Protocol
1. הכנה:
- להשיג מיקרוסקופ סטריאו שולחן, עם 3.5 x משתנה ל45x זום, 200 מ"מ מרחק עבודה, מרחק בין אישונים משתנים מ"מ 55 עד 75 ואביזר הובילו טבעת אור. כל מיקרוסקופ דומה הוא נאות, ניתן להגדיר על שולחן קטן זה ולא מאוד יקר.
- לאסוף ולהכין סט של מכשירי מייקרו עם שני טנדרים מייקר, מספריים לנתח אחד, ומחט-נהג אחד; זה המינימום הנדרש, אותו יש לקחת בחשבון שמדובר במכשירים בפועל, ומכשירים באיכות גבוהה סוף אין צורך.
- השתמש מיקרו-תפר 9/0 חוט חד לכל הנהלים. קנה זמין מסחרי ירכי עוף או כנפיים וצבען מזון בסופרמרקט המקומי.
- Angio-קטטר 20 G משמש לבדיקות פתיחות בעורקי הירך העוף. לעורקי הזרוע נדרש קטטר G 27 דק. אלה ניתן לרכוש דרך האינטרנט בבית מרקחת מקומית אועם המכשירים להגדיר. קנה מזרק זמין מסחרי כדי להזריק את צבע מזון.
2. טכניקות לנתיחה מקרוסקופית:
- הגישה לכלי הירך היא פשוטה. לירכי עוף, לבצע טכניקה לנתיחה בוטה רק המדיאלי לפיר הירך, להפריד את שריר הירך מהעצם ולחשוף את העורק, וריד ועצב הירך. העצב יכול להיות גזור נוסף לשני fascicles הנפרד לסוגים שונים של שיטות לתיקון עצב.
- כדי לגשת לעורק זרוע עוף בכנפי העוף, לחתוך את עור longitudinally עם מספריים, מהכתף עד קצה הכנף. שים לב לעורק פועל בין כופפי שרירי ויד אחוריים.
3. משטר אימונים מומלץ:
- מתאמן עם עורק הירך.
הערה: הצעד הראשון במשטר האימונים הוא להתאמן עם עורק הירך העוף.
- מניחים את החתיכה מתחת למיקרוסקופ ולהתחיל לנתיחה המייקר. לשחרר את עורק הירך מהרקמות הבסיסיות; ולחלק אותו בצורה אופקית. בצע adventicectomy. השתמש במייקרו-הטנדרים ומיקרו מספריים לקצץ כל adventicia שמעל לומן עורקים. יש לשטוף את לומן הפנימי במים ברז רגילים. רשום את זמן ההתחלה
- לבצע מקצה לקצה השקה.
- התחל על הקיר האחורי של העורק בצד הנגדי למפעיל. מניחים את התפר הראשון; תתחיל בצד השמאל, אם עובד בצורה אופקית, בצד התחתון, אם עובד בצורה אנכית. להעביר את המחט מהצד החיצוני של העורק ללום ולאחר מכן מלומן לחלק החיצוני של העורק.
- לקשור את התפר, לבצע קשר כפול ראשון, ולאחר מכן שני יחידים זורק כיוונים לסירוגין. השלם את הקיר האחורי כולו עם הטכניקה שתוארה לעיל.
- החל מהיום בצד ימין אם אתה עובד בצורה אופקית או בצד העליון אם אתה ווrking אנכי, מקום תפר אחד ממחוץ ללום ולאחר מכן מלומן החוצה. לקשור את הקשר כפי שתואר לעיל. השלם את הקיר הקדמי חוזר ההליך מתואר ב3.1.2.2.
- רשום את הפעם האחרונה זה יאפשר לך לשמור על זמן שיא, כך שאתה יכול לשלוט בהתקדמות שלך.
הערה: המחברים מעדיפים טכניקת דרך אחת; אבל יכול להיות מתורגל בכל סוג של תפר מייקר. זה recommendable שהמתאמן משלים כ -25 anastomoses המייקר באופן זה לפני שהוא יכול לנסות תרחישים קליניים אחרים. אלה כוללים השתלת וריד לפערי עורקים, מקצה לקצה תיקוני עצב, ושימוש של צינורות וריד לטיפול בפערי עצב. טכניקה חשובה בניתוח כלי דם, שאפשר ללמוד עם שיטת אימון זו היא התפר המתמשך או ריצה, לבצע טכניקה זו תמורת החניך כ3.1.2.1 אבל סטיץ לא לחתוך, תמשיך לבצע תפרים כמו ב3.1.2.1 ללא חיתוכם until שתשלים את כל התפר ולקשור אותו לתפר המקורי בסוף.
- אימון עם עורק הזרוע
- מניחים את החתיכה מתחת למיקרוסקופ. להשלים את ההליך כפי שתואר לעיל לעורק הירך.
הערה: ההבדל היחיד הוא הגודל. עורק הזרוע הוא קטן בהרבה מעורק הירך וההשקה היא הרבה יותר מאתגר.
- מניחים את החתיכה מתחת למיקרוסקופ. להשלים את ההליך כפי שתואר לעיל לעורק הירך.
- בדיקות patency
- לחצות angio-קטטר 27 או 20 G חלק באמצעות ההשקה, כדי לבדוק חסימות שנגרמו על ידי תפרים תפירת שני דפנות הכולים יחד.
