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Membranproteine erfüllen wichtige Funktionen in Zellen wie Nährstofftransport, Motilität, Signalübertragung, Überleben und Virulenz, machen aber nur ~1% Prozent der bekannten Strukturen aus. Es gibt zwei Arten von Membranproteinen, α-helikale und β-Fass-Proteine. Während α-helikale Membranproteine in fast allen zellulären Membranen zu finden sind, sind β-Fass-Membranproteine nur in den äußeren Membranen von Mitochondrien, Chloroplasten und gramnegativen Bakterien zu finden. Ein häufiger Engpass bei Strukturstudien von Membranproteinen im Allgemeinen besteht darin, genügend reine Proben für die Analyse zu erhalten. In der Hoffnung, denjenigen helfen zu können, die daran interessiert sind, die Struktur ihres bevorzugten β-Fass-Außenmembranproteins (OMP) zu entschlüsseln, werden allgemeine Protokolle für die Herstellung von Ziel-β-Fass-OMPs auf einem Niveau vorgestellt, das für die Strukturbestimmung durch Röntgenkristallographie und/oder NMR-Spektroskopie nützlich ist. Hier skizzieren wir das Konstruktdesign sowohl für die native Expression als auch für die Expression in Einschlusskörpern, die Reinigung mit einem Affinitätstag und die Kristallisation mit Detergenz-Screening, Bicelle und Lipid-Kubic-Phasen-Techniken. Diese Protokolle wurden getestet und haben sich bei den meisten OMPs von gramnegativen Bakterien als wirksam erwiesen. Es gibt jedoch einige Ziele, insbesondere für Mitochondrien und Chloroplasten, die möglicherweise andere Methoden zur Expression und Reinigung erfordern. Daher sollten die hier aufgeführten Methoden für die meisten Projekte anwendbar sein, die OMPs von gramnegativen Bakterien beinhalten, jedoch variieren die Expressionsniveaus und die Menge der gereinigten Probe je nach Ziel-OMP.