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Methodenartikel

Herstellung von primären Neuronen für die Visualisierung von Neuriten in einem tiefgefrorenen Zustand unter Verwendung von Kryo-Elektronentomographie

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DOI:

10.3791/50783

12. Februar 2014

In diesem Artikel

Zusammenfassung

Neuronale Prozesse zur ultrastrukturellen Analyse zu erhalten, beschreiben wir ein Protokoll für die Beschichtung von primären Neuronen auf Elektronenmikroskopie Gitter gefolgt von einem Blitzgefrieren, wodurch Proben in einer Schicht von glasartigem Eis suspendiert. Diese Proben können mit einer Kryo-Elektronenmikroskop auf Strukturen im Nanometerbereich sichtbar zu prüfen.

Zusammenfassung

Neuriten, beide Dendriten und Axone sind neuronale zelluläre Prozesse, die die Leitung der elektrischen Impulse zwischen den Neuronen zu ermöglichen. Festlegen der Struktur von Neuriten ist entscheidend für das Verständnis, wie diese Prozesse bewegen, Materialien und Signale, die synaptische Kommunikation unterstützen. Elektronenmikroskopie (EM) wurde traditionell verwendet, um die ultrastrukturelle Merkmale in Neuriten beurteilen, jedoch kann die Exposition gegenüber organischen Lösemittel während der Dehydratisierung und Harzeinbettungsstrukturen verzerren. Ein wichtiges Ziel ist die unerfüllte Formulierung von Verfahren, die für die strukturelle Auswertungen nicht durch solche Artefakte beeinflusst ermöglichen. Hier haben wir eine detaillierte und reproduzierbare Protokoll für wachsende und Schockgefrieren ganze Neuriten von verschiedenen primären Neuronen auf Elektronenmikroskopie Gitter gefolgt von deren Untersuchung mit Kryoelektronentomographie (Kryo-ET) eingerichtet. Diese Technik ermöglicht 3-D-Visualisierung von gefrorenen, hydratisierten Neuriten in Nanometer-Auflösung, die Erleichterung assessment ihrer morphologischen Unterschiede. Unser Protokoll liefert eine beispiellose Ansicht der Hinterwurzelganglien (DRG) Neuriten und eine Visualisierung des Hippocampus in der Nähe von Neuriten-nativen Zustand. Als solche sind diese Methoden schaffen ein Fundament für zukünftige Studien auf Neuriten der beiden normalen Neuronen und die von neurologischen Erkrankungen betroffen.

Einleitung

Neuronen stellen die komplexe Schaltung für die Funktion des zentralen und peripheren Nervensystem durch die Ausarbeitung Dendriten und Axone, um Informationen, die oft recht lang, um mit nachgeschalteten Neuronen kommunizieren. Neuritenwachstum spielt eine fundamentale Rolle in der Embryonalentwicklung und neuronalen Differenzierung und Erhaltung von Neuriten kritisch unterstützt die Funktion des Nervensystems. Neuritische Prozesse verfügen kritisch in neuronalen Verletzungen und Regeneration sowie Erkrankungen des Nervensystems. Die Untersuchung der neuronalen Architektur ist entscheidend, sowohl die normalen und erkrankten Gehirn zu verstehen. Glücklicherweise gib....

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Protokoll

1. Zubereitung der Speisen mit EM Grids für Überzug primären Neuronen

  1. Überprüfen Sie die Integrität der löchrigen Kohlenstoff auf den Gold-EM-Gitter mit einem Lichtmikroskop bei einer Vergrößerung von mindestens 25X. Stellen Sie sicher, Kohlenstoff Löcher sind> 98% intakt.
  2. Für Beschichtung primären Neuronen, verwenden Sie einen Bunsenbrenner flamm sterilisieren EM-Gitter und gleichzeitig machen sie hydrophil. Pinzette zu holen die EM Gitter am Rand, nicht das zentrale Gitterbereich. ACHTUNG: Lassen Sie eine brenn Bunsenbrenner unbeaufsichtigt und nicht Handschuhen oder Pinzette mit Kunststoff-Komponenten während der Durchführung dieser Schritte a....

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Ergebnisse

Vor dem Einfrieren und Bildgebung mittels Kryo-ET, sollte leicht Mikroskopbilder der EM-Gitter, auf dem die Neuronen wachsen genommen werden. Neuriten sollten deutlich sichtbar, ohne signifikante Überlappung miteinander sein. Eine farbige Box in 3A repräsentiert einen Bereich, der vergrößerten wird, um eine höhere Vergrößerung in 3B, in der Neuriten erstrecken sich über die Gitterwerk des Gitters zu zeigen. Jedes Gitter-Platz ist einer löchrigen Kohlenstoffschicht, die die Nervenzellen .......

