Methodenartikel

TTC-Färbung von Gewebeschnitten aus dem Hirngewebe der Ratte: Ein Färbeverfahren zur Unterscheidung von lebensfähigem und nekrotischem Gewebe in Gewebeschnitten nach Ischämie-Reperfusionsschäden

8. Juli 2025

In diesem Artikel

Zusammenfassung

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Quelle: Liepinsh, E., et al. Vorbereitung von Nagetierherz- und Hirngewebe für die digitale Makrofotografie nach Ischämie-Reperfusion. J. Vis. Exp. (2022)

Dieses Video beschreibt das 2,3,5-Triphenyl-2H-tetrazoliumchlorid-Färbeverfahren zur Visualisierung von Gewebeschnitten des Rattenhirns und zur Unterscheidung von lebensfähigem und geschädigtem Gewebe nach Verschluss und Reperfusion der mittleren Hirnarterie.

Protokoll

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Alle Verfahren, an denen Tiermodelle beteiligt sind, wurden vom lokalen institutionellen Tierpflegeausschuss und dem Tierprüfungsausschuss von JoVE überprüft.

>1. Färben und Schneiden von Gehirnen

  1. Entfernen Sie nach dem Experiment zum Verschluss der mittleren Hirnarterie das Gehirn einschließlich des Hirnstamms aus dem Schädel und waschen Sie es in eiskaltem PBS.
  2. Wählen Sie die richtige Größe der Edelstahlmatrix für das Gehirn (siehe Materialtabelle) in Abhängigkeit vom Gewicht der Tiere (Abbildung 1B). Platzieren Sie das Gehirn mit der Bauchseite nach oben in der Hirnmatrix.
    Anmerkung: Wenn das Gehirn in der Matrix sitzt, muss die ventrale Oberfläche des Gehirns parallel zur Oberseite der Form sein.
  3. Schränken Sie mit Hilfe von Klingen die vorderen und kaudalen Teile (2 Klingen von beiden Seiten) des Gehirns ein.
    Anmerkung: Es müssen Schneidematrix-kompatible Rasierklingen verwendet werden. Im Allgemeinen kann eine kompatible, einschneidige Rasierklinge (Dicke von bis zu 0,254 mm) für das Schneiden von Rattenhirn verwendet werden.
  4. Stecken Sie die Klingen teilweise (nicht vollständig in das Gehirn schneidend) in die Kanäle zwischen der ersten und der letzten Klinge. Wenn alle Klingen eingeführt und parallel angeordnet sind, drücken Sie alle Klingen gleichzeitig mit der Handfläche nach unten, um das Gehirn in 2 mm große Kronenscheiben zu schneiden.
  5. Fassen Sie die Klingen mit zwei Fingern fest an den Seiten entlang und entfernen Sie sie zusammen mit dem aufgeschnittenen Gehirn aus der Matrix.
  6. Ordnen Sie die Gehirnschnitte nacheinander in einer Schale (70 mL, 72 x 72 mm) an. Achten Sie beim Anordnen der Scheiben darauf, dass die vordere Oberfläche jeder Scheibe immer nach oben zeigt.
  7. Gießen Sie warme (+37 °C) 1%ige TTC-Lösung in PBS auf die Gehirnscheiben und inkubieren Sie sie 8 min bei 37 °C im Dunkeln.
    Anmerkung: Die Hirnschnitte müssen während der Inkubation vollständig in TTC-Lösung getaucht werden.
  8. Übertragen Sie nach der Inkubation in 1%iger TTC-Lösung die Gehirnscheiben in die blaue Kunststoffschale, um Bilder aufzunehmen. Ordnen Sie die Hirnschnitte in sequenzieller Reihenfolge vom frontalen zum kaudalen Teil an und trennen Sie mit einem Skalpell die Hemisphären in der Sagittalebene.

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Ergebnisse

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Abbildung 1: Matrizen für das Schneiden des Rattenherzens und des Gehirns. (A) Rattenherz, (B) Rattenhirn.

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Offenlegungen

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Es wurden keine Interessenkonflikte angegeben.

Materialien

Liste der in diesem Artikel verwendeten Materialien
NameUnternehmenKatalognummerKommentare
2,3,5-Triphenyltetrazoliumchlorid (TTC)Sigma-AldrichArtikel-Nr.: 298-96-4
Adult Ratte Brain Slicer MatrixZivic InstrumentsBSRAS001-1
Einschneidige RasierklingenZivic InstrumentsBLADE012.1
Sony Alpha a6000 Spiegellose DigitalkameraSonyILCE6000Kann mit jeder modernen digitalen Kamera neu gestylt werden
Chirurgische KlingeHeinz Herenz Hamburg DeutschlandNr. BS2982
Wägetablett, 70 mLSarsted71,99,23,212
Thermo-SchüttlerBioSanPST-60HL-4
Zange mit ZahngewebeAgnthosNr. 11021-12
NatriumchloridFisher BioreagenzienNr. BP358-10
Deckglaszange, abgewinkeltWerkzeuge für die FeinwissenschaftNr. 11073-10
kg

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Schlagwörter

Differenzierung von lebensf higem GewebeIdentifizierung von nekrotischem GewebeTriphenyltetrazoliumchloridHerstellung von Koronalschnittenmitochondriale Succinat DehydrogenaseRote Formazan F rbungHemisph rentrennung

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