Methodenartikel

Eine Batterie von Motortests in einer Neugeborenen-Maus-Modell der Zerebralparese

27.1K Aufrufe

⸱

DOI:

10.3791/53569

⸱

3. November 2016

 , 
1Department of Medical Genetics and Molecular Biochemistry, Lewiz Katz School of Medicine at Temple University, 2Shriners Hospitals Pediatric Research Center

In diesem Artikel

Zusammenfassung

Präsentiert wird eine kurze Batterie von motorischen Tests an Mäusen für Neugeborene. Mit diesen Tests können neonatale motorische Defizite bei einer Vielzahl von neonatalen motorischen Störungen nachgewiesen werden. Durch einen standardisierten Satz von Tests können die Ergebnisse verschiedener Studien verglichen werden, was eine bessere und genauere Berichterstattung zwischen den Gruppen ermöglicht.

Zusammenfassung

Da die schiere Anzahl transgener Mäusestämme zunimmt und Nagetiermodelle für pädiatrische Erkrankungen zunehmen, besteht ein wachsender Bedarf an einer umfassenden, standardisierten Batterie von motorischen Tests für Neugeborene. Diese Tests können Verletzungs- oder Krankheitsmodelle validieren, die Wirksamkeit der Behandlung bestimmen und/oder das motorische Verhalten bei neuen transgenen Stämmen bewerten. In dieser Arbeit wird eine Reihe von neonatalen motorischen Tests zur Bewertung der allgemeinen motorischen Funktion vorgestellt, einschließlich Gehfähigkeit, Fußwinkel der Hintergliedmaßen, Oberflächenaufrichtung, negative Geotaxis, Aufhängung der Vorder- und Hintergliedmaßen, Greifreflex, Griffkraft der vier Gliedmaßen und Klippenaversion. Mäuse im Alter von 2 bis 14 Jahren nach der Geburt können verwendet werden. Darüber hinaus können diese Tests für eine Vielzahl von neurologischen und neuromuskulären Erkrankungen eingesetzt werden, darunter Zerebralparese, hypoxisch-ischämische Enzephalopathie, traumatische Hirnverletzungen, Rückenmarksverletzungen, neurodegenerative Erkrankungen und neuromuskuläre Erkrankungen. Diese Tests können auch verwendet werden, um die Wirkung von pharmakologischen Wirkstoffen sowie andere Arten von therapeutischen Eingriffen zu bestimmen. In dieser Arbeit wurden motorische Defizite in einem neugeborenen Mausmodell der Zerebralparese untersucht, das Hypoxie, Ischämie und Entzündung kombiniert. Achtundvierzig Stunden nach der Verletzung zeigten fünf von neun Tests signifikante motorische Defizite: Gehfähigkeit, Winkel der Hintergliedmaßen, Aufhängung der Hintergliedmaßen, Griffkraft der vier Gliedmaßen und Greifreflex. Diese Tests zeigten eine Schwäche der Hintergliedmaßen sowie feinmotorische Fähigkeiten wie das Greifen, die den motorischen Defiziten ähneln, die bei menschlichen Zerebralparese-Patienten beobachtet werden.

Einleitung

Die Entwicklung neuer Modelle von pädiatrischen Verletzung oder Krankheit Nagetiere mit ist oft schwierig, aufgrund der erstaunlichen Fähigkeit von Ratten und Mäusen zu schnell von neurologischen Verletzungen erholen. Deshalb, um jede neue pädiatrische Krankheitsmodell zu validieren, gründlich die zellulären und molekularen Veränderungen untersuchen Hand in Hand mit Verhaltensergebnisse gehen müssen. In vielerlei Hinsicht kann funktionelle Wiederherstellung von Verhaltens wichtiger sein als die zugrunde liegenden zellulären Veränderungen in Bezug auf die therapeutische oder Translations Relevanz. Als Forscher mehr über Verletzungen bei Erwachsenen und Neugeborenen lernen, ist es klar, dass ihre Antworten sehr unterschiedlich sind und nicht zwischen den beiden hochgerechnet werden kann. Beispielsweise zeigen neonatale Mäuse verschiedenen Ebenen der Nervenwachstumsfaktor, Wachstumsfaktor BDNF, Neurotrophin-3 und glialen Zelllinie abstammenden neurotrophischen Faktors folgenden Rückenmarksverletzung 1,2. Zusätzlich haben Neugeborenen signifikant Blut-Hirn - Schranke Leckage nach Schlaganfall 3, demonstrate kortikalen Neuronen Umlagerung nach peripheren Nervenverletzung 4 und haben eine verzögerte oder verlangsamte Astrogliose folgenden Verletzungen des Rückenmarks und Hypoxie-Ischämie 5,6. Daher ist es wichtig , dass translationale pädiatrische Forschung entwicklungs Modelle gleichwertig verwenden und dass diese Modelle sind für die beiden zellulären / molekularen Veränderungen und altersgerechte Verhaltenstests bewertet.

