Methodenartikel

Lung Tumor Zelle Rekrutierung Assay

DOI:

10.3791/53172

26. Februar 2019

In diesem Artikel

Zusammenfassung

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Dieses Manuskript beschreibt eine Methode zur Quantifizierung der Tumor Zelle Ansammlung in der Lunge in einem Tiermodell der Tumor Metastasen.

Zusammenfassung

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Um die molekularen Mechanismen Tumor Metastasen zu untersuchen, wurden verschiedene Tests mit der Maus als Modell Tier vorgeschlagen. Hier zeigen wir eine einfache Assays Tumor Zelle Extravasation oder Micrometastasis zu bewerten. In diesem Test Tumorzellen durch die Rute Vene injiziert wurden, und nach kurzer Zeit die Lunge wurden seziert und verdaut die angesammelten beschrifteten Tumorzellen zu zählen. Dieser Assay überspringt den ersten Schritt der primäre Tumorinvasion in das Blutgefäß und erleichtert die Untersuchung der Ereignisse in der entfernten Organ wo Tumor Metastasen auftreten. Die Anzahl der Zellen in das Blutgefäß injiziert kann optimiert werden, um eine begrenzte Anzahl von Metastasen zu beobachten. Es wurde berichtet, dass Stromazellen Zellen in den entfernten Organ zur Metastasierung beitragen. So könnte dieser Assay ein nützliches Werkzeug, um mögliche therapeutische Medikamente oder Geräte für die Prävention von Tumor Metastasen zu erkunden.

Einleitung

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Tumor Metastasen entfallen hohe Mortalität bei Krebs-Erkrankungen. Aus der Sicht der Untersuchungen auf molekularer Ebene, kann Metastasen in mehrere Schritte unterteilt werden: Tumorentstehung am Standort der Primärtumor, Primärtumor Wachstum und Invasion in das umgebende Gewebe, Intravasation, Zirkulation durch die Blutgefäße , Extravasation auf entfernte Organe und Tumor nachwachsen. Jeder Schritt umfasst unterschiedliche Moleküle/Signale1.

Bisherigen Studien haben besorgt, mit der Ereignisse, die in entfernten Organen vor die Tumorzellen im Blut, die auch bekannt als die bereits metastasierendem Phase2,3,4,5, 6. Unsere Maus Modellstudien gezeigt, dass die bereits metastasierendem Phase Lungenkrebs Metastasen erleichtert durch lang andauernde und Low-Level-Entzündungsreaktionen in der Lunge zu schaffen. Die bereits metastasierendem Phase zeichnet sich durch Hyperpermeability von Themicrovasculature, Rekrutierung von abgeleitet Knochenmarkzellen (BMDC) und Hochregulation der Zytokin/Chemokin-ähnliche Moleküle, einschließlich S100A8 und SAA33,4 . Es wurde berichtet, dass die Lysyl-Oxidase modifiziert die extrazelluläre Matrix in der Lunge, BMDCs7zu rekrutieren. Ein weiterer Bericht hat die Bedeutung von Angpt2, MMP3 und MMP10 in der Pre-metastasiertem Phase8ergeben. Das heißt, die komplizierten Wechselwirkungen zwischen Primärtumoren, dem Knochenmark und entfernte Organe müssen verstanden und richtig (z. B. durch Drogen, die auf Proteinen, die in diesen Interaktionen) moduliert werden um zu verhindern, dass künftige Metastasen9 . Um die bereits metastasierendem Phase zu regulieren, sollte es zunächst visualisiert und ausgewertet für diagnostische oder therapeutische Interventionen. Hier berichten wir über eine Lunge Tumor Zelle Rekrutierung Assay, der die Studie bereits metastasierendem Phase in der Lunge ermöglicht.

