Ein Abonnement von JoVE ist erforderlich, um diesen Inhalt anzuzeigen. Melden Sie sich an oder beginnen Sie noch heute mit einer kostenlosen Testphase.

Methodenartikel

Voltage-sensitive Dye Aufnahme von Axonen, Dendriten und dendritischen Spines einzelner Neuronen in Hirnschnitten

16.5K Aufrufe

⸱

DOI:

10.3791/4261

⸱

29. November 2012

 ,  , 

In diesem Artikel

Zusammenfassung

Ein bildgebendes Verfahren zur Überwachung des Membranpotentials Änderungen mit sub-Mikrometer-räumlichen und Sub-Millisekunden zeitlicher Auflösung beschrieben. Die Technik, auf Laseranregung von Spannungs-sensitiven Farbstoffen, ermöglicht Messungen von Signalen in Axonen und Axon Kollateralen, Terminal dendritische Äste, und einzelne dendritischen Dornen.

Zusammenfassung

Das Verständnis der biophysikalischen Eigenschaften und funktionelle Organisation der einzelnen Neuronen und wie sie Informationen verarbeiten ist von grundlegender Bedeutung für das Verständnis, wie das Gehirn funktioniert. Die primäre Funktion einer beliebigen Nervenzelle ist, um elektrische Signale, in der Regel von verschiedenen Quellen verarbeiten. Elektrische Eigenschaften neuronaler Prozesse sind außerordentlich komplex, dynamisch und in der allgemeinen Fall unmöglich, in Abwesenheit von detaillierte Messungen vorauszusagen. Um eine solche Messung würde man erhalten, idealerweise gerne in der Lage zu überwachen, an mehreren Standorten, unterschwelligen Ereignisse, wie sie von den Websites der Herkunft auf die neuronale Prozesse und summieren an bestimmten Orten zu Aktionspotential Einleitung beeinflussen reisen. Dieses Ziel wurde in keiner Neuronen aufgrund technischer Einschränkungen von Messungen, die Elektroden beschäftigen erreicht worden. Um diesen Nachteil zu überwinden, ist es höchst wünschenswert, um den Patch-Elektrode Ansatz mit bildgebenden Verfahren, die umfangreiche parallel recordin ermöglichen ergänzengs von allen Teilen eines Neurons. Hier beschreiben wir eine solche Technik - optische Aufzeichnung des Membranpotentials Transienten mit organischen spannungsabhängigen Farbstoffen (V m-imaging) - gekennzeichnet durch Sub-Millisekunden-und Sub-Mikrometer-Auflösung. Unsere Methode basiert auf bahnbrechenden Arbeiten zur Spannungs-sensitive molekulare Sonden 2 basiert. Viele Aspekte der anfänglichen Technologie wurden kontinuierlich über mehrere Jahrzehnte 3, 5, 11 verbessert. Zusätzlich früheren Arbeiten zwei wesentliche Merkmale von V m-imaging dokumentiert. Erstens sind Fluoreszenzsignale linear proportional zu Membranpotentials über den gesamten physiologischen Bereich (-100 mV bis +100 mV, 10, 14, 16). Zweitens, Be-Neuronen mit der Spannung-empfindlichen Farbstoff welche hier (JPW 3028) nicht nachweisbare pharmakologische Wirkungen. Die aufgezeichneten Verbreiterung der Spitze während der Farbstoff Laden ist vollständig reversibel 4, 7. Zusätzlich zeigt experimentelle Hinweise, dass es möglich ist, zu erhalteneine beträchtliche Anzahl (bis zu hundert) von Aufnahmen vor nachweisbare phototoxische Effekte 4, 6, 12, 13. Derzeit nutzen wir die hervorragende Helligkeit und Stabilität einer Laserlichtquelle bei nahezu optimale Wellenlänge, um die Empfindlichkeit des V m-Bildgebungstechnik zu maximieren. Die aktuelle Sensitivität ermöglicht mehreren Standorten optische Aufnahmen von V m Transienten aus allen Teilen eines Neurons, einschließlich Axonen und Axon Sicherheiten, Terminal dendritischen Zweigen, und einzelne dendritische Dornen. Die erfassten Informationen zu Signals Wechselwirkungen kann quantitativ als auch direkt visualisiert in Form eines Films analysiert werden.

Protokoll

Ein. Aufstellbedingungen

Schritt 1.1. Imaging Setup

Der Schlüssel zur Aufzeichnung Spannung Farbstoff Signale entsprechende Setup-Design. Wir verwenden eine aufrechte Mikroskop (BX51WI Olympus oder Zeiss AxioExaminer) mit drei Kameras ausgestattet. Das Setup wird für die Beleuchtung von einzelnen Neuronen in Hirnschnitten von Anregungslicht in Auflicht-Fluoreszenz, Weitfeldmikroskopie-Modus entweder mit Nikon 60X/1.0 NA oder Zeiss 63X/1.0 NA Wasser Eintauchen Ziele entwickelt. Unsere Mikroskope sind eine Schwingungsisolierung Tisch verschraubt und mit motorisierten beweglichen Stufen. Jedes Mikroskop ist mit drei K....

Zugriff eingeschränkt. Bitte melden Sie sich an oder starten Sie eine Testversion, um diesen Inhalt anzuzeigen.