Cerebralparese (CP) ist eine Bewegungsstörung, die 3 betrifft: jährlich 1000 Lebendgeburten (NIH). Kinder mit CP eine Reihe von Symptomen und Komorbiditäten aufweisen, abhängig von der Schwere der Erkrankung. Schwierigkeiten mit der Bewegung und Koordination sind die häufigsten Anzeichen, zusammen mit Verzögerungen bei der Motorentwicklungsmeilensteine ​​zu erreichen. Weitere Symptome sind abnorme Muskeltonus (entweder erhöht oder verringert), reduziert die Feinmotorik, Schwierigkeiten beim Gehen, übermäßige sabbern und Schlucken und Alalie (NIH). Die zugrunde liegende Ursache von CP wird angenommen, dass seinein Mangel an Sauerstoff und / oder den Blutfluss zum Gehirn während des Vor- oder peripartum Zeitraum oder bis zu einem Jahr post-partum. Zusätzlich ist nun eine Entzündung ein wichtiger Bestandteil sein in der Entwicklung von CP angenommen.

Die Mehrheit der CP Fälle sind mit weißen Substanz Schaden um die Ventrikel, bekannt als periventrikuläre Leukomalazie (PVL) zugeordnet ist. Diese neurologische Kennzeichen deutet darauf hin, dass die anfängliche Beleidigung CP führt während der Zeit der Entwicklung des Gehirns auftritt, wenn die Oligodendrozyten besonders anfällig für Beleidigung sind. Die Periode des schnellen Wachstums Oligodendrozyten in einem Menschen, auch die Zeit, in Oligodendrozyten die am anfälligsten für Verletzungen sind, liegt zwischen 24 - 32 Wochen Schwangerschaft. In den Nager, ist die entsprechende Zeit den postnatalen Tag 02-07 Juli, und ist als CP in diesem Modell induziert wird.

Die Neugeborenen-Maus-Modell von CP, die verwendet wurde, um die Tests hier kombiniert mit einer Entzündung Hypoxie und Ischämie umrissenen führen eine inj zu erstellenUry, dass eine bessere ahmt die Neurodegeneration im menschlichen CP gesehen. Dieses Modell befasst sich mit einigen der wichtigsten Mängel in anderen Tiermodellen von CP beobachtet, die verschiedene motorische Defizite fehlen, sowie ausgeprägte weiße Substanz Schaden menschlichen CP-Patienten ähnelt. Frühere Studien von einem Kollaborateur dem gleichen Modell haben gezeigt , dass die Zugabe von Entzündung der weißen Substanz Schaden erhöht, so besser , die PVL in Kindern mit CP 8 gesehen emulieren. Aufbauend auf den bisherigen Daten stellt dieses Papier eine umfassende Batterie der Neugeborenen-motorischen Tests, um Veränderungen im Verhalten des Motors, wenn das Tier im Alter zu bewerten.

Protokoll

HINWEIS: Alle Tier Operationen wurden in Übereinstimmung mit Temple University ULAR Abteilung und IACUC Richtlinien und Verfahren durchgeführt werden. C57BL / 6 Dämme und Vererber wurden von Charles River Laboratories erworben und wurden in Zuchtkäfigen mit einem 12 Stunden Licht / Dunkel-Zyklus (Licht an 7.00 bis 19.00 Uhr) untergebracht mit freiem Zugang zu Nahrung und Wasser. Brutpaare erzeugt Wurfgrößen zwischen 5-10 Welpen.

