Methodenartikel

Isolation kortikaler Mikroglia mit bewahrten Immunophänotyp und Funktionalität aus Murine Neugeborene

DOI:

10.3791/51005

⸱

30. Januar 2014

 ,  , 
1Department of Neuroscience, Georgetown University Medical Center

In diesem Artikel

Zusammenfassung

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Ein Schlüssel zur erfolgreichen Untersuchung der Mikroglia-Biologie ist die Erhaltung der Immunfunktion Mikroglia ex vivo bei der Isolierung von ZNS-Gewebe. Trenn Mikroglia über Dreh Schütteln Ergebnisse in hochreiner und immunofunctional Zellkulturen durch Fluoreszenz-Bildgebung, Immunzytochemie, und ELISA folgenden Mikroglia-Aktivierung mit der proinflammatorische Stimuli Lipopolysaccharide (LPS) und Pam 3 4 CSK (Pam) bewertet.

Zusammenfassung

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Die Isolierung der Mikroglia von ZNS-Gewebe ist ein leistungsfähiges Werkzeug, um investigative Mikroglia Biologie studieren ex vivo. Das vorliegende Verfahren Details ein Verfahren zur Isolierung von murinen Mikroglia von neonatalen Kortex durch mechanische Bewegung mit einem Rotationsschüttler. Diese Methode liefert Mikroglia Isolierung hochreiner kortikalen Mikrogliazellen, die morphologischen und funktionellen Eigenschaften in normalen, nicht pathologischen Bedingungen in vivo bezeichnend für Ruhe Mikroglia aufweisen. Dieses Verfahren bewahrt auch die Mikro Immunphänotyps und biochemischen Funktionen, wie durch die Induktion der morphologischen Veränderungen, die nukleäre Translokation der p65-Untereinheit von NF-kB (p65), und Sekretion des proinflammatorischen Zytokins Markenzeichen, Tumor-Nekrose-Faktor-α (TNF-α nachgewiesen ), auf Lipopolysaccharide (LPS) und Pam 3 4 CSK (Pam) Herausforderungen. Daher erhält das vorliegende Verfahren die Isolierung Immunophänotyp sowohl Ruhe und aktivierenviert Mikroglia und bietet eine experimentelle Methode zur Untersuchung der Biologie in Mikroglia ex vivo-Bedingungen.

Einleitung

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Mikrogliazellen, die Überwachungs Makrophagen des ZNS Parenchym, umfassen etwa 12% der Gesamtzellpopulation des erwachsenen Gehirns von Säugetieren. Mikrogliazellen sind aus Dottersack myeloischen Vorläuferzellen abgeleitet und variieren in der Zelldichte und Morphologie in verschiedenen cytoarchitectural Regionen innerhalb der adulten ZNS 05.01. In einem gesunden erwachsenen Gehirn sind Mikroglia kleinen, verzweigten oder polaren Zellen mit feinen, dynamischen Prozessen. Im Gegensatz zu peripheren Makrophagen Morphologie, Mikrogliazellen zeigen eine Ruhe, Low-Profile-Phänotyp in gesunden Gehirnen, die als zelluläre Inaktivität erscheinen können, aber in-vivo-Imaging-Studien zeigen, dass die Mikroglia-Prozesse dynamisch aus-und einfahren, um ihre Mikroumgebung überwachen in einer Art und Weise erinnert an " Probenahme-und Vermessungs "6,7.

