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Methodenartikel

DNA-Affinitäts-gereinigten Chip (DAP-Chip)-Methode, um Gene für bakterielle Ziele fest, Zwei-Komponenten-Systeme Regulatory

15.8K Aufrufe

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DOI:

10.3791/51715

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21. Juli 2014

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In diesem Artikel

Zusammenfassung

Dieses Video Artikel beschreibt ein in vitro-Mikroarray-basierte Methode, um die Gen-Targets und Bindungsstellen für Zweikomponentensystem Antwortregulatoren bestimmen.

Zusammenfassung

In-vivo-Methoden wie Chip-Chip sind etablierte Techniken zur globalen Zielgene für Transkriptionsfaktoren zu bestimmen. Von begrenztem Nutzen sind sie jedoch in der Erforschung bakteriellen Zwei-Komponenten-Regulationssysteme mit charakterisierter Aktivierungsbedingungen. Solche Systeme regulieren die Transkription nur, wenn in Gegenwart von eindeutigen Signalen aktiviert. Da diese Signale oft unbekannt sind, können in diesem Video-Artikel beschriebene in vitro-Mikroarray-basierten Verfahren verwendet werden, um Gen-Targets und Bindungsstellen für Antwortregulatoren zu bestimmen. Diese DNA-Affinitäts-gereinigten-Chip-Verfahren kann für jede gereinigte Regler in jedem Organismus mit einem sequenzierten Genom verwendet werden. Das Protokoll beinhaltet wodurch die gereinigte markierte Protein zu scher genomische DNA binden und Affinitätsreinigung des proteingebundenen DNA, gefolgt von der fluoreszierenden Markierung der DNA und Hybridisierung an eine individuelle Unterteilung Array. Vorhergehenden Schritte, die verwendet werden, um den Test zu optimieren Spezifikationen werden könnenc Regler werden ebenfalls beschrieben. Die von der Array-Daten-Analyse erzeugten Peaks werden verwendet, um Bindungsstelle Motive, die dann experimentell validiert werden vorherzusagen. Die Vorhersagen Motiv kann weiter verwendet werden, um Gen-Targets orthologer Antwortregulatoren in nahe verwandten Arten zu bestimmen. Wir zeigen die Anwendbarkeit dieser Methode durch Bestimmung der Gen-Targets und-Bindungsstelle Motive und damit die Vorhersage der Funktion für ein sigma54 abhängige Antwortregulator DVU3023 in der Umwelt Bakterium Desulfovibrio vulgaris Hildenborough.

Einleitung

Die Fähigkeit der Bakterien zu überleben und zu gedeihen ist kritisch davon abhängig, wie gut sie in der Lage zu erkennen und zu reagieren, um Störungen in ihrer Umgebung sind, und diese wiederum ist abhängig von der Signalübertragungssysteme. Die Anzahl der Signalanlagen ein Bakterium kodiert wurde seine "mikrobielle IQ" bezeichnet und kann ein Hinweis sowohl Variabilität der seine Umwelt und seine Fähigkeit, mehrere Signale zu erfassen und eine Feinabstimmung seiner Antwort 1 sein. Zwei-Komponenten-Signalübertragungssystemen (ASR) sind die am weitesten verbreiteten Signalsysteme von Bakterien verwendet werden, und sie bestehen aus einem Histidin-Kinase (....

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Protokoll

Hinweis: Die unten Protokoll wird für die Bestimmung von Gen-Ziele der RR DVU3023 aus dem Bakterium Desulfovibrio vulgaris Hildenborough zugeschnitten. Es können zu jedem anderen Transkriptionsregulator von Interesse angepasst werden.

1. Clone und Entschlacken RR

  1. Klonen Sie die RR-Gen, insbesondere DVU3023, aus D. vulgaris Hilden in einem Escherichia coli-Expressionsvektor, so dass das Gen C-terminal His-markiert und Expression unter der Kontrolle eines T7-Promotors.
    Hinweis: Mehrere Klonierungsverfahren kann verwendet werden und wird durch den Forscher bestimmt. Alternative Affinitäts-Tags kön....

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Ergebnisse

Das oben genannte Verfahren wurde angewendet, um die globalen Gen-Targets der RRS in der Modellsulfatreduzierenden Bakteriums Desulfovibrio vulgaris Hildenborough 7 zu bestimmen. Dieser Organismus besitzt eine große Anzahl von FKS über 70 RRs dargestellt, was auf die Vielzahl von möglichen Signalen, die es erfaßt und darauf reagiert. In-vivo-Analysen der Funktionen dieser Signalanlagen schwer, da ihre Signale führen und somit ihre Aktivierungsbedingungen sind unbekannt. Hier wurde die DAP-Ch.......

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Diskussion

Die hier beschriebene DAP-Chip-Methode wurde erfolgreich eingesetzt, um die Gen-Targets für mehrere RRS in Desulfovibrio vulgaris Hildenborough 7, von denen eine hier als repräsentatives Ergebnis gezeigt zu bestimmen. Für RR DVU3023, die Wahl eines Kandidaten-Gen Ziel war einfach. DVU3025 ist unmittelbar stromabwärts von der RR-Gen und die RR-und Zielgene werden in mehreren Desulfovibrio-Arten konserviert sind, und zusätzlich eine vorhergesagte DVU3025 sigma54-abhängigen Promotor. Die EMSA b.......