Zirkulierende Tumorzellen bei Krebspatienten, obwohl es möglicherweise Unterschiede zwischen kultivierten Zellen und zirkulierenden Tumorzellen ähneln Tumorzellen direkt in das Blutgefäß der Maus injiziert. Zirkulierenden Tumorzellen unterziehen sich einige charakteristischen Veränderungen, wenn sie aus dem primären Tumor in Umlauf. Dennoch können kultivierte Zellen Tumore in immungeschwächte Mäuse bilden, wenn sie in die Rute Vene injiziert werden. Darüber hinaus kann im Maus-Modell-System Fluoreszenz beschriftet Tumorzellen verwendet werden, die Verfolgung dieser Zellen im Körper zu ermöglichen. Das Verhalten der zirkulierenden Tumorzellen ist wichtig, da sie die letzten Konsequenzen in Krebs Patienten10bestimmen. Blut ist kein guter Ort für das Überleben von Tumor-Zellen-2. Sie müssen vor Angriffen durch das Immunsystem des Wirts zu entkommen und brauchen Anti-Apoptotic Signale Apoptose aufgrund mangelnder körperlicher Unterstützung zu verhindern. Tumorzellen mit höheren Fähigkeiten der Tumorentstehung bei metastasiertem Websites generieren mehr Tumor Knötchen. Wenn die Tumorzellen spezifisches Organ Tropismus zeigen, Metastasen in den einzelnen Organen zu beachten. In diesem Test die ersten Schritte der metastatischen Kaskade (Primärtumor Wachstum und Invasion) sind nicht im Preis inbegriffen, und so im Mittelpunkt steht das Zusammenspiel von zirkulierenden Tumorzellen und die stromale Zellen (Endothelzellen, Epithelzellen und Blutzellen). In herkömmlichen Tumor Zelle Injektion Assays haben Forscher warten, bis der Tumor Knötchen wachsen auf eine konkrete Größe der Metastasen zu erkennen. In diesem Fall werden nicht die genaue Anzahl der Tumorzellen in den Blutgefäßen quantifiziert. Darüber hinaus enthält dieses Prozesses eine Tumor Regrowth Phase, darauf hinweist, dass andere Faktoren in den Tumorzellen das Ergebnis beeinflussen können.

Zählen ist beschriftet Tumorzellen unter eine Fluoreszenz Stereomikroskop ein einfacher Prozess. Das Stereomikroskop bietet ein breites Sichtfeld, so dass die ganze Lunge gescannt werden kann. Durchflusszytometrie ist auch ein nützliches Tool, das sofort eine genaue Anzahl von Tumorzellen in das Gewebe gibt. Ist auch möglich und zeigt die genauesten Bilder von metastatischen Tumorzellen zählen fluoreszierende Zellen in das Gewebe unter einem confocal Mikroskop, aber es ist zeitaufwändig und verzerrte Ergebnisse geben kann, wenn nur ein ausgewählter Bereich gezählt wird. Das Endziel dieser Assay ist zu beobachten, wie leicht die Tumor-Zellen in der Lunge ansammeln. Wie bereits berichtet3,4, wenn die Lunge durch entzündliche Signalisierung aus dem primären Tumor bereits Metastasen phasengleich sind, neigen die injizierten Tumorzellen in die Lunge, so impliziert höhere Chancen auf Lungenkrebs Metastasen ansammeln. Andere Bedingungen (rheumatoide Arthritis, Asthma, etc.) und deren Behandlung mit entzündungshemmenden Mitteln (z. B. Anti-TNF) kann Lungenkrebs Metastasen dämpfen. So schließen wir, dass dieser Test ein mächtiges Werkzeug ist um die Möglichkeit der Lunge Metastasen zu bewerten.

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Protokoll

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Alle Verfahren, die mit Mäusen durchgeführt wurden durch das Tier Forschung Ausschuß von Tokyo Medical Frauenuniversität genehmigt.

1. Rute Vene Injektion von Lewis Lungenzellen Karzinom (LLC)

  1. Pflegen LLC Zellen in DMEM mit 10 % FCS, in einer befeuchteten 5 % ergänzt CO2 Inkubator bei 37 ° C. Zellen sollten ein fluoreszierendes Protein Expressionssystems (z. B. GFP) enthalten.
  2. Entfernen Sie Zellen von Kulturschale mithilfe eines nicht-enzymatische Zelle Dissoziation Reagenzes. Protokoll des Herstellers zu folgen.
  3. Sammeln Sie Zellen in einem 15 mL-Tube und Zentrifuge bei 400 X g, für 3 min. Aufschwemmen der Zellen in 5 mL PBS durch pipettieren und Zentrifugieren die Röhre (400 X g, 3 min). Entfernen Sie dann den überstand.
    1. Wiederholen Sie diesen Waschschritt noch einmal.
  4. Nach der zweiten Wäsche eine Zelle Sieb (40 µm Porengröße) die Zellen durchlaufen, und Aufschwemmen in PBS, eine endgültige Zelldichte von 1 x 106 Zellen/mL zu geben.
  5. Injizieren Sie 0,1 mL Zellsuspension (1 x 105 Zellen, 29 G-Nadel) in jeder C57BL/6-Maus (8-10 Wochen alte Männer) über die Rute Vene.