Ergebnisse

Erfolgreiche Konfokalmikroskopie ermöglichen sollten eindeutige Identifizierung von intakten neuronalen Prozesse, die nahe der Oberfläche der Scheibe sind und sich in einer Ebene des Fokus. Die Auswahl von Nervenzellen, die geeignet sind für Spannung Bildgebung vor Spannungs-empfindlichen Farbstoff Belastung ist kritisch. Ein Beispiel von konfokalen Bildern von L5 pyramidalen Neuronen exprimieren EGFP in einer kortikalen slice (Crym transgenen Maus-Linie) ist in Abbildung 2 gezeigt. Axone einzelner Neur.......

Zugriff eingeschränkt. Bitte melden Sie sich an oder starten Sie eine Testversion, um diesen Inhalt anzuzeigen.

Diskussion

Dieser Artikel beschreibt ein Spannungs-empfindlichen Farbstoff-Aufnahme Verfahren zur Überwachung der elektrischen Aktivität einzelner Neuronen mit sub-Mikrometer-und Sub-Millisekunden-raumzeitliche Auflösung. Laseranregung bei nahezu optimale Wellenlänge (bezüglich Signalgröße) verbessert die Empfindlichkeit der Aufnahme um einen Faktor von ~ 50 gegenüber früheren Ansätzen. Die aktuelle Empfindlichkeit ermöglicht die Überwachung elektrischer Signale aus allen Teilen der einzelnen Neuronen, einschließlich Dendriten, Ax.......

Zugriff eingeschränkt. Bitte melden Sie sich an oder starten Sie eine Testversion, um diesen Inhalt anzuzeigen.

Offenlegungen

Dejan Zecevic erklärt, dass er ein Miteigentümer RedShirtImaging LLC., Ein Unternehmen im High-Speed-, Low Noise CCD-Kameras in Spannungs-empfindlichen Farbstoff Aufnahme verwendet spezialisiert ist. Alle anderen Autoren berichten keine finanziellen Interessen oder potenzielle Interessenkonflikte im Zusammenhang mit der aktuellen Studie.

Danksagungen

Wir sind dankbar, dass unsere Mitarbeiter Knut Holthoff, Arthur Konnerth und Marco Canepari, die in der Anfangsphase der Entwicklung dieser Technik sowie Leslie M. Loew für die freundliche Bereitstellung Farbstoffe teilgenommen. Unterstützt durch NSF IOS-0817969, NIH Zuschüsse NS068407 und M136043 und Kavli Institute for Neuroscience an der Yale University.

....

Zugriff eingeschränkt. Bitte melden Sie sich an oder starten Sie eine Testversion, um diesen Inhalt anzuzeigen.

Materialien

Liste der in diesem Artikel verwendeten Materialien
NameUnternehmenKatalognummerKommentare
Name der Komponente Firma Katalog-Nummer Kommentare (optional)
Setup-Komponenten
Aufrechte Mikroskope Olympus Inc. BX51WI Mit drei Kamera-Anschlüsse
Motorisierte bewegliche Bühne Siskiyou MXOPi.2
Epi-Fluoreszenz-Kondensator für Olympus BX51 TILL Photonics 0000-560-11659
Aufrechte Mikroskope Carl Zeiss, LLC AxioExaminer D1 Mit drei Kamera-Anschlüsse
Motorisierte Top-Platte Scientifica Begrenzte MMBP
Epi-Fluoreszenz-Kondensator für Zeiss AxioExaminer TILL Photonics
Data Acquisition Kamera RedShirtImaging LLC NeuroCCD-SM Hohe Geschwindigkeit, niedrige Ausleserauschen
CCD für IR-DIC Dage-MTI IR-1000
Spinning-Disc Konfokale Scanner Yokogawa CSU-10
Hohe räumliche Auflösung CCD auf Konfokale Scanner PCO AG Pixelfly 1392x1024 Pixel
DPSS CW Laser (532 nm) CNI Optoelektronik Tech. Co., Ltd MLL-III-532 400mW Anregungslichtquelle
Multi-Mode Fiber Launcher Siskiyou SM-CFT
Light Guide TILL Photonics 0000-515-11524
Verschluss Vincent Associates LS6
Vibration Isolation Tabelle Minus k Technologie MK26
Reagenzien
Di-2-ANEPEQ (JPW 1114) Life Technologies D-6923 Spannung Farbstoff
Crym-EGFP Mauslinie GENSAT (MMRRC) STOCK Tg (Crym-EGFP) GF82Gsat/Mmcd Dünn Ausdruck EGFP in Layer 5 kortikalen Neuronen

Referenzen

  1. Bischofberger, J., Engel, D., Li, L., Geiger, J. R., Jonas, P. Patch-clamp recording from mossy fiber terminals in hippocampal slices. Nature Protocols. 1, 2075-2081 (2006).
  2. Cohen, L. B., Salzberg, B. M. Optical measurement of membrane potential. Ann. Rev. Neurosci. 1

Zugriff eingeschränkt. Bitte melden Sie sich an oder starten Sie eine Testversion, um diesen Inhalt anzuzeigen.

Nachdrucke und Genehmigungen

Weitere Artikel entdecken

Bildgebung des MembranpotenzialsVorbereitung von HirnschnittenAufzeichnung optischer SignaleBildgebung dendritischer SpinesAufzeichnung von Axon-KollateralenPatch-ElektrodentechnikAufbau der FluoreszenzmikroskopieMethode der SchwingungsisolierungJPW 3028 Farbladung