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Diskussion

Wir zeigen, dass embryonale Rattenneuronen (Hinterwurzelganglien und Hippocampus) auf Gold-Elektronenmikroskopie (EM) Gittern gewachsen und im Glaskörper Eis dünn genug für ihre Neuriten, die abgebildet werden unter Verwendung von 2-D-Kryo-EM-und 3-D-Kryo-eingefroren werden ET. Während Hippocampus Neuriten haben zuvor mit Kryo-ET 8,10,18,23 abgebildet wurde, detailliert ein Protokoll für die erfolgreiche Replikation genug mit im Handel erhältlichen Geräte gefehlt hat. Darüber hinaus, während ihre Forschungen .......

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Offenlegungen

Die Autoren erklären, dass sie keine finanziellen Interessen konkurrieren.

Danksagungen

Diese Forschung wurde von den NIH Zuschüsse (PN2EY016525 und P41GM103832) unterstützt. SHS wurde von einem Stipendium der Nanobiologie interdisziplinäre Graduate Training Program des WM Keck Zentrum für interdisziplinäre Bioscience Ausbildung von der Golfküste Konsortien (NIH Grant No T32EB009379) unterstützt.

SHS seziert, wuchs und Stein DRG und Hippocampus-Zellen; gesammelt Kryo-EM-und Kryo-ET Daten der DRG und Hippocampus Axone, rekonstruiert und Farb kommentierte den Neigungs Serie. MRG seziert und bereitgestellt Hippocampus-Zellen in MNR Labor. SC in Kippserie Annotation unterstützt. SHS wurde vo....

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Materialien

Liste der in diesem Artikel verwendeten Materialien
NameUnternehmenKatalognummerKommentare
Dumont #7 PinzetteElektronenmikroskopie Sciences72803-01Für die Handhabung von EM-Gittern
GlasbodenschalenMatTek Corp.P35G-1.5-10CFür wachsende Proben
Elektronenmikroskopie-GitterQuantifoilHoley Carbon, Au 200, R 2/2Für wachsende Proben
Kalziumfreies FilterpapierWhatman1541-055Zum Ablöschen von Proben
Große lange Pinzetten mit flacher SpitzeExcelta CorporationE003-000590, 25-SAZum Ablöschen von Proben
Vitrifikationsgerät und PinzetteFEIVitrobot Mark IIIZum Einfrieren von Proben
Minigrid-AufbewahrungsboxenTed Pella, Inc.160-40Zur Aufbewahrung von EM-Gittern
Kryo-TransferhalterGatan626 Single Tilt Flüssigstickstoff Kryo-TransferhalterFür bildgebende Proben
Halbautomatische Tilt-SerienerfassungssoftwareSerialEMhttp://bio3d.colorado.edu/SerialEM/Für bildgebende Proben
BildverarbeitungssoftwareIMOD eTomohttp://bio3d.colorado.edu/imod/Für die Bildverarbeitung
Transmissionselektronenmikroskop für KryoEMJEOL, Tokyo200-kV JEM2100 LaB6 ElektronenmikroskopFür die Bildgebung
von Proben 4k x 4k CCD-KameraGatanN/AFür die Bildgebung
von Proben 3D-AnnotationssoftwareVisage Imaging GmbHAmira/AvizoFür die Verarbeitung von 3D-Daten
Software für das digitale Zusammenfügen von 2D-BildernAdobeAdobe PhotoshopZur Verarbeitung von 2D-Daten
DMEM, Invitrogen mit hohem Glukosegehalt11965-118Für Hippocampuskulturen
BorsäureSigma AldrichB-0252Für Hippocampuskulturen
NatriumtetraboratSigma AldrichB-9876Für Hippocampuskulturen
Poly-L-Lysin Sigma AldrichP2636-500MGFür Hippocampuskulturen
FiltersystemCorning430758Für Hippocampuskulturen
Neurobasales MediumInvitrogen21103-049Für DRG-Kultur
B-27 ErgänzungInvitrogen17504-044Für DRG-Kultur
Penicillin/StreptomycinInvitrogen15140-122Für DRG-Kultur
GlutaMAXInvitrogen35050-061für DRG-Kultur
Rekombinante Ratte b-NGFR& D Systems556-NGFür DRG-Kultur
UridinSigmaU3003-5GFür DRG-Kultur
5'-Fluor-2'-DesoxyuridinSigmaF0503-100MGFür DRG-Kultur
MatrigelBD Biosciences356234Für DRG-Kultur

Referenzen

  1. Al-Amoudi, A., et al. Cryo-electron microscopy of vitreous sections. EMBO J. 23, 3583-3588 (2004).
  2. Benzing, W. C., Mufson, E. J., Armstrong, D. M. Alzheimer's disease-like ....

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Nachdrucke und Genehmigungen

Schlagwörter

NeuritenvisualisierungElektronenmikroskopie NetzchenVitrifizierungsverfahrenhippocampale NeuronenSpinalganglionNanometeraufl sung3D Rekonstruktion