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Methodenartikel

Rekonstitution der ein Transmembranprotein, das spannungsgesteuerten Ionenkanal, KvAP, in Riesen unilamellare Vesikel für Mikroskopie und Patch-Clamp-Studien

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DOI:

10.3791/52281

22. Januar 2015

In diesem Artikel

Zusammenfassung

Elektroformation, und Gel-unterstützte Schwellung - Die Wiederherstellung der Transmembranprotein, KvAP, in riesige unilamellare Vesikel (GUVs) ist für zwei Dehydration-Rehydrierung Methoden nachgewiesen. In beiden Verfahren werden kleine unilamellare Vesikel, die das Protein enthält, zusammengeschmolzen, um GUVs die dann durch Fluoreszenzmikroskopie und Patch-Clamp-Elektrophysiologie untersucht werden können zu bilden.

Zusammenfassung

Riesigen unilamellaren Vesikeln (GUV) stellen eine populäre biomimetischen System für die Untersuchung Membran verbundenen Phänomenen. Jedoch allgemein verwendeten Protokolle zu wachsen GUVs muß, um GUVs funktionelle Transmembranproteine, die Form modifiziert werden. Dieser Artikel beschreibt zwei Dehydration-Rehydrierung Methoden - Elektroformation und Gel-unterstützte Schwellung - zu GUVs mit dem spannungsabhängigen Kaliumkanal, KvAP zu bilden. Bei beiden Verfahren ist eine Lösung von Protein enthaltenden kleinen unilamellaren Vesikeln partiell dehydratisiert, um einen Stapel von Membranen, die man dann in ein Rehydrationspuffer quellen zu bilden. Für die Elektroformation Verfahren wird der Film auf Platinelektroden abgeschieden, so dass eine AC-Feld bei der Folien Rehydratisierung angewendet werden. Im Gegensatz dazu verwendet das Gel gestützten Quellverfahren ein Agarosegel Substrat Film Rehydratisierung verbessern. Beide Methoden können GUVs in niedrigen (zB 5 mM) und physiologischen (zB 100 mM) Salzkonzentrationen zu produzieren. Die resultierenden GUVs über Fluoreszenzmikroskopie charakterisiert, und die Funktion des rekonstituierten Kanäle gemessen mit der Inside-Out-Patch-Clamp-Konfiguration. Während Schwellung in der Gegenwart eines elektrischen Wechselfeldes (Elektroformation) ergibt eine hohe Ausbeute an fehlerfreien GUVs das Gel gestützten Quellverfahren erzeugt eine homogene Proteinverteilung und erfordert keine spezielle Ausrüstung.

Einleitung

Bei der Untersuchung der physikalischen Prinzipien, die lebende Systeme regeln, Bottom-up-Ansätze ermöglichen ein Experimentator die Systemzusammensetzung und andere Parameter, die nicht leicht in der zellbasierten Systemen 1 manipuliert werden, zu steuern. Für membranbasierte Prozesse, Giant unilamellare Vesikel (GUVs, Durchmesser ~ 1-100 um) haben sich als sehr nützlich biomimetischen Systems 2 sein - 10 - 7, wie sie für die Mikroskopie Studien und Mikromanipulation 8 geeignet sind. Zwar gibt es viele verschiedene Protokolle zur GUVs produzieren, die meisten fallen in zwei Kategorien - Emulsion nähert 11,12 und....

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Protokoll

1. Herstellung der Lösung

  1. Bereiten 5 ml "SUV Puffer", der 5 mM KCl, 1 mM HEPES (pH 7,4) oder Tris (pH 7,5) und 2 mM Trehalose. Filtern des Puffers mit einer 0,2 & mgr; m-Spritzenfilter und teilen sich in 1 ml Aliquots, die bei -20 ° C gelagert werden kann.
    HINWEIS: Weitere Einzelheiten für Reagenzien und Instrumente werden in der Liste Materialien.
  2. Bereiten Sie 40 ml GUV "Wachstum Buffer ', die die GUV Innenraum während der Film Rehydrierung füllen wird. Für eine "Niedrigsalz" Wachstums kombinieren 5 mM KCl, 1 mM HEPES (pH 7,4) oder 1 mM TRIS (pH 7,5), und ~ 400 mM Saccharose. Für eine "physiologische Salzwachstums kombinieren 100 mM K....

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Ergebnisse

Das Wachstum GUVs schnell durch Untersuchen der Wachstumskammer unter dem Mikroskop ausgewertet werden. Für Elektroformation neigen die GUVs in Bündeln längs der Platindrähte wachsen, wie in Figur 4 gezeigt ist. Während Gel gestützten Schwellung, erscheinen GUVs als sphärische Strukturen, die schnell wachsen und miteinander verschmelzen (Abbildung 5).

Mangelfreien GUVs leichter identifiziert und nach der Übertragung auf eine Beobachtungskammer ausgewertet. K.......

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Diskussion

Biomimetische Modellsysteme sind ein wichtiges Werkzeug für die Untersuchung der Eigenschaften und Wechselwirkungen von Proteinen und Membranen. Im Vergleich zu anderen wiederhergestellten Systeme wie BLMs oder unterstützte Lipidmembranen, GUV-basierte Systeme weisen mehrere Möglichkeiten, wie zB erhebliche Kontrolle über die Zusammensetzung der Membran, Spannung und Geometrie, sowie als wahrhaft ölfrei. Einbeziehung Transmembranproteine, wie KvAP in GUVs Jedoch erfordert erhebliche Anpassungen herkömmlicher Protokolle .......