2. Isolierung der Lunge und zählen die Zellen unter einem Fluoreszenz Stereomikroskop

  1. Die Mäuse durch CO2 Inhalation einschläfern.
  2. Entfernen Sie die Haut auf der ventralen Oberfläche der Brust mit einer Schere. Dann schneiden Sie die Rippen und das Zwerchfell, der Brusthöhle verfügbar zu machen. Spülen Sie PBS (100 CmH2O, insgesamt 15 mL) durch die rechte Herzkammer mit einer geflügelten Infusion 25 G Nadel und Schläuche.
  3. Schneiden Sie das Herz und die Thymusdrüse. Greifen Sie die Luftröhre mit einer Pinzette und hochziehen Sie, sezieren das Bindegewebe um die Luftröhre mit einer Schere. Aus der Lunge sezieren und waschen mit PBS-Puffer.
  4. Jeder Lappen zu trennen und unter einem Stereomikroskop Fluoreszenz beobachten.

(3) Lunge Verdauung

  1. 10 mg Kollagenase, 10 mg Dispase und 10 µg der DNase in 10 mL serumfreien DMEM auflösen. Filtern Sie durch einen 0,22 µm Spritze Filter, die enzymatische Verdauung Lösung vorzubereiten.
  2. Würfel des isolierten kaudalen Lappens mit einer Schere. Legen Sie die Lunge Stücke in einer 10 mL Spritze, gefolgt von den Kolben.
  3. Aspirieren Sie die Verdauung-Lösung (5 mL) in die Spritze durch den Kolben zurückziehen. Betreiben Sie den Kolben rauf und runter, bis die Lösung die Lunge versinkt. Legen Sie dann die Lunge und Verdauung-Puffer in einem 50 mL-Tube.
  4. Schütteln Sie das Rohr für 15 min bei 37 ° C auf einem gegenseitigen Shaker (150 u/min). Lungen können während diese Inkubation zerrissen werden.
  5. Pipette rauf und runter bis Lungenzellen vollständig aufgelöst sind. Schütteln Sie das Rohr für zusätzliche 30 min bei 37 ° C auf einem gegenseitigen Shaker (150 u/min).
  6. Ein 40 µm Zelle Sieb durchlaufen Sie die Lungenzellen. Spin-down der Zellen bei 400 X g für 3 min.

4. Durchflusszytometrie der Lungenzellen

  1. Lösen Sie 100 mg der BSA in 10 mL PBS und Filter durch einen 0,22 µm Spritze Filter, PBS - 1 % BSA vorzubereiten.
  2. Entfernen Sie überstand von der Probe bei Schritt 3.6 mit einer Pipette und 2 mL der roten Blutzelle Lysis Lösung. Dann verwerfen Spin-down der Zellen bei 400 X g für 3 min. Überstands.
  3. Aufschwemmen der Zellen in 5 mL PBS - 1 % BSA durch pipettieren und Zentrifugieren der Röhre (400 X g, 3 min). Verwerfen Sie den überstand.
    1. Wiederholen Sie diesen Waschschritt noch einmal.
  4. Zellen in 1 mL PBS - 1 % BSA auszusetzen und eine neue 40 µm Zelle Sieb passieren.
  5. Analysieren Sie die Zellen mit einem Durchflusszytometer Tumorzellen (mit Filtereinstellungen FL1 für GLP-LLC) zählen.

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Ergebnisse

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Die Lungen präsentieren viele GFP-LLC Zellen 2 h nach der Injektion (Abbildung 1A). Es sei darauf hingewiesen, dass die fluoreszierende Punkte auch in den roten Filter erkannt aus der Nummer Zellenzahl ausgeschlossen werden sollen. Die überwiegende Mehrheit der LLC Zellen verschwinden aus den Lungen 24 h nach der Injektion (Abbildung 1).

Um die Anzahl der GFP-LLC in der...