Mikroglia sind stark unterschiedlich und als Reaktion auf Umwelt und pathophysiologischen Veränderungen im Gehirn, Schaltvon einem Wacher zu einer Effektor-Zustand häufig als ihre Ruhe angesehen und aktivierten Zustände auf. Dieser Schalter kann bei der Aktivierung durch den Eingriff der membrangebundenen Mustererkennungsrezeptoren (PRRS), wie etwa Toll-like Rezeptoren (TLR), die pathogen-associated molecular Muster reagieren (PAMPS), nämlich Bakterien-und Virus-abgeleitete Lipoproteine ​​vermittelt , Nukleinsäuren, Kohlenhydrate und 8-11. Zusätzlich zu PAMPs haben KFVs auch gezeigt, dass Mikroglia-Aktivierung gegen steriles, nicht-pathogenen Molekülen Gefahr / Beschädigung assoziierte molekulare Muster (gedämpft) bekannt, die eine Störung der Homöostase im ZNS darstellen, wie beispielsweise Zellschäden induzieren 12-16. Einmal aktiviert, PRRs initiieren eine intrazelluläre Signalkaskade, die zu Veränderungen in Mikroglia-Zellmorphologie und Genexpression führt, insbesondere aktivierte Mikroglia eine Anpassung amoeboid-ähnlichen Phänotyp, die p65 transloziert NF-kB-Untereinheit (p65) in den Zellkern und regulieren die production und Sekretion von proinflammatorischen Cytokinen, wie Tumor-Nekrose-Faktor-α (TNF-α), Interleukin-1 β (IL-1β), zusammen mit reaktiven Sauerstoffspezies (ROS), 16-24. Obwohl integral an der angeborenen Immunantwort des ZNS haben diese Moleküle sezerniert wurde auch gefunden, neuronale oxidativen Stress zu erhöhen, wodurch induzieren und verschlimmern Neurodegeneration bei Krankheitszuständen, wie Parkinson-und Alzheimer-Krankheit 25-29.

Jedoch sind die Mechanismen der Mikroglia-Aktivierung in pathologischen Zuständen nicht vollständig verstanden. Daher Isolierung der Mikroglia ist ein leistungsfähiges Werkzeug in Untersuchungs dieser biologischen Prozesse, wie viele in-vivo-Funktionen von Mikroglia-Aktivierung in Kultur rekapituliert werden. Es sind mehrere Verfahren zur Isolierung von Mikroglia, einschließlich Isolierung über einen Percoll-Gradienten folgende enzymatische Verdauung von ZNS-Gewebe 30,31 erhältlich. Allerdings enzymatische Verdauung verändern könnender Immunphänotyp der Zellen, indem Zelloberflächenantigen-Expression 32 und führt zu einer geringeren Zellausbeute pro Tier als dem hier beschriebenen Verfahren. Insbesondere weisen wir einen durchschnittlichen Ertrag pro Welpe Mikroglia Kortex von 7,5 x 10 5 Zellen, während zuvor berichtet Isolierungsverfahren aus ganzen ZNS über einen Percoll-Gradienten Ausbeute 5.3 x 10 5 Zellen 30,33,34. Das vorliegende Verfahren umgeht die Verwendung von Verdauungsenzymen durch Isolierung Mikroglia auf der Grundlage ihrer niedrigen Hafteigenschaften, wodurch die Mikro Immunophänotyp und Funktionalität erhalten bleibt.

In der vorliegenden Studie beschreiben wir die Isolierung von Mikroglia-Zellen aus gemischten Glia-Kulturen aus Neugeborenen-heterozygoten CX3CR1-GFP (CX3CR1-GFP + / -) abgeleitet und C57BL / 6 Mäuse Kortex über mechanische Bewegung auf einem Rotationsschüttler, eine Erweiterung der zuvor publizierten Methode 24,35. Wir nutzen die ehemaligen Mausstamm für die einfache Visualisierung von Mikrogliazellen, alsDiese Mäuse exprimieren GFP unter der Kontrolle des endogenen Locus CX3CR1 - ein Monozyten-spezifische Promotor 36-38. Dieses Verfahren erzeugt sehr reine Mikrokulturen mit dem erhaltenen Immunphänotyps ex vivo, wie durch morphologische Veränderungen, die nukleäre Translokation von p65 und Sekretion von TNF-α nachgewiesen, wenn mit bakteriellem Lipopolysaccharid (LPS) oder Pam 3 CSK 4 gefordert, TLR4 und TLR1 / 2-Agonisten sind.

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Protokoll

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Vor Beginn dieses Protokoll, sammeln neugeborenen Mäusen an postnatalen Tag 1-3 (P1-3) in einem sterilen Behälter mit Original-Käfig Bettwäsche für Schutz und Wärme verschachtelt. Es ist wichtig, schnell und effizient durch dieses Protokoll arbeiten, um Mikroglia-Ausbeute zu optimieren. Bitte siehe Tabelle 1 für vollständige Reagenzienliste.

