Methodenartikel

Handy-Tracking Mit Photoconvertible Proteine ​​während der Zebrafisch-Entwicklung

DOI:

10.3791/4350

28. September 2012

In diesem Artikel

Zusammenfassung

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Hier stellen wir eine Methode zum photoaktivierten Schalten von photokonvertierbaren fluoreszierenden Proteinen (PCFPs) im lebenden Zebrafischembryo und zur weiteren Verfolgung von photokonvertierten Proteinen zu bestimmten Zeitpunkten während der Entwicklung vor. Diese Methodik ermöglicht die Überwachung zellbiologischer Ereignisse, die verschiedenen Entwicklungsprozessen in einem lebenden Wirbeltierorganismus zugrunde liegen.

Zusammenfassung

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Embryogenese ist ein dynamischer Prozess, der am besten mit Techniken untersucht wird, die die Dokumentation von Entwicklungsveränderungen in vivo ermöglichen. Die Verwendung genetisch kodierter fluoreszierender Proteine hat sich als wertvolle Strategie erwiesen, um dynamische morphogenetische Prozesse, wie sie im intakten Organismus ablaufen, aufzuklären. In den letzten zehn Jahren hat die Entwicklung photoaktivierbarer und photokonvertierbarer fluoreszierender Proteine die Möglichkeit eröffnet, das Schicksal diskreter Subpopulationen von markierten Proteinenzu untersuchen 1. Im Gegensatz zu photoaktivierbaren Proteinen lassen sich photokonvertierbare fluoreszierende Proteine (PCFPs) vor der Photokonversion leicht verfolgen und in ihrem nativen Emissionszustand abbilden, was die Identifizierung und Auswahl von Regionen durch optische Inspektion erleichtert. PCFPs, wie Kaede2, KikGR3, Dendra4 und EosFP5, können von grün nach rot verschoben werden, wenn sie UV- oder blauem Licht ausgesetzt werden, und zwar aufgrund einer His-Tyr-Gly-Tripeptidsequenz, die ein grünes Chromophor bildet, das durch eine lichtkatalysierte β-Eliminierung und anschließende Verlängerung eines π-konjugierten Systems3 photokonvertiert werden kann. PCFPs und ihre monomeren Varianten sind nützliche Werkzeuge für die Verfolgung der Zellen6-10 bzw. der Proteindynamik11-14. In den letzten Jahren wurden PCFPs in verschiedenen Tiermodellen exprimiert, wie z.B. Zebrafisch6, Huhn7,8 und Maus9,10 zur Verfolgung des Zellschicksals. Hier berichten wir über ein Protokoll für die zellspezifische Photokonversion von PCFPs im lebenden Zebrafischembryo und die weitere Verfolgung von photokonvertierten Proteinen in späteren Entwicklungsstadien. Diese Methodik ermöglicht es, zellbiologische Ereignisse, die der Morphogenese im Zebrafisch-Tiermodell zugrunde liegen, gewebespezifisch zu untersuchen.

Protokoll

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1. Gewinnung von Embryonen für den Photokonversionstest

Bei der Kreuzung von transgenen Zebrafischen, die ein PCFP exprimieren, werden die hellsten, homozygoten Embryonen ausgewählt und bei 28,5 °C bis zum gewünschten Embryonalstadium15 gezüchtet.

Anmerkung 1: Diese Vorauswahl ermöglicht das Scannen von Embryonen mit geringer Laserleistung, wodurch Phototoxizität und Photobleiche verhindert werden.

Anmerkung 2: Wir empfehlen, bei der Visualisierung von Embryonen Licht mit geringer Intensität zu verwenden und sie aufgrund der hohen Empfindlichkeit von PCFPs, wie Kaede und KikGR....

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Diskussion

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In den letzten Jahren wurden transgene Tiermodelle für die Expression von photokonvertierbaren Proteinen wie Kaede oder KikGR erstellt. Diese Tiere entwickeln sich normal, was darauf hindeutet, dass diese Proteine keine toxischen Auswirkungen auf die Embryonalentwicklung haben. Der erste Bericht über einen Photokonversionsassay zur Verfolgung von Zellen in Tierembryonen wurde von Hatta und Mitarbeitern durch Injektion von mRNA oder DNA, die für Kaede kodiert, in einzellige Zebrafischembryonen zur ubiquitären Expression o.......

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Offenlegungen

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Es wurden keine Interessenkonflikte angegeben.

Danksagungen

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Wir danken Dr. Ian C. Scott für die freundliche Bereitstellung der Zebrafisch-transgenen Tg(kdrl:nlsKikGR)hsc7-Linie im Hospital for Sick Children, Toronto, Kanada. Wir danken der Confocal and 2-Photon Microscopy Core Facility (Max-Delbrück-Zentrum für Molekulare Medizin) und Dr. Zoltan Cseresnyes, für hervorragende technische Unterstützung und umfassende Unterstützung bei der Bildgebung. S.A.-S. wird durch ein Heisenberg-Stipendium der Deutschen Forschungsgemeinschaft (DFG) gefördert. Diese Arbeit wurde durch die DFG-Förderung SE2016/7-1 gefördert.

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Materialien

Liste der in diesem Artikel verwendeten Materialien
NameUnternehmenKatalognummerKommentare
Materialien:
Notwendige Ausrüstung für die Aufzucht von Fischen und das Sammeln von Eiern (siehe Zebrafish Book22 für Details).
StereomikroskopLeicaLecia MZ6 StereomikroskopAusgestattet mit einem Laser, der bei 488 nm arbeitet
Konfokales Laser-Scanning-MikroskopZeissZeiss LSM 710 NLOAusgestattet mit Lasern, die bei 488 nm, 561 nm und 405 nm arbeiten
Heizblock
Dumont #5 Pinzetten
Kulturschale mit DeckglasbodenMatTek CorpAshland MA
USA Microloader PipettenspitzenEppendorf
Vortex
Nadeln
Reagenzien:
Ei Wasser Medium
60 μ g/ml Instant Ocean Sea Salts in ddH2O
E3 medium
5 mM NaCl
0,17 mM KCl
0,33 mM CaCl2
0,33 mM MgSO4
0,00001% (w/v) Methylenblau
4 mg/ml Tricain-Stammlösung
>400 mg Tricain (3-Aminobenzoesäureethylester)Sigma-Aldrich
97,9 ml ddH2O
2,1 ml 1M Tris (pH9)
Bei pH 7 einstellen, aliquotieren und -20 ° C
1% LMA (Niedrige Schmelztemperatur Agarose, Lonza)
>1g LMA/100 ml E3 medium 1X
Aliquot und lagern bei 4 ° C
Paar

Referenzen

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  1. Day, R. N., Davidson, M. W. The fluorescent protein palette: tools for cellular imaging. Chem. Soc. Rev. 38, 2887-2921 (2009).
  2. Ando, R., Hama, H., Yamamoto-Hino, M., Mizuno, H., Miyawaki, A. An optical marker based on the UV-induced green-to....

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Schlagwörter

Photoconvertible ProteinsCell TrackingZebrafish DevelopmentConfocal MicroscopyPhoto ConversionFluorescent ProteinsTissue Specific ExpressionLow Melting Temperature AgaroseEgg Water MaintenanceEndothelial Cell Tracking

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