Method Article

Effiziente Differenzierung von embryonalen Stammzellen der Maus in Motoneuronen

DOI:

10.3791/3813

June 9th, 2012

In This Article

Summary

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Wir entwickelten ein neues Protokoll, um die Effizienz der in vitro Differenzierung von embryonalen Stammzellen der Maus in Motoneuronen zu verbessern. Die differenzierten ES-Zellen erworbenen motorischen Neuronen verfügt wie durch die Expression von neuronalen und motorischen Neurons Marker mit Hilfe von immunhistochemischen Techniken nachgewiesen.

Abstract

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Direkte Differenzierung von embryonalen Stammzellen (ES)-Zellen in funktionelle Motoneuronen stellt eine viel versprechende Quelle für Krankheiten Mechanismen zu studieren, zu neuer Wirkstoffe zu screenen und zu neuen Therapien für Motoneuronen-Krankheiten wie zum Beispiel Spinale Muskelatrophie (SMA) und Amyotrophe Lateralsklerose entwickeln ( ALS). Viele aktuelle Protokolle verwenden eine Kombination von Retinsäure (RA) und Sonic Hedgehog (Shh) an embryonalen Stammzellen der Maus (mES) Zellen in Motoneuronen 4.1 differenzieren. Allerdings ist die Effizienz der Differenzierung mES Zellen in Motoneuronen nur mit mäßigem Erfolg erfüllt. Wir haben eine zweistufige Differenzierung Protokoll Nr. 5, das verbessert die Differenzierung Effizienz im Vergleich zu derzeit etablierten Protokollen entwickelt. Der erste Schritt besteht darin, die neuralization durch Zugabe von Noggin und Fibroblasten-Wachstumsfaktoren (FGFs) erweitern. Noggin ist ein knochenmorphogenetisches Protein (BMP)-Antagonisten und in Neuralinduktion gebracht einach der Standard-Modell der Neurogenese und führt zur Bildung der vorderen neuronalen Strukturieren 6. FGF wirkt synergistisch mit Noggin bei der Induktion von Nervengewebe Bildung durch die Förderung einer hinteren neuronalen Identität 9.7. In diesem Schritt wurden mES Zellen mit Noggin, bFGF und FGF-8 für zwei Tage grundiert werden, um neuronale Differenzierung in Richtung Linien zu präsentieren. Der zweite Schritt besteht darin, Motoneuronen-Spezifikation zu induzieren. Noggin / FGFs ausgesetzt mES Zellen wurden mit RA und einer Shh-Agonisten, Agonisten Smoothened (SAG), für weitere 5 Tage inkubiert, um Motoneuronen Generation zu erleichtern. Um die Differenzierung von MES in die Motor-Neuronen zu beobachten, verwendeten wir eine ES-Zelllinie von einer transgenen Maus exprimiert eGFP unter der Kontrolle des Promotors Motoneuronen Hb9 1 abgeleitet. Mit diesem robusten Protokoll erzielten wir 51 ± 0,8% der Differenzierung Effizienz (n = 3, p <0,01, Student t-Test) 5. Die Ergebnisse der ImmunfluoreszenzFärbung zeigte, dass GFP +-Zellen die Motoneuronen spezifische Marker, Islet-1 und Cholin Acetyltransferase (ChAT) auszudrücken. Unsere Zwei-Schritt-Protokoll Differenzierung bietet eine effiziente Möglichkeit an MES-Zellen in spinalen motorischen Neuronen zu differenzieren.

Protocol

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

1. Schritt 1: embryonalen Stammzellen der Maus (mES) Cell Culture (Timing: 3 Tage)

1. Ausplattieren primäre embryonale Maus-Fibroblasten (PMEF)

  1. Coat vier 100-mm Zellkulturschalen mit Gelatine für PMEF Haftung. 8 ml von 0,1% Gelatine-Lösung (StemCell Technologies) zu jeder Schale und Inkubation für 30 min bei Raumtemperatur.
  2. Entfernen Sie das überschüssige Gelatine von Gerichten. Nicht spülen das Geschirr.
  3. Verdünnen Sie ein Fläschchen mit Mitomycin C-inaktivierten PMEF (Millipore), die ca. enthält. 5 x 10 6 Zellen in 40 ml PMEF Medien (siehe Rezept in Tabelle 1) und Platte auf vier 10....

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Discussion

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Die Qualität der mES Zellen ist die kritischen Parameter zur effizienten Erzeugung von Motoneuronen. mES Zellen müssen auf PMEF kultiviert werden, um spontane Differenzierung zu verhindern. Die Zugabe von LIF hilft bei der Erhaltung der die MES-Zellen in einem undifferenzierten Zustand. Als MES-Zellen teilen sich alle 12 bis 15 h wurde das Kulturmedium verarmt rasch und muss täglich ersetzt werden.

Effiziente Aktivierung des Shh-Weg ist ein kritischer Parameter benötigt, um Motoneuronen Spez.......

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Disclosures

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Keine Interessenskonflikte erklärt.