1. Cerebralparese Induktions-Chirurgie

  1. HINWEIS: Zerebralparese wurde mit postnatalen Tag (PND) 6 Maus Welpen induziert wird , wie zuvor beschrieben , 8,9 (https://www.jove.com/video/1951/mouse-models-of-periventricular-leukomalacia).
  2. Legen Sie ein Welpe in einer Glasschale auf Eis mit einem Labor wischen den Welpen der Haut zu schützen. Prüfen Sie, ob geeignete Anästhetikum Ebene zu Fuß Prise und Mangel an Bewegung. Bewegen Sie den Welpen zu einem gepolsterten Eisbeutel für die Chirurgie.
  3. Sterilisieren Sie die Haut von den Welpen unter Verwendung von 70% igem Ethanol. Wenn es trocken ist, verwenden Sie ein # 11 sterile OP-blade und machen ein 1 cm langer Schnitt in den Hals.
  4. mit einem tragbaren Hand Ausbrenner unter Verwendung eines stereoskopischen Operationsmikroskop, isolieren die rechte Arteria carotis communis mit einem kleinen Haken und ausbrennen. Optisch bestätigen, dass die Arterie verschlossen wird. Sham Chirurgie umfasst Visualisierung und Isolierung der Arteria carotis communis ohne Kauterisation.
  5. Richten Sie die Haut und in der Nähe mit Nahtkleber (n-Butyl-Cyanacrylat).
  6. Platzieren Sie den Welpen auf einem 34 o C Heizkissen für 30 min für die Spontanatmung und die normale Bewegung zu überwachen.
  7. Bringen Sie den Welpen (e) für 30 min zu stauen.
  8. Legen Sie die Welpen auf einem Heizkissen oder einer anderen Wärmegerät bei 34 ° C in einer Hypoxie Kammer eingestellt auf 6% Sauerstoff für 35 min eingestellt. Sauerstoff wird durch Stickstoff ersetzt. die Kammer Sauerstoffgehalt und Temperatur für eine konsistente Verletzungen Ergebnisse genau zu überwachen.
  9. Entfernen Sie die Welpen aus der Hypoxie Kammer und bringt sie zu dem Heizkissen.
  10. Intraperitoneal injizieren LipopolySaccharid bei 1 & mgr; g / kg in steriler Kochsalzlösung verdünnt und den Welpen auf den Damm zurück. nur Scheininjektionen sind Injektionen von Kochsalzlösung.

2. Neonatal Motortests

HINWEIS: Bei PND 8, 48 Stunden nach der CP Induktion, Maus Welpen für Neuropsychologische Entwicklung getestet werden. Pups sind innerhalb von 4 Stunden Block vor Mittag, um Tageszeit Unterschiede im Verhalten zu beseitigen getestet. Pups aus dem Damm für nicht mehr als 15 Minuten zu einer Zeit entfernt zu einem schnellen Verlust von Körperwärme und Hunger / Trennung Probleme zu vermeiden. Zusätzlich werden Welpen so ruhen in zwischen den Tests erlaubt, dass die maximale Anstrengungen werden auf jedem Test ausgelöst werden. Die Grundlage der neonatalen motorischen Tests wird Fox Batterie von Tests angepasst mit 10,11 und Wahlsten die Anpassung von Fox Tests 12 sowie Treat-NMD und andere Verhalten Publikationen (wie im Text für jeden Test angegeben). Fox Batterie von Tests sind geeignet für PND 2 - 21. Von Fox-Tests, der Teigy vorhanden hier beinhaltet: Reflex aufrichtenden, Greifen Reflex, negativ geotaxis und vier Gliedmaßen Griffstärke (modifiziert von Fox und Wahlsten Bildschirm Kletterversuche) (vertikale Screen-Test in Fox Batterie genannt). Hier Gehfähigkeit, Vorderschenkel-Stärke und hinteren Gliedmaßen Stärke auch zu unterscheiden reflexive motorisches Verhalten zwischen Schein und CP Maus Welpen getestet. Um Verbesserungen auf Tests beseitigen aufgrund Lernen wurden Tests auf maximal drei Versuche beschränkt, in denen festgestellt. Alle anderen Prüfungen hatte nur einen Versuch pro Tier.