1. Vorbereitung der Instrumente, Kultur, Medien und Gerichte

  1. Vorbereitung 10 ml / Welpen Mikroglia komplette Medien (MCM; 1x Minimal Essential Medium Earles [MEM], ergänzt mit 1 mM L-Glutamin, 1 mM Natriumpyruvat, 0,6% v / v D-(+)-Glucose, 100 &mgr; g / ml Penicillin / Streptomycin (P / S), 4% v / v Fetal Bovine Serum (FBS), 6% v / v Pferdeserum), und fügen Sie zu jedem T-75-Kolben (1-Kolben / Welpe), Kappe und Ort horizontal in einen Inkubator (37 ° C, 5% CO 2) für 1 h äquilibrieren gelassen. Es ist wichtig, dieses Medium in Flaschen (en) vor Beginn der Präparation äquilibrieren.
  2. Prepare, aliquote, und warm im 37 ° C warmen Wasserbad für MCM-Dissektion (6 ml / Welpe) und in einem separaten konischen Rohr MCM für Zell Aufwirbelung (2 ml / Welpe). Bereiten aliquote, und Chill auf Eis Mincing Medien (MM; HBSS, ergänzt mit 100 ug / ml P / S, 0,01 M HEPES, 3 ml / Welpe) und Dissecting Medien (DM; MEM mit 100 ug / ml ergänzt P / S; 2 ml / Welpe).
  3. Sterilisieren Sie die folgenden chirurgische Instrumente durch Eintauchen in 70% Ethanol für 10 min: Schere Nr. 1 (1; zu enthaupten), forcep # 1 (2; Nase sichern und Rinden entfernen), Schere Nr. 2 (1; nonangled; zu öffnen Kopfhaut ), forcep Nr. 2 (1; Kopfhaut entfernen), forcep Nr. 3 (1; Schädel zu entfernen), forcep # 4 (2; Hirnhaut entfernen), Schere Nr. 3 (1; Hirngewebe Hackfleisch). An der Luft trocknen auf einer sterilen Unterlage.
  4. Wischen Sie den horizontalen Luftstrom-Workstation und Dissektionsmikroskop mit 70% Ethanol.
  5. Dispense DM in zwei sterile, 100 mm Petrischalen für die Erfassung Kopf (3 ml; ein Gericht / 3 Jungtiere) und Zerlegung (1 ml;Ein Gericht / pup; vor der Dissektion auf Eis gekühlt). Dispense MM in ein steriles, 100 mm Petrischale zum Zerkleinern von Hirngewebe (1 ml, 1 Schale / Welpe).

2. Gehirngewebe Dissection

  1. Vor der Euthanasie, sanft desinfizieren Hals und Kopf des Welpen mit 70% Ethanol mit Hilfe eines Labor-Gewebe. Mit Scheren Nr. 1, schnell Welpen einschläfern durch Entfernen der Kopf, Kopf-Capture in vorbereitete Petrischale. Euthanize und füllen Sie die Dissektion der ein Welpe, bevor Sie mit dem nächsten Tier.
  2. Übertragen Sie den Kopf auf die Kaltschale Dissektion, unter Dissektionsmikroskop sichern den Kopf durch Kneifen die Nase mit Zange # 1 (alternativ kann der Kopf durch Durchstechen der Zange durch die Augenhöhle befestigt werden), offene Kopfhaut mit Scheren Nr. 2 durch die Schaffung eines Y-Schnitt: Anfang von der Basis des Kopfes und in einem Winkel in Richtung der Augen. Verwenden forcep Nr. 3 zu entfernen sanft die Kopfhaut durch seitlich Peeling, Aussetzen der Schädel.
  3. Mit Pinzette # 3, entfernen Sie vorsichtig Bindegewebe an der Basis derKopf. Wenn der Schädelbasis ausgesetzt ist, vorsichtig öffnen Schädel durch Einfädeln einem Arm in forcep zwischen Gehirn und Schädel (nach der Interhemisphärenspalt); Griff; ziehen Sie vorsichtig nach oben, um den Schädel aufreißen.
  4. Stören Bindegewebe unter Bauchseite der Gehirn mit Zange # 1, und anschließend entfernen Gehirn mit dem gleichen Werkzeug. Heben Sie das Gehirn aus der Schädel durch die Verwendung eines nach oben gerichteten Kraft unter der Bauchseite des Gehirns.
  5. Halten Sie das Gehirn in seiner anatomischen Position: Rückenseite nach oben, um die Rinden unter der Dissektionsmikroskop visualisieren, sichern das Gehirn an Ort und Stelle durch Einfügen von Spitzen der Pinzette in der Kreuzung des Mittelhirns und des Kortex; kortikalen Hirnhaut vollständig zu entfernen mit Zange Nr. 4, fahren Sie dann mit der ventralen Hirnhäute entfernen. Sobald die Hirnhaut vollständig entfernt wurden, trennen Sie die Rinden von dem Rest des Gehirns mit Zange Nr. 4. Es ist wichtig, vollständig zu entfernen Hirnhautgewebe Mikroglia Reinheit und yiel maximierend.