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Offenlegungen

Die Autoren haben keinen Interessenkonflikt offen zu legen.

Danksagungen

Wir danken Amy Chen für ihre Hilfe bei der Vorbereitung der Videodreh und zur Demonstration der Technik. Diese Arbeit von ENIGMA durchgeführt: Ökosysteme und Netzwerke integriert mit Gene und molekulare Baugruppen (http://enigma.lbl.gov), ein Scientific Focus Area Programm am Lawrence Berkeley National Laboratory, wurde durch das Amt für Wissenschaft, Amt für Biologische und unterstützt Umweltforschung, des US Department of Energy unter Vertrag Nr. DE-AC02-05CH11231.

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Materialien

Liste der in diesem Artikel verwendeten Materialien
NameUnternehmenKatalognummerKommentare
HisTrapFF-Säule (Ni-Sepharose-Säule)GE Lfe Sciences, Pittsburgh, PA, USA17-5255-01
Akta-Explorer (FPLC-Instrument)GE Lfe Sciences, Pittsburgh, PA, USA
HiPrep 26/10 EntsalzungssäuleGE Lfe Sciences, Pittsburgh, PA, USA17-5087-01
Qiaquick Gel-ExtraktionskitQiagen Inc, Valencia, CA, USA28704
Biotin-markierte OligonukleotideIntegrated DNA TechnologiesN/A
6% Polyacrylamid-0,5x TBE vorgefertigtes Mini-DNA-RetardierungsgelLife Technologies, Grand Island, NY, USAEC63652BOXAlternativ können Sie Ihr eigenes Gel einschenken.
NylonmembranEMD Millipore, Billerica, MA, USAINYC00010
Trans-Blot SD Halbtrockene elektrophoretische TransferzelleBiorad, Hercules, CA, USA170-3940
Extra dickes Fleckpapier, 8 x 13,5 cmBiorad, Hercules, CA, USA170-3967
UV-Vernetzer Modell XL-1000Fisher Scientific11-992-89
Nukleinsäure-Chemilumineszenz-Nachweiskit (Pierce)Thermo fisher Scientific, Rockford, IL, USA89880
Ni-NTA-AgaroseharzQiagen Inc, Valencia, CA, USA30210
GenomePlex Amplifikationskit für das gesamte Genom (Fragmentierungspuffer, Bibliotheksvorbereitungspuffer, Bibliotheksstabilisierungslösung, Bibliotheksvorbereitungsenzym, 10x Amplifikations-Mastermix, WGA-Polymerase)Sigma-Aldrich, St. Louis, MO, USAWGA2-50RXN
Nanodrop ND-1000Thermo Scientific, Wilmington, DE, USAFür die Quantifizierung von DNA
Perfecta Sybr Green SuperMix, mit ROXQuanta biosciences95055-500Jeder Sybr Green PCR-Mix kann verwendet werden
PlateMax Ultra klare Heißsiegelfolie für qPCRAxygen
[header]
96-Well-Clear-Low-Profile-PCR-MikroplatteLife Technologies, Grand Island, NY, USAPCR-96-LP-AB-C
Applied Biosystems StepOne Plus Real time PCR systemLife Technologies, Grand Island, NY, USA4376600Jedes real time PCR-System kann verwendet werden
Qiaquick PCR-Aufreinigungskit QiagenInc, Valencia, CA, USA28104Jedes PCR-Aufreinigungskit kann verwendet werden
Cy3/Cy5-markierte NonamerTrilink biotechnologies, San Diego, CA, USAN46-0001, N46-0002
Klenow-Polymerase 50.000 U/ml, 3'-5' Exo-New England Biolabs, Ipswich, MAM0212M
HybridisierungssystemRoche-Nimblegen, Madison, WI, USAN/ADieses Unternehmen stellt keine Arrays oder verwandten Artikel mehr her, daher müssen alternative Quellen wie Agilent oder Affymetrix verwendet werden.
Individuell bedruckte Microarrays und MischerRoche-Nimblegen, Madison, WI, USAN/A
Hybridisierungskit (2x Hybridisierungspuffer, Hybridisierungskomponente A, Alignment-Oligo)Roche-Nimblegen, Madison, WI, USAN/A
Waschpuffer Kit (10x Waschpuffer I, II, III, 1 M DTT)Roche-Nimblegen, Madison, WI, USAN/A
GenePix 4200A Microarray-ScannerMolecular Devices, Sunnyvale CA, USADieses Modell wurde durch überlegene Modelle
GenePix Pro Microarray-SoftwareMolecular Devices, Sunnyvale CA, USA
Nimblescan v.2.4, ChIP-Chip-AnalysesoftwareRoche-Nimblegen, Madison, WI, USAN/A
ersetzt:

Referenzen

  1. Galperin, M. Y. Diversity of structure and function of response regulator output domains. Curr Opin Microbiol. 13, 150-159 (2010).
  2. Casino, P., Rubio, V., Marina, A. The mechanism of signal transduction by two-component systems. Curr Opin Struct Biol.

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Nachdrucke und Genehmigungen

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