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Methodenartikel

Entfernung der oberen Tränendrüse: Eine chirurgische Technik zur Entfernung der palpebralen und orbitalen Teile der oberen Tränendrüse aus einem Kaninchenmodell

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8. Juli 2025

In diesem Artikel

Zusammenfassung

Quelle: Honkanen, R. A. et al., Etablierung eines Modells für schwere trockene Augen unter Verwendung einer vollständigen Dakryoadenektomie bei Kaninchen. J. Vis. Exp. (2020).

Dieses Video beschreibt den chirurgischen Eingriff, um die beiden Teile: Palpebral und Orbital der oberen Tränendrüse von einem Kaninchen zu entfernen, um ein Modell für die Erkrankung des trockenen Auges zu erstellen. Dieses Kaninchenmodell eignet sich für Untersuchungen der Homöostase der Augenoberfläche, der Pathophysiologie und der Augentherapeutika.

Protokoll

Alle Verfahren, an denen Tiermodelle beteiligt sind, wurden vom lokalen institutionellen Tierpflegeausschuss und dem Tierprüfungsausschuss von JoVE überprüft.

Verwenden Sie neuseeländische weiße (NZW) Kaninchen mit einem Gewicht von 2−3 kg Leicht betäubte Tiere, die in einen Rückhaltebeutel mit subkutanem Acepromazin wie oben (1 mg/kg) gelegt werden. Entfernen Sie sämtliches Fell im Gesicht und auf der dorsalen Oberfläche des Schädels, um die chirurgischen Orientierungspunkte sichtbar zu machen. Schneiden Sie das Fell mit einer Schere ab und lassen Sie feines Fell von etwa 1 mm Länge übrig. Entfernen Sie alle Fellreste mit einer milden Enthaarungscreme gemäß den Anweisungen des Herstellers.

1. Entfernung von OSLG

  1. Infiltrieren Sie die Inzisionsstellen (chirurgische Markierungsstiftlinien und oberes hinteres Lid) mit einer 50:50-Mischung aus 2 % Lidocain und 1:100.000 Adrenalin und 0,5 % Bupivacain mit einer 5-cm³-Spritze und einer 30-G-Nadel (Abbildung 1A).
    Anmerkung: Die Größe der Spritze und der Nadel ist nicht entscheidend.
  2. Verwenden Sie eine Colorado-Nadel, die mit einem elektrochirurgischen Gerät verbunden ist, um die Hautschnitte entlang der chirurgischen Markierungen vorzunehmen. Die Einstellungen können je nach klinischem Ansprechen variieren und liegen in der Regel zwischen 10 und 15 Einheiten sowohl für den Schnitt als auch für die Gerinnung (Abbildung 1B).
  3. Üben Sie eine gegenläufige Spannung über den Hautschnitt aus, um das Gewebe zu trennen und die darunter liegenden Frontoscutularis-Muskelfasern freizulegen.
  4. Üben Sie medialen Druck auf den Globus aus, um die Visualisierung des OSLG zu unterstützen, das als prall gefülltes Gewebe gesehen wird, das sich nur medial oder tief zu den Frontoscutularis-Muskelfasern befindet. Verschieben Sie diese Muskelfasern bei Bedarf zur Seite, um den darunter liegenden Einschnitt freizulegen.
  5. Mit einer Zahnzange (0,3) und einer Kapsulotomieschere ziehen Sie die fibröse Kapsel, die über dem OSLG liegt, vorsichtig zurück und schneiden Sie sie. Das OSLG hat typischerweise eine blassbraune Farbe (Abbildung 1C).
  6. Fassen Sie mit einer gezahnten oder nicht gezahnten Pinzette das OSLG-Drüsengewebe und ziehen Sie es mit einer "Hand über Hand"-Technik vorsichtig durch die obere Inzisur heraus. Schneiden Sie mit einer Kapsulotomieschere kleine, faserige Bänder ab, um die Drüse aus ihrer Position in der Orbita zu befreien (Abbildung 1D).
    Anmerkung: Wenn das OSLG-Drüsengewebe entfernt wird, beginnt es zu einer großen röhrenartigen Struktur (Hauptausscheidungsgang) zu verschmelzen.
  7. Wenn die Drüse so vollständig wie möglich entfernt wurde, verwenden Sie einen großzügigen Kauter mit der Colorado-Nadel, um eine Gewebeverkohlung zu erzeugen, und schneiden Sie die Drüse innerhalb des Einschnitts so tief wie möglich ab. Dieser wird später als bestätigender Orientierungspunkt bei der Entfernung des PSLG dienen.

