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1. Zellkultur, Plasmid-und Puffer-Vorbereitung für das Experiment
- In diesem Experiment chinesischen Hamsters (CHO-K1) eingesetzt werden. Die Zellen werden in ein Nährstoff Mischung HAM-F12 (PAA) mit 2 mM L-Glutamin, 10% fötalem Rinderserum, 400 ul / l Gentamycin (alle von Sigma-Aldrich Chemie GmbH, Deisenhofen, Deutschland), und 1 ergänzt gewachsen ml / l crystacilin (Pliva, Zagreb, Kroatien). Die Zellen werden bei 37 ° C in einer befeuchteten 5% CO 2-Atmosphäre in den Inkubator für 24 Stunden gehalten.
- Amplify Plasmid pEGFP-N1 (Clontech Laboratories Inc., Mountain View, CA, USA) Kodierung grün fluoreszierende Protein (GFP) in DH5a Stamm von Escherichia coli und isolieren mit HiSpeed Plasmid Maxi Kit (Qiagen, Hilden, Deutschland). Plasmid-DNA-Konzentration (in TE-Puffer aufgelöst Plasmid) sollte spektrophotometrisch bei 260 nm bestimmt und bestätigt werden durch Gelelektrophorese.
- Bereiten isoosmolaren Natriumphosphat-Puffer (10 mM Na 2 HPO 4, 10 mM NaH 2 PO 4, 1 mM MgCl 2, 250 mM Saccharose, pH 7,4).
- Am Tag der Vorbereitung des Experiments Zellsuspension durch Trypsinierung mit 0,25% Trypsin / EDTA-Lösung (Sigma-Aldrich Chemie GmbH, Deisenhofen, Deutschland). Centrifuge Zellen für 5 min bei 1000 rpm (180 xg) bei 4 ° C (Sigma, Deutschland) und resuspendieren Zellpellet in isoosmolaren Natriumphosphatpuffer auf eine Zelldichte von 5 × 10 6 Zellen / ml.
2. Hardware-Ausstattung
- Zellen sind elektrische Feld in Pipettenspitze (Abbildung 1) mit integrierten Elektroden verbunden mit einem Hochspannungs-Prototyp-Generator ausgesetzt. Die Spitze und Elektrode Geometrie ermöglicht den Einsatz von relativ homogenen elektrischen Feld und der Generator ermöglicht Lieferung von elektrischen Impulsen in verschiedene Richtungen. Die Spitze und der Generator wurden im Labor von Biokybernetik, Fakultät für Elektrotechnik, Universität Ljubljana 1 entwickelt.

Abbildung 1. Vertikale und horizontale (a) Querschnitt und Foto (b) der Pipettenspitze mit integrierten Elektroden. In den Querschnitt graue Farbe wird für die Kunststoff-Gehäuse und schwarz für die Elektroden verwendet. Die Pipettenspitze mit integrierten Elektroden besteht aus vier zylinderförmigen Stab-Elektroden. Die Elektroden sind aus Edelstahl gefertigt, deren Durchmesser 1,4 mm, benachbarten Elektroden sind 1 mm auseinander und gegenüberliegenden Elektroden sind 2 mm voneinander entfernt. Die Elektroden werden in die Kunststoff-Spitze parallel verleimt und gegebenenfalls deren Länge beträgt 30 mm 2.
3. Gene Elektrotransfer Protokoll
- Add-Plasmid pEGFP-N1 eine Zellsuspension in einer Konzentration 10 pg / ml.
- Inkubieren Sie die Mischung für 2-3 Minuten bei Raumtemperatur, bevor elektrische Impulse.
- Aspire 100 ul Zellsuspension in die Pipettenspitze mit integrierten Elektroden.
- Um beste Gen Elektrotransfer Wirksamkeit erzielen und beizubehalten Lebensfähigkeit der Zellen, sollten die optimalen Parameter der elektrischen Impulse genutzt werden. In diesem Experiment ein Zug von 8 Rechteckimpulse (jeweils mit einer Dauer von 1 ms, Amplitude 225 V bei 1 Hz Wiederholfrequenz) ist zu jeder Probe aufgetragen, mit Hochspannungs-Prototyp-Generator. Zwei verschiedene elektrische Feld Protokolle (Abbildung 2) verwendet werden: in das erste Protokoll alle Impulse werden in die gleiche Richtung geliefert, während in dem zweiten Protokoll Impulse, indem alternativ das elektrische Feld Richtung und Orientierung geliefert werden. Das zweite Protokoll kann nur mit entsprechendem Impulsgeber, die Anwendung der elektrischen Impulse in verschiedene Richtungen ermöglicht werden.
- Direkt nach dem Puls-Anwendung übertragen die Zellen aus Pipettenspitze in 6-Well-Platte und stell fötalem Kälberserum (FCS-Sigma, USA) (25% des Probenvolumens).
- Inkubieren Zellen für 5 min bei 37 ° C, damit Zellmembran Wiederverschließen.
- 2 ml HAM-F12 zu jeder Probe in 6 gut und inkubieren Zellen für 24 Stunden bei 37 ° C in einer befeuchteten 5% CO 2-Atmosphäre in den Inkubator.

. Abbildung 2 Elektrisches Feld Protokolle: (a) alle Impulse werden in die gleiche Richtung geliefert, (b) Impulse, indem alternativ das elektrische Feld Richtung und Orientierung geliefert.
4. Bildaufnahme und Bestimmung von Gen Elektrotransfer Wirksamkeit
- Die Wirksamkeit von Gen Elektrotransfer ist als der Prozentsatz von Zellen, die GFP 24h nach dem Puls Anwendung bestimmt.
- Die Zellen werden beobachtet mit einem Fluoreszenzmikroskop (in unserem Fall Zeiss 200, Axiovert, ZR Deutschland) mit Anregungslicht bei 488 nm mit einem Monochromator-System (Polychrome IV, Visitron, Deutschland) und Emission bei 507 nm detektiert generiert. Die Bilder werden aufgezeichnet mit bildgebenden Systems (MetaMorph Imaging-System, Visitrauf, Deutschland), aber auch andere ähnliche Software zur Erfassung kann ebenfalls verwendet werden.
- Erwerben Sie mindestens fünf Bilder (Phasenkontrast und grüne Fluoreszenz) bei 20x Objektiv-Vergrößerung.
- Zählen von Zellen in der Phase kontrastreiches Bild und Zellen, die GFP sind in grüne Fluoreszenz Bild. Bestimmen Sie den Prozentsatz der Gen Elektrotransfer Wirksamkeit, indem die Anzahl von Zellen, die GFP mit der Anzahl aller Zellen in jeder entsprechende Bild (Abbildung 3).
5. Repräsentative Ergebnisse:

Abbildung 3. Der Prozentsatz an Zellen, die GFP, wenn alle Impulse in die gleiche Richtung geliefert werden und Impulse werden von wechselnden alternativ das elektrische Feld Richtung und Orientierung vorgelegt wird geliefert. Die Zellen wurden zu einem Zug von acht Impulsen mit einer Amplitude von 225 V, Dauer 1 ms und Wiederholung Frequenz von 1 Hz ausgesetzt. Die Ergebnisse wurden mittels Fluoreszenz-Mikroskopie erhalten. Jeder Wert in der Grafik stellen Mittelwerte von drei unabhängigen Experimenten ± Standardabweichung. Durch die Veränderung des elektrischen Feldes Richtung und Orientierung der Anteil der Zellen, die GFP erhöht.