuss und dem Tierprüfungsausschuss von JoVE überprüft.

>1. Laparotomie

  1. Tiere mit Xylazin (10 mg/kg) und Ketaminlösung (80 mg/kg) subkutan (0,1 ml/10 g Körpergewicht) mit einer 1 ml-Spritze und einer 13 x 0,45 mm Nadel 26 G 1/2 anästhesieren. Überprüfen Sie, ob die Anästhesietiefe ausreichend ist, indem Sie den Zeh einklemmen. Kontrollieren Sie die Körpertemperatur mit beheizten Pads. Stellen Sie sicher, dass alle chirurgischen Materialien steril sind.
  2. Reinigen Sie den Bauchbereich mit 5% iger Povidon-Jod-Lösung und verwenden Sie einen Trimmer, um die Haare zwischen Brust und Unterbauch (ca. 2 cm2) zu entfernen. Reinigen Sie den Operationsbereich mit 70% Alkohol.
  3. Fixieren Sie das Tier mit chirurgischem Klebeband auf der Operationsplatte. Schneiden Sie mit einer Schere 5 mm der Haut horizontal am oberen Teil des Bauches und 1 cm unterhalb des Xiphoid-Fortsatzes ab. Wiederholen Sie den Schnitt am Bauchfell. Dies führt zu einer Laparotomie mit minimaler Freilegung der Kavität.

>2. Ortung und Freilegung der Bauchspeicheldrüse

  1. Ziehen Sie die Leber mit Hilfe eines Retraktors in Richtung des Mauskopfes, ~1 cm vom Darm entfernt.
  2. Lokalisieren Sie den Bereich der Bauchspeicheldrüse, der Natriumtaurocholat injiziert wird (Pankreaskopf). Lokalisieren Sie den Zwölffingerdarm in Bezug auf die Leber – unterhalb der Leber auf der rechten Seite (auf der linken Seite, wenn die Maus betrachtet wird). Der Zwölffingerdarm ist der erste Teil des Dünndarms und mit dem letzten Teil des Magens verbunden.
  3. Heben Sie die Leber mit Hilfe einer Pinzette in Richtung Tierkopf und ziehen Sie vorsichtig am Dünndarmteil. Fixieren Sie die beiden seitlichen Enden des Dünndarms mit einer 6-0 Polypropylen-Naht, um den distalen Teil des Gallengangs communis besser sehen zu können.

>3. Schwere akute Pankreatitis-Induktion

  1. Den proximalen Gallengang vorübergehend mit einem Mikrogefäßclip verschließen, um zu verhindern, dass eine retrograde Infusion in die Leber gelangt. Der Gallengang communis ist auf der Leberseite des Zwölffingerdarms zu sehen und seine Verbindung mit dem Zwölffingerdarm erscheint weiß. Legen Sie das Organ aus der Bauchhöhle frei.
  2. Punktieren Sie die periampulläre Region (weißlicher Teil der Dünndarmwand), um mit einer 0,4-mm-Nadel, die mit einem 0,54-mm-Polyethylenschlauch verbunden ist, Zugang zum gemeinsamen Gallengang zu erhalten.
  3. Machen Sie einen provisorischen Verschluss des distalen Gallengangs communis mit 8-0 Naht, um zu verhindern, dass die Natriumtaurocholatlösung in den Zwölffingerdarm austritt.
  4. Starten Sie die Infusionspumpe und programmieren Sie eine Infusion von 2,5 % Natriumtaurocholatlösung (verdünnt in 0,9 % Kochsalzlösung) bei einer konstanten Geschwindigkeit von 10 μL/10 g Körpergewicht für 3 Minuten.
  5. Entfernen Sie nach der Infusion den Mikrogefäßclip, den provisorischen 8-0 Naht und die Injektionsnadel aus dem Gallengang der Bauchspeicheldrüse, um den physiologischen Fluss der Galle wiederherzustellen.
  6. Zum Schluss den Bauch mit einem nicht saugfähigen monofilen Polypropylen-Nahtmaterial 6-0 vernähen. Die Zeit zwischen der Laparotomie und der Endnaht sollte maximal 30 min betragen (siehe Abbildung 1).
  7. Nach der Operation werden die Tiere in Polyethylenboxen untergebracht, die mit Holzspänen und Wasser und Futter ad libitum ausgekleidet sind.
  8. Kontrollmäuse sind auf die gleiche Weise wie die Versuchsmäuse zu behandeln, jedoch darauf zu achten, dass das Infusat nur aus Kochsalzlösung besteht. Führen Sie den chirurgischen Eingriff und die Infusion von Kochsalzlösung (10 ml/min, für 3 min) in einer Kontrollgruppe (SHAM) durch, um die durch Operation und Kanülierung verursachte Entzündungsverzerrung zu beseitigen.
  9. Verwenden Sie Tramadol 12,5 mg/kg subkutan alle 8 Stunden, beginnend nach der postoperativen Genesung.

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Ergebnisse

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Abbildung 1: Schematische Darstellung der Induktion einer schweren akuten Pankreatitis durch 2,5 % Natriumtaurocholat bei C57BL/6-Mäusen. (A) Gallenblase; (B) gemeinsamer Gallengang; (C) Gang der Bauchspeicheldrüse; (D) Pfortader; (E) Clip für Mikrogefäße; (F) Eins...

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Offenlegungen

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Es wurden keine Interessenkonflikte angegeben.

Materialien

Liste der in diesem Artikel verwendeten Materialien
NameUnternehmenKatalognummerKommentare
0,4 mm NadelINTRAG MEDIZINTECHNIK9018321030G
0,54 mm Polyethylen-RohrTygonArtikel-Nr.: 730010
Styropor-Block
Abdeckband zur Montage der MausMissnerNr. 1236
Die Infusionspumpe ist auf 10 μl/min ausgelegt.Havard Aparatus-Peristaltikpumpen-SerieMA1 55-7766 Modell 66 Small Peristaltic
Schere und Pinzette
Antiseptikum Providin JodPfizer12086ODERAntisepsis
70% EthanolSigma459836Mischen Sie 700 mL 100% Ethanol mit 300 mL dH2O
RasierklingeHerrBDK9A1GHK6Für die Trichotomie
NatriumtaurocholatSigma-Aldrich86339- 1GCAS-NUMMER - 345909-26-4
Clip für MikrogefäßeMedicon ChirurgischArtikel-Nr.: 56.87.35Approximator, Öffnung 4,0 mm, Schließdruck 30-40 g
6:0 ProleneBiolinieNr. 5162Nahtlinie
Ketamin NP (Cloridrato de dextrocetamina) 50mg/mlCristália
Xilazin 2%Syntec
Sterile Kochsalzlösung (0,9 % (wt/vol) Kochsalzlösung)Farmace105851
MethylblauSigma-Aldrich ChemikalienNr. M5528
Desmarres Retraktor 13 mm BreiteROBOZRS-6672

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Schlagwörter

Natriumtaurocholatperiampull re Regiongemeinsamer Gallengangchirurgischer Eingriffan sthetisierte MausGallensalzinfusionPankreasschaden

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