2. Entfernung von PSLG.

  1. Korrigieren Sie das obere Augenlid mit einem Applikator mit Wattespitze. Das knollige Ende des PSLG ist in der Regel gut sichtbar.
    Anmerkung: Bei einigen anatomischen Sektionen kann es möglich sein, den Hauptausscheidungsgang als blasse lineare Struktur von etwa 1 oder 2 mm Breite darzustellen.
  2. Greifen Sie die PSLG mit einer Zahnzange (0,3) ein und ziehen Sie sie von der Augenlidoberfläche zurück, während Sie mit einer Kapsulotomieschere um die Basis herum schneiden, die sie von der darunter liegenden Fußwurzel trennt (Abbildung 2A).
  3. Kontrollieren Sie mäßige Blutungen mit dem monopolaren Kauter.
  4. Wenden Sie eine kontinuierliche Traktion auf das getrennte Gewebe an, um eine Gewebeebene für die Dissektion aufrechtzuerhalten. Dadurch kann auch der Hauptausscheidungsgang des SLG entfernt werden (Abbildung 2B).
    Anmerkung: Während der Dissektion wird sie in der Regel bis zum oberen Orbitarand vorgeschoben, wo es möglich ist, die Kauterspuren zu sehen, die von der Entfernung des obereren und medial gelegenen OSLG zurückgeblieben sind.

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Ergebnisse

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Abbildung 1: Entfernung des OSLG.(A) Die Operationsstellen werden mit einem Anästhetikum infiltriert, bei dem eine 50:50-Kombination aus 2 % Lidocain mit 1:100.000 Adrenalin und 0,5 % Bupivacain verwendet wird, das in das obere Lid und entlang der Schnittlinien injiziert wird, um die Beschwerden während des Eingriffs zu minimieren. (B) Eine Colorado-Mikrodissektio...

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Offenlegungen

Es wurden keine Interessenkonflikte angegeben.

Materialien

Liste der in diesem Artikel verwendeten Materialien
NameUnternehmenKatalognummerKommentare
Acepromazin, Aceproinj Henry Schein Tiergesundheit, Dublin, OH NDC11695-0079-80,1 ml/kg subkutane Injektion zur Sedierung von Kaninchen
Beutel zur Zurückhaltung von Tieren Henry Schein Tiergesundheit, Dublin, OH Jorvet J0170Verwenden Sie einen Beutel in geeigneter Größe.
Bupivacain, 0,5 % Hospira Inc., Lake Forest ILNDC-Nr.: 0409-1162-02 Gemischt 50:50 mit 2% Lidocain mit 1:100.000 Adrenalin zur Infiltration von Infiltrationsstellen.
Colorado-Nadel Stryker Craniomaxillofacial, Kalamazoo, MINr. N103AVerwendung mit einem Elektrochirurgiegerät, um Schnitte vorzunehmen
Elektrochirurgisches Gerät mit monopolarer Kauterplatte Valleylab, Boulder, COForce FXcVerwendung mit einem Elektrochirurgiegerät, um Schnitte vorzunehmen
Zange, Bishop Harmon Bausch und Lomb (Storz), BridgewaterNJ E1500-CVerwenden Sie eine Zahnzange für die Dakryoadenektomie
Nadel, 30 Gauge BD, Franklin Seen, NJ REF-305106Für die Infiltration von Inzisionsstellen; Spritzen- und Nadelgröße sind unkritisch
Kaninchen, Neuseeland Weiß Charles River Labs, Waltham, MA(NZW) 2-3 kg Versuchstiere
Schere, Vannas McKesson Medizinisch-chirurgisch, San Francisco, Kalifornien Miltex 2-130Kapsulotomieschere für die Dakryoadenektomie
Spritze, 5 cc BD, Franklin Seen, NJREF 309603 Für die Infiltration von Inzisionsstellen; Spritzen- und Nadelgröße sind unkritisch

Tags

OrbitalanteilPalpebralanteilTrockenes-Auge-ModellElektrochirurgie-NadelKapsulotomieschereGewebeexzision