3. Gehirngewebe Mincing

  1. Über Kortex zuvor vorbereitet Hacken Schüssel; weiterhin Hacken Schritt mit sterilen Technik in der Klasse II Biologische Sicherheitswerkbank.
  2. Mit Scheren Nr. 3 Mince Hirngewebe, die Übertragung zerkleinerte Gewebe in ein 15 ml konischen Röhrchen;. Spülen Scheren und Hacken Schüssel mit 1 ml MM jeden, sammeln und abzugeben Spülungen in die 15 ml konischen Röhrchen, die das zerkleinerte Gewebe wird dieser Spülvorgang zu maximieren die Ausbeute an Mikrogliazellen durch Sicherstellung, dass alle Restgewebe ist mit konischen Röhrchen überführt. Lassen Gewebesuspension für 1-2 min ungestört, so dass zerkleinerte Gewebe auf dem Boden des Röhrchens zu begleichen. Haben 2 Minuten nicht überschreiten, da MM nicht essentiellen Nährstoffe enthalten.
  3. Entfernen und entsorgen 2 ml Überstand mit generischen 1000 ul Mikropipette mit einer Standard-Pipettenspitze, dass bestimmte nicht zu den niedergelassen Hackfleisch-Gewebe zu stören.
  4. 3 ml MCM zu der Hackfleisch-Gewebe; verreiben das Gewebe mit voller Kraft mit einem generischen 1000 ul Mikropipette mit einem Standard-Pipettenspitze ohne erkennbare feste Gewebe sollte bleiben, wenn Verreiben abgeschlossen ist.. Fügen Sie weitere 3 ml MCM mit der gleichen Pipettenspitze, sammeln Rest verrieben Probe aus der Pipettenspitze.

4. Wachsende kortikalen Zellen

  1. Zentrifuge das zerkleinerte Gewebe Zellen zu pelletieren (215 xg; 5 min; RT; klinischen Zentrifuge mit Ausschwingrotor). Zurück pelletierten Zellen zur biologischen Sicherheitsschrank, entfernen und den Überstand verwerfen; sanft Zellpellet (2 ml / Rohr; MCM), fügen Sie die Zelle Aufwirbelung zu der vorher hergestellten T-75-Kolben; Kappe der Flasche und legen Sie sie horizontal in einer befeuchteten Standardgewebekultur-Inkubator (37 ° C, 5% CO 2). Lassen Sie die Zellen für 24 h inkubiert.
  2. Nach 24 Stunden, klopfen Sie leicht Kolben gegen die Handfläche zu störenGewebereste. Check-Zellen vor und nach dem Abstich, um eine vollständige Entfernung von Rückständen sicherzustellen. Set Kolben vertikal; entfernen und entsorgen Medien, fügen frische MCM auf den Boden der Flasche (12 ml, 37 ° C), Kappe und legen Sie wieder in den Inkubator, horizontal.
  3. Überprüfen Zellen täglich auf Verschmutzung und das Wachstum zu überwachen.
  4. Bei etwa 17 bis 21 Tagen in vitro (DIV), werden Mikrogliazellen bereit für die Ernte aus dem gemischten Gliazellen Kultur. Um festzustellen, ob Zellen sind bereit, zu prüfen Zellen unter einem inversen Phasenkontrastmikroskop. Mikroglia sind bereit für die Ernte, wenn sie bei ~ 40% Konfluenz. Sie erscheinen als kleine, hell, Kugelzellen wachsen als Monolayer auf andere Gliazellen.