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Offenlegungen

Die Autoren haben nichts offenzulegen.

Danksagungen

Wir danken Susanne Fenz für die Diskussion über die Möglichkeit der Rekonstitution von Proteinen durch Agarosequellung, Feng Ching Tsai für aktuelle Messungen und aktuellen und ehemaligen Mitgliedern der Bsereau Gruppe für Unterstützung und Hilfe. Das Projekt wurde gefördert durch die Agence Nationale de la Recherche (Stipendium BLAN-0057-01), durch die Europäische Kommission (NoE SoftComp), durch die Université Pierre et Marie Curie (Stipendium des FED21, Dynamique des Systèmes Complexes). M.G. wurde unterstützt durch ein Institut Curie International PhD Fellowship, S.A., durch ein Stipendium der Fondation pour la Recherche Médicale, G.E.S.T., durch ein Marie Curie I....

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Materialien

Liste der in diesem Artikel verwendeten Materialien
NameUnternehmenKatalognummerKommentare
DPhPC (1,2-Diphytanoyl-sn-glycero-3-phosphocholin)Avanti Polare Lipide 850356P
Ei PC L-α-Phosphatidylcholin (Ei, Huhn) Avanti Polare Lipide 840051P
Ei PA L-&-alpha;-Phosphatidsäure (Ei, Huhn)Avanti Polare Lipide 840101P
18:1 (Δ 9-cis) PC (DOPC) 1,2-dioleoyl-sn-glycero-3-phosphocholinAvanti Polare Lipide 850375P
Cholesterin (Schafwolle, >98%) Avanti Polare Lipide 700000P
TRed-DHPEInvirtogenT-1395MPmarkiertes Lipid
BPTR-CeramidInvirtogenD-7540 markiertes Lipid
CholoroformVWR22711.290AnalaR Normapur
AcetonVWR20066.296AnalaR Normapur
EthanolVWR20821.330AnalaR Normapur
KimwipeKimtech7552
Hamilton SpritzenHamilton Bonaduz AGdiverse
Braune Fläschchen und TeflonbecherSigmaSU860083 und SU860076
ParafilmVWR291-1214
MikrozentrifugenröhrchenEppendorfdiverse
AgaroseEuromexLM3 (1670-B, Tg 25.7C, Tm 64C)
SaccharoseSigma84097-1kg
Glukose SigmaG8270-1kg
TrehaloseSigmaT9531-25G
KClSigmaP9333-1kg
HepesSigmaH3375-100G
TRISEuromexEU0011-A
OsmometerWescorVapro
pH-MeterSchott instrumentsLab850
SonicatorElmasonicS 180 H
Spritzenfilter 0,2 & Mikro; mSartorius steimMinisart 16532
FunktionsgeneratorTTiTG315
PlatindrähteGoodfellowLS41307499,99+%, d = 0,5 mm
PolytetrafluorethylenGoodfellow
Dow Corning 'Hochvakuumfett'VWR1597418
DichtungspasteVitrex medical A/S, DänemarkREF 140014Sigillum Wachs
Abdeckfolien 22 x 40 mm Nr. 1,5VWR631-0136
Abdeckfolien 22 x 22 mm Nr. 1,5VWR 631-0125
PlasmareinigerHarrickPDC-32GLuftplasma, Einstellung 'hoch'Petrischalen
Falcon BDREF 3530013,5 cm x 1 cm
Patch Clamp VerstärkerAxon instrumentsMulticlamp700B
DatenerfassungskarteNational InstrumentsPCI-6221
LabviewInstrumentsVersion 8.6
Glaspipetten Bor-Silikat OD 1  mm ID 0,58  mmHarvard ApparatGC100-15
ElektrodenhalterWarner Instruments Q45W-T10P
MikromanipulatorSutter MP-285
PipettenabzieherSutter P-2000 
KameraProSilica GC1380
Zeiss MikroskopZeissAxiovert 135
ObjektivZeiss40X langer Arbeitsabstand, Phasenkontrast
Objektiv Zeiss100X Plan-Apochromat NA 1.3
Filterset GFP (für Alexa-488)HoribaXF100-3
Filterset Cy3 (für TexasRed)HoribaXF101-2
Beta-CaseinSigma C6905-1G
KonfokalmikroskopNikon Eclipse TE 2000-ED-Eclipse C1 Konfokalkopf
ObjektivNikonPlan Fluor 100X NA 1.3
MatlabMathworkszur Bildverarbeitung und Analyse der Stromspuren
, National

Referenzen

  1. Schwille, P. Bottom-Up Synthetic Biology: Engineering in a Tinkerer’s World. Science. 333 (6047), 1252-1254 (2011).
  2. Aimon, S., et al. Membrane Shape Modulates Transmembrane Protein Distribution. Developmental Cell. 28 (2), 212-218 (2014).

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Nachdrucke und Genehmigungen

Tags

KvAP RekonstitutionElektroformationsmethodegelunterst tztes QuellenFluoreszenzmikroskopieLipid Protein FilmDehydratisierung RehydratisierungEinbau von Membranproteinen