- החל מזרק עם צבען מזון מסחרי לסוף angio-קטטר, ותנקב לצבוע לתוך העורק לבדיקת דליפת סילון
- פתח את העורק longitudinally לדמיין את התפרים, ההקבלה שלהם ואת כמות הקיר נלקחה.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Representative Results
המחברים chronometered פעמיהם עם שיטת האימון הנוכחית וראו את זה כדי להפחית באופן משמעותי את זמני השקה לעורק הירך בסוף השבוע השלישי. המתאמן יכול לשלוט על השיפורים בטכניקה שלו על ידי בדיקתו פעמים, אחוזי הפתיחות שלו והיישור של תפריו. המערכת המתוארת בכתב היד הזה מתואר באיור 1 כולל מיקרוסקופ שולחן וקבוצה של מכשירי מייקרו. הניתוחים מקרוסקופית מוצגים איורים 2 ו -3 דוגמא להשקת מייקר עורק הירך מוצג באיור 4. איור 5 מראה השקה מייקר עורק זרוע. איור 6 מציג תיקון עורק הירך עם שתל וריד. בדיקות patency מוצגות באיור 7.
איור 1: קורesponding תחנה בפועל מייקרו של המחבר עצמו. הוא כולל מיקרוסקופ שולחן וערכה של הכשרת מכשירי מייקרו. זה יכול להיות מוגדר על מרחב מוגבל מאוד במשרד או בבית.
איור 2: נתיחה מקרוסקופית של ירך עוף, יכולים להיחשף כלי הירך וגיד הנשה בקלות פועלים אצבע רק המדיאלי לפיר הירך. החץ האופקי מסמן את ראש עצם הירך. מטוס הנתיחה מסומן בחץ האנכי רק במקביל לפיר B הירך: עורק הירך (א) וריד (v) ועצב השת (n) מוצג כאן בפירוט.
איור 3 A ו- B: נתיחה מקרוסקופית של כנף עוף. הזרוע rtery פועל בין שרירי הכופפים וTriceps. העורק מסומן בחץ בשני התמונות היא די שטחי והגישה היא פשוטה; זה יכול להיות מושגת במספריים בישול מסחריים.
איור 4: תמונה מיקרוסקופית של סוף עורק הירך לסיים תפר, טכניקה כאן דרך אחת עם תפרים בודדים בוצעה. כל סוג אחר של תפר יכול להיות מתורגל בשיקול דעתו של המתאמן.
איור 5: קצה לקצה תפר של עורק זרוע עוף. עורקים זה הם הרבה יותר קטנים מאשר הירך אלה וההליך הרבה יותר תובעני מבחינה טכנית.
עומס / 52,625 / 52625fig6.jpg "/>
איור 6: תיקון עורק הירך עם שתל וריד שנקטפו מוריד הירך. מודל ירך העוף הוא מאוד תכליתי המאפשר לסוגים שונים של תרגילים בפועל.
איור 7:. בדיקות patency: angio-צנתר בקוטר המתאים חצה את ההשקה כדי לבדוק חסימות שנגרמו על ידי stiches תפירת שני הקירות של כלי B:.. דאי הוא perfused דרך ההשקה לבדיקת דליפת C : ההשקה נפתחה longitudinally לדמיין יישור התפר.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Materials
Name | Company | Catalog Number | Comments |
Stereomicroscope | Amscope | SM-1BX | Microscope |
Led light | Amscope | LED-80S-YA | illumination system |
Microsurgical instruments set | Chen hen microsurgical instruments | HC- X803-1 | Microsurgical instruments |
Microsurgical sutures | S/T microsurgical | 9/0 Suture | Sutures |
References
- Lee, S. Historical events on development of experimental microsurgical organ transplantation. Yonsei Med J. 45 (6), 1115-1120 (2004).
- Shurey, S., Akelina, Y., Legagneux, J., Malzone, G., Jiga, L., Ghanem, A. M. The rat model in microsurgery education: classical exercises and new horizons. Arch Plast Surg. 41 (3), 201-208 (2014).
- Olabe, J., Olabe, J., Sancho, V. Human cadaveric infusión model for neurosurgical training. Surg Neurol. 72, 700-702 (2009).
- Peled, I. J., Kaplan, H. Y., Wexler, M. R.
Microsilicone anastomoses. Ann Plast Surg. 10 (4), 331-332 (1983). - Gluer, N. M., Rao, G. S. Canniesburn “ever-ready” model to practise microsurgery. Br J Plast Surg. 43 (3), 381-382 (1990).
- Hino, A. Training in microvascular surgery using a Chicken wing artery. Neurosurgery. 52 (6), 1495-1498 (2003).
- Marsh, D. J., Norton, S. E., Mok, J., Patel, H. D., Chen, H. C. Microsurgical training the Chicken thigh model. Ann Plast Surg. 59 (3), 355-356 (2007).
- Jeong, H. S., Moon, M. S., Kim, H. S., Lee, H. K., Yi, S. Y. Microsurgical training with fresh chicken legs and their histological characteristics. Ann Plast Surg. 70 (1), 57-61 (2013).
- Couceiro, J., Ozyurekoglu, T., Sanders, S., Tien, H. Microsurgical training regimen with nonliving chicken models. Microsurgery. 33 (3), 251-252 (2013).
- Phoon, A. F., Gumley, G. J., Rtshiladze, M. A. Microsurgical training using a pulsatile membrane pump and chicken thigh: A new, realistic, practical, nonliving educational model. Plast Reconstr Surg. 126 (5), 278e-279e (2010).
- Zhou, Y., Gu, X., Xiang, J., Qian, S., Chen, Z. A comparative study on suture versus cuff anastomosis in mouse cervical cardiac transplant. Exp Clin Transplant. 8 (3), 245-249 (2010).