5. Isolierung von Mikroglia vom gemischten Gliazellen Kultur

  1. Um Mikroglia zu isolieren, kräftig tippen Kolben gegen Labortisch. Diese Bewegung hilft separaten Mikroglia aus anderen Gliazellen aufgrund der niedrigen Hafteigenschaften von Mikroglia.
  2. Seal T-75-Kolben-Kappen mit Parafilm und die gemischten Gliakulturen drehen (200 Upm; 37 ° C; 5 h). Verwendung einer Temperatur-kontrollierten, nonhumidified Rotationsschüttler Nicht Zellen länger als 5 Stunden schütteln Sichtprüfung. dass Mikroglia haben sich die Kolben-Oberfläche nach 5 Stunden aufgehoben, mit einem inversen Phasenkontrastmikroskop. Mikroglia sind hell, kugelförmig, frei schwimmende Zellen. Es wird eine Restschicht von Astrozyten und Oligodendrozyten zu dem Boden des Kolbens zu haften.
  3. Sammeln Stand Medien, die Mikroglia in einen sterilen konischen Zentrifugenröhrchen; Pellet Mikroglia (215 xg, 5 min; Ausschwingrotor).
  4. Resuspendieren der Mikropellets in warmem Mikroglia-Wachstumsmedium (MGM, MEM, ergänzt mit 1 mM Natriumpyruvat, 0,6% v / vglucose, 1 mM L-Glutamin, 100 ug / ml P / S, 5% v / v FBS, 2 ~ ml / Kolben), bestimmen die Zellkonzentration mit einem Hämozytometer und Platte 1 x 10 5 Zellen / Well in einer 24-Well-Plattenformat aufKunststoff-oder sterilen Glasdeckgläser (500 ul /; MGM). Mit diesem Verfahren die durchschnittliche Mikroglia Ausbeute beträgt 7,5 x 10 5 Zellen / pup Kortex.
  5. 24 Stunden nach der Beschichtung, entfernen Sie alle Medien-und Rückführungs Zellen mit frischem MGM (37 ° C), um schwimmende Zellen und Zelltrümmer zu entfernen. Dieser Schritt ist entscheidend für das Überleben der Zelle und Ruhe Mikroglia zu halten. Die Zellen können zum Experimentieren unmittelbar nach refeeding genutzt werden.

6. Beispiel Behandlungen

  1. Aussetzen Zellen 10 ng / ml von Pam 3 CSK 4 (Pam), 10 ng / ml Lipopolysaccharid (LPS) oder einer Fahrzeugsteuerung; Inkubation für 2 oder 24 h in befeuchteten Inkubator (37 ° C, 5% CO 2).