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Diskussion

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Vorbehandlung von Mäusen mit Antikörpern, Drogen, eine fettreiche Diät oder Tumor konditioniertes Medium vor der Tumor Zelle Injektion ist möglich. Der schwierigste Schritt in diesem Test ist das Heck Vene einspritzen. Unvollständiger Injektion führt nicht schlüssig Daten. Die Schweif Ader im C57BL/6 ist besonders schwer zu erkennen, was fehlerhafte Injektionen. Platzieren die Mäuse auf ein Heizkissen (37 ° C) erweitern hilft die Rute Vene so dass Injektion einfacher wird.

Dieser Assay verwend...

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Offenlegungen

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Die Autoren haben nichts preisgeben.

Materialien

Liste der in diesem Artikel verwendeten Materialien
NameUnternehmenKatalognummerKommentare
KollagenaseSigmaC6885
DispaseGibco17105-041
RinderserumalbuminSigmaA7030
DPBSGibco14190-144kein Calcium, kein Magnesium
Desoxyribonuklease ISigmaDN-25Spurenmenge
ErythrozytenlysepufferSigmaR7757
ZellsiebBD35234040 Mikrometer Maschen
FluoreszenzmarkierungskitSigmaMIN26-KIT
DMEMGibco11965-092
0,22 μ m Spritzenvorsatzfiltersartorius17597K
O.C.T. CompoundSakura Finetek4583
4% Paraformaldehyd-Phosphat-PufferlösungWako163-20145

Referenzen

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  1. Valastyan, S., Weinberg, R. A. Tumor metastasis: molecular insights and evolving paradigms. Cell. 147 (2), 275-292 (2011).
  2. Kaplan, R. N., et al. VEGFR1-positive haematopoietic bone marrow progenitors initiate the pre-metastatic niche. Nature. 438 (7069), 820-827 (2005).
  3. Hiratsuka, S., Watanabe, A., Aburatani, H., Maru, Y. Tumour-mediated upregulation of chemoattractants and recruitment of myeloid cells predetermines lung metastasis. Nature Cell Biology. 8 (12), 1369-1375 (2006).
  4. Hiratsuka, S., et al. The S100A8-serum amyloid A3-TLR4 paracrine cascade establishes a pre-metastatic phase. Nature Cell Biology. 10 (11), 1349-1355 (2008).
  5. Tomita, T., Sakurai, Y., Ishibashi, S., Maru, Y. Imbalance of Clara cell-mediated homeostatic inflammation is involved in lung metastasis. Oncogene. 30 (31), 3429-3439 (2011).
  6. Deguchi, A., et al. Serum amyloid A3 binds MD-2 to activate p38 and NF-κB pathways in a MyD88-dependent manner. Journal of Immunology. 191 (4), 1856-1864 (2013).
  7. Erler, J. T., et al. Hypoxia-induced lysyl oxidase is a critical mediator of bone marrow cell recruitment to form the premetastatic niche. Cancer Cell. 15, 35-44 (2009).
  8. Huang, Y., et al. Pulmonary vascular destabilization in the premetastatic phase facilitates lung metastasis. Cancer Research. 69 (19), 7292-7237 (2009).
  9. Sceneay, J., Smyth, M. J., Möller, A. The pre-metastatic niche: finding common ground. Cancer Metastasis Reviews. 32 (3-4), 449-464 (2013).
  10. Castle, J., Shaker, H., Morris, K., Tugwood, J. D., Kirwan, C. C. The significance of circulating tumor cells in breast cancer: A review. The Breast. 23, 552-560 (2014).
  11. Wolf, M. J., et al. Endothelial CCR2 signaling induced by colon carcinoma cells enables extravasation via the JAK2-Stat5 and p38MAPK pathway. Cancer Cell. 22 (1), 91-105 (2012).
  12. Hiratsuka, S., et al. Primary tumours modulate innate immune signalling to create pre-metastatic vascular hyperpermeability foci. Nature Communications. 4, 1853(2013).
  13. Deguchi, A., et al. Eritoran inhibits S100A8-mediated TLR4/MD-2 activation and tumor growth by changing the immune microenvironment. Oncogene. 35 (19), 1445-1456 (2016).
  14. Ieguchi, K., et al. ADAM12-cleaved ephrin-A1 contributes to lung metastasis. Oncogene. 33 (17), 2179-2190 (2014).

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Schlagwörter

TumorzellextravasationSchwanzveneninjektionLungengewebedigestionDurchflusszytometrie Analysefluoreszierende Zelldetektionnicht enzymatische ZelldissoziationPBS WaschprotokollFiltration durch 40 m SiebErythrozytenlyse

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