Acknowledgements

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Dieses Manuskript ist dem Andenken von Dr. Wenlan Wang, der am 26. Mai 2011 verabschiedet gewidmet. Wir danken Dr. Douglas A. Kerr für die großzügige Bereitstellung der HBG3 mES Zellen in dieser Studie verwendet. Diese Arbeit wurde von Nemours finanziert wird, ein Zuschuss (2 RR016472-10) unter der INBRE Programm des National Center for Research Resources (NCRR) und einem Cobre Gewährung von Finanzhilfen aus dem NCRR (5 RR020173 P20-05) an das Zentrum für Unterstützung Pädiatrische Forschung an der Alfred I. DuPont Hospital for Children, Wilmington, Delaware, USA.

....

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Materials

List of materials used in this article
NameCompanyCatalog NumberComments
Name des Reagenzes Firma Katalog-Nummer Endkonzentration
PMEF Millipore PMEF-H NA
PMEF Medium
DMEM Invitrogen 11965-118 NA
FBS Invitrogen 16140-071 10%
L-Glutamin Invitrogen 25030-081 1%
Penicillin / Streptomycin Invitrogen 15240-063 1%
mES Medium
DMEM StemCell Technologies 36250 NA
ES-Zell-Qualifizierte FBS Invitrogen 16141-079 15%
Glutamax-I Invitrogen 35050-061 1%
Nicht-essentielle Aminosäuren Invitrogen 11140-050 1%
Nucleosides Millipore ES-008-D 1%
β-Mercaptoethanol Millipore ES-007-E 0,1 mM
Penicillin / Streptomycin Millipore TMS-AB2-C 1%
LIF Millipore LIF2010 10 ng / ml
Neuronale Differenzierung Medium
DMEM StemCell Technologies 36250 NA
ES Cult FBS StemCell Technologies 06905 15%
Nicht-essentielle Aminosäuren Invitrogen 11140-050 1%
Mono-thio Glycerin Sigma-Aldrich M-6145 1mM
Birne Invitrogen PHC1506 50 ng / ml
FGF-8 Invitrogen PHG0274 20 ng / ml
bFGF Invitrogen PHG0024 20 ng / ml
MND Medium (Differenzierung)
ES-Cult Basal Medium-A StemCell Technologies 5801 NA
Knockout Serumersatz Invitrogen 10828-028 10%
N-2 Ergänzung Invitrogen 17502-048 1%
ITS Supplement-B StemCell Technologies 07155 1%
Askorbinsäure StemCell Technologies 07157 1%
Penicillin / Streptomycin Millipore TMS-AB2-C 1%
Glutamax-I Invitrogen 35050-061 1%
D-Glucose Sigma-Aldrich G-8270 0,15% in D 2 H 2 O
Fibronektin StemCell Technologies 07159 5 pg / ml
Heparin Sigma-Aldrich H3149 20 ug / ml in D 2 H 2 O
β-Mercaptoethanol Millipore ES-007-E 0,1 mM
Retinsäure Sigma-Aldrich R-2625 1 uM
SAG EMD Chemicals 566660 1 uM
MND Medium (Motor Neuron Kultur)
ES-Cult Basal Medium-A StemCell Technologies 5801 NA
Knockout Serumersatz Invitrogen 10828-028 10%
N-2 Ergänzung Invitrogen 17502-048 1%
ITS Supplement-B StemCell Technologies 07155 1%
Askorbinsäure StemCell Technologies 07157 1%
Penicillin / Streptomycin Millipore TMS-AB2-C 1%
Glutamax-I Invitrogen 35050-061 1%
D-Glucose Sigma-Aldrich G-8270 0,15% in D 2 H 2 O
Fibronektin StemCell Technologies 07159 5 pg / ml
Heparin Sigma-Aldrich H3149 20 ug / ml in D 2 H 2 O
β-Mercaptoethanol Millipore ES-007-E 0,1 mM
BDNF R & D Systems 248-BD-005/CF 10 ng / ml
CNTF R & D Systems 257-NY-010/CF 10 ng / ml
GDNF R & D Systems 212-GD-010/CF 10 ng / ml
NT-3 R & D Systems 267-N3-005/CF 10 ng / ml

NA = Nicht anwendbar.

Tabelle 1. PMEF und Medien für MES-Zellkultur oder Differenzierung.

Name des Reagenzes Firma Katalog-Nummer Endkonzentration
0,1% Gelatine StemCell Technologies 07903 NA
Poly-DL-ornithin Sigma-Aldrich P0421 0,1 mg / ml in D 2 H 2 O
Mauslaminin Millipore CC095 2 pg / ml in PBS
0,25% Trypsin / EDTA StemCell Technologies 07901 NA
Accumax Millipore SCR006 NA

NA = Nicht anwendbar.

Tabelle 2. Reagenzien für die Beschichtung und Dissoziation.

References

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Wichterle, H., Lieberam, I., Porter, J. A., Jessell, T. M. Directed differentiation of embryonic stem cells into motor neurons. Cell. 110, 385-397 (2002).
  2. Miles, G. B. Functional properties of motoneurons derived from mouse embryonic stem cells. J. Neurosci. 24<....

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Reprints and Permissions

Request permission to reuse the text or figures of this JoVE article

Request Permission

Tags

Mouse Embryonic Stem CellsMotor Neuron DifferentiationNeural InductionRetinoic Acid TreatmentSmoothened AgonistNoggin FGF TreatmentEmbryonic Body FormationImmunofluorescence MicroscopyHb9 GFP ReporterCholine Acetyltransferase

Related Articles