7. Analyse von Mikrogliazellen für Funktionalität Ex-vivo-Imaging über Immunfluoreszenz-und Immunzytochemie

  1. Nach der Behandlung der Ernte von Zellkulturmedien in Mikrozentrifugenröhrchen (1,5 ml) und zentrifuge mit einer Tischmikrozentrifuge (2 min; 900 xg), um Medien zu löschen. Den Überstand in ein sauberes Mikrozentrifugenröhrchen; Test sofort oder bei -20 ° C bis zur Verwendung. TNF-α Analysieren Konzentration in Zellkulturüberstand über handelsübliche Maus TNF-α-ELISA-Kit.
  2. Waschen der Zellen mit phosphatgepufferter Salzlösung (PBS), und fixieren die Zellen mit 4% (w / v) Paraformaldehyd / 4% (w / v) Saccharose / PBS pH 7,4 (4% PFA, 15 min, RT). Nach der Fixierung, waschen Sie die Zellen mit PBS für 5 min unter leichtem Schütteln auf einem Rundschüttler.
    1. Immunfluoreszenz / Immunocytochemistry. Nach der Fixierung und PBS waschen, Prozess Mikroglia für Immunzytochemie. Alle Schritte mit leichtem Schütteln durchgeführt. Zellen permeabilisiert PBS/0.1% Triton X-100; Blockzellen in PBS/10% normalem Ziegenserum für eine Stunde. Zellen O / N Inkubieren bei 4 ° C mit Kaninchen-Anti-NF-&kgr; B-Antikörper (p65-Untereinheit; 1/1, 250) oder Kaninchen-anti-Iba-1-Antikörper (1/750) in Blockierungspuffer. Visuellize Antigen: Antikörper-Komplex nach Inkubation mit Fluoreszenz-konjugierte Ziege-Anti-Kaninchen-IgG-Sekundärantikörper (1 h, 1/1, 000). Entfernen von ungebundenem sekundärem Antikörper durch Waschen mit PBS/0.1% Triton X-100 (3 × 5 min).
    2. Gegenfärbung Zellen mit 4 ',6-Diamidino-2-phenylindol / PBS (DAPI, 0,1 ug / ml). In den Zellkern zu visualisieren Alle Mikroglia aus CX3CR1-GFP + / abgeleitet - Mäuse exprimieren GFP. Nutzen Sie eine 350 nm Wellenlängenfilter, um DAPI visualisieren, ein 488 nm Wellenlängenfilter mit GFP zu visualisieren, und ein 594 nm Wellenlängenfilter an p65 und Iba-1-Immun visualisieren.
  3. Berg Deckgläser unter Verwendung wässriger Lösung und Montage visualisieren Mikroglia mit Fluoreszenzmikroskopie.

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Ergebnisse

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Beibehaltung der Immunphänotyp und Funktionalität der Mikroglia ex vivo während der Isolierung ist entscheidend, um in der Lage, diese Zellen als Untersuchungsmodell für Mikro Biologie zu nutzen. Um die erfolgreiche Konservierung von Mikroglia immunofunctionality Verwendung des vorliegenden Verfahrens zu demonstrieren, isolierten wir kortikalen Mikrogliazellen von P3 Neugeborenen (CX3CR1-GFP + / - und C57BL / 6) und behandelten Kulturen entweder mit LPS oder Pam.

Wie in <...

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Diskussion

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Das vorliegende Verfahren bietet eine effektive Methode zur Isolierung der kortikalen Mikrogliazellen von neugeborenen Mäusen. Dieses Verfahren hat einen zweifachen Vorteil 1) Erhaltung Mikroglia Immunphänotyps und Funktionalität, wie durch Fluoreszenz-Bildgebung, Immunzytochemie und ELISA bestimmt, und 2) ermöglicht Mikroglia in der Gegenwart von anderen Gliazellen (Astrozyten und oligodentrocytes) vor dem reifen Isolation, die während der Gliazellen Kultur Reifezeit wichtige Zell-Zell-Interaktionen ermöglichen kann. W...

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Offenlegungen

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Die Autoren erklären, dass die Forschung wurde in Abwesenheit von kommerziellen oder finanziellen Beziehungen, die als potentieller Interessenkonflikt verstanden werden könnte durchgeführt.

Danksagungen

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Diese Arbeit wurde von NIEHS R01ES014470 (KMZ) unterstützt.

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Materialien

Liste der in diesem Artikel verwendeten Materialien
NameUnternehmenKatalognummerKommentare
GlucoseSigmaG827020%ige Stammlösung mit MilliQ Wasser herstellen, Filter sterilisieren, bei 4 & Grad lagern; C; Haltbarkeit: 3-6 Monate. Wird zur Herstellung von MCM und MGM verwendet.
Natriumpyruvat 100 mM (100x)HycloneSH30239.01Bei 4 μC lagern. Wird zur Herstellung von MCM und MGM verwendet.
Penicillin/Streptomycin 10.000 Einheiten/ml (100x)Gibco15140-122Bei -20 °C lagern. Wird zur Herstellung von MCM, MGM, MM und DM verwendet.
L-Glutamin 200 mM (100x)Gibco25030-081Bei -20 °C lagern. Wird zur Herstellung von MCM und MGM verwendet.
Fötales Rinderserum (definiert)HycloneSH30070.03Filter sterilisieren; lagern bei -20 °C. Wird zur Herstellung von MCM und MGM verwendet.
Minimum Essential Medium Earle's (MEM)Cellgro15-010-CVohne L-Glutamin. Enthält Earle-Salze. Wird zur Herstellung von MCM, MGM und DM verwendet.
PferdeserumGibco16050Filter sterilisieren; bei -20 °C lagern. Wird zur Herstellung von MCM und MGM verwendet.
Hanks' Balanced Salt Solution (HBSS)Cellgro21-021-CVOhne Calcium und Magnesium. Bei 4 °C lagern. Wird zur Herstellung von MM verwendet.
HEPES 1 MGibco15630-031Bei 4 & Grad lagern. Wird zur Herstellung von MM verwendet.
T-75Flask Corning430641
4',6-Diamidino-2-phenylindole, dilactat (DAPI)InvitrogenD3571Wird zur Färbung des Zellkerns verwendet.
Kaninchen Anti-Iba1Wako019-19741Wird in einer Verdünnung von 1/750 für die ICC-Färbung von Iba1 verwendet.
Kaninchen Anti-NFκ B (p65)Abcam7970Wird in einer Verdünnung von 1/1.250 für die ICC-Färbung von p65 verwendet.
Alexa Fluor 594 Ziege Anti-Kaninchen IgG (H+L)InvitrogenA11012Wird in einer Verdünnung von 1/1.000 zur Visualisierung des Antigen:Antikörper-Komplexes in ICC verwendet.
10 ml Serologische EinwegpipetteFisher Scientific13-678-11E
50 ml Einweg-ZentrifugenröhrchenFisher Scientific05-539-8
15 ml Einweg-ZentrifugenröhrchenFisher Scientific05-539-12
Sterile Petrischale aus PolystyrolFisher Scientific875713100 mm x 15 mm
Schere: Gerade Metzembaum (Schere #1)Roboz SurgicalRS-60101; 5 Zoll; zum Entfernen des Kopfes
Schere: Vannas
(Schere #2)		Fine Science Tools15000-081; nicht abgewinkelt; 2,5 mm Schneide; zum Öffnen der Kopfhaut
Schere: Student Vannas (Schere #3)Fine Science Tools91501-091; gebogen; zum Zerkleinern von Hirngewebe
Zange: Dumont #7
(Pinzette #1)		Fine Science Tools91197-002; Wird verwendet, um die Nase zu sichern und Kortexe zu entfernen 
Pinzette: Dumont #2
(Pinzette #2)		Fine Science Tools11223-201; zur Entfernung der Kopfhaut
Pinzette: Dumont #3
(Pinzette #3)		Fine Science Tools11231-301; zur Entfernung der Schädelpinzette
: Dumont #5a
(Pinzette #4)		Fine Science Tools11253-211; zur Entfernung von Hirnhäuten
Tabelle der spezifischen Ausrüstung
Zoom Stereo-Dissektionsmikroskop Das OlympusSZ4060Mikroskop befindet sich in einem Laminar-Horizontal-Flow-Schrank
NuaireNU-201-330
Biologischer SicherheitsschrankLabconco3440001Klasse II
Wasserummantelter CO2InkubatorVWR97025-836Eingestellt auf 37 &Grad; C, 5% CO2
AusschwingschaufelnFisher Scientific75006441Zur Verwendung mit Ausschwingrotor
AusschwingrotorFisher Scientific75006445Max. Radius: 19,2 (cm)
Sorvall Legend RT+ Zentrifuge
(klinische Zentrifuge)		Fisher Scientific75-004-377Mit Ausschwingrotor
AccuSpin Micro 17 Mikrozentrifuge
( Tisch-Mikrozentrifuge)		Fisher ScientificS98645Mit Mikroliter-Rotor (24 x 1,5/2,0 ml; Katze #: 75003524)   

Referenzen

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