  1. Gehfähigkeit (Abbildung 1) (angepasst aus einem Ratten Protokoll 13):
    HINWEIS: Crawling ist ein Verhalten , früh in der Maus pup zwischen PND entwickelt 0 - 5 aus , an welchem Punkt Mäuse beginnen , von 5 bis Fuß, für den Übergang - 10 Tagen alt 14. Bei PND 8 nimmt der Gehfähigkeit Test Vorteil dieses Übergangszeitverlauf. Ambulation kann jedoch während der gesamten Lebensdauer einer Maus erzielt und kann in jedem Alter bestimmt werden.Da es kein Potential für das Lernen ist, kann die Gehfähigkeit Test so oft wiederholt werden, wie durch den Verlauf des Versuchs benötigt.
    1. Platz Mäuse in einer klaren Gehäuse wo Mäuse von oben sichtbar sind, als auch der Seite. Verwenden Sie sanfte Stups der kleine Hund in den Schwanz zu berühren den Welpen zu motivieren, zu gehen.
    2. Ergebnis Gehfähigkeit für 3 min mit der folgenden Skala: 0 = keine Bewegung, 1 = kriechend mit asymmetrischen Bewegung des Körpers, 2 = langsam kriechenden aber symmetrische Bewegung des Körpers und 3 = schnell kriechende / Walking.
      HINWEIS: Hier symmetrische Gliedbewegung beschrieben wird, wo hindpaws frontpaws bei jedem Schritt zu erfüllen, und jeder Schritt reibungslos Übergänge zu dem nächsten Schritt. Eine Maus Anzeige asymmetrische Bewegung des Körpers hat unberechenbar Pfote Platzierung und Übergänge von einem Schritt zum nächsten sind nicht glatt.

figure-protocol-1
Abbildung 1. Der Übergang vonKriechen zu Walking kann durch die Beobachtung der Hinterpfote, sowie den Kopf und Schwanz. (A) Während Krabbeln, die gesamte Hinterpfote, von den Zehen bis zur Ferse, den Boden berührt zu unterscheiden , wenn ambulating, wie bezeichnet mit (*). Ein Erwachsener Gangmuster ist zu sehen , wenn nur die Zehen und vorderen Teil des den Boden berühren Hinterpfote (der Ferse erhöht ist, deonoted von [**]). (B) der Kopf und Schwanz eines kriechenden Maus ist niedrig zu Boden. Der Kopf beginnt vom Kriechen zum Gehen während des Übergangs zu steigen. Der Übergang ist abgeschlossen , wenn sowohl der Kopf und Schwanz erhöht sind und nur die Vorderseite der Hinterpfote den Boden berührt. Bitte klicken Sie hier , um eine größere Version dieser Figur zu sehen.

  1. Hindlimb Fußwinkel (Abbildung 2)
    HINWEIS: Es gibt eine scheinbare Entwicklungs Veränderung in der hinteren Gliedmaßen Haltung als mouse reift zu Fuß vom Kriechen, wo die hinteren Gliedmaßen unter dem Körper positioniert sind, wenn man zu Fuß und der Winkel zwischen der hinteren Gliedmaßen kleiner ist als der Winkel gesehen in kriecht. Auch wenn der hindlimb Fußwinkel im Laufe der Zeit ändert, Maus Welpen im gleichen Alter mit unterschiedlichen Verletzungen oder Krankheiten können verglichen werden. Ähnlich dem ambulation Test (3,1), gibt es kein Potential für das Lernen. Somit kann der hindlimb Fußwinkel Test so oft wiederholt werden, wie durch den Verlauf des Versuchs benötigt.
    1. Entweder in einem klaren offenen Feld-Box oder einem geschlossenen Bereich, montieren Sie eine Videokamera von oben oder unten, bzw. den Welpen aufnehmen, wie es um das Feld bewegt. Verwenden Sie sanfte Stups der kleine Hund in den Schwanz zu berühren den Welpen zu motivieren, zu gehen. Nehmen Sie für zwei Minuten.
    2. Mit Hilfe der Videoaufnahmen, messen Sie den Fußwinkel der Welpen durch eine Linie vom Ende der Ferse / shin an der Spitze des längsten (Mitte) toe Zeichnung. Nur die Messung nehmen, wenn der Welpe einen vollen Schritt ausführtin einer geraden Linie und sind beide Füße flach auf dem Boden. Nehmen Sie keine Messungen während der Welpe stationär ist oder während der Welpe dreht.
    3. Messen Sie drei vor fünf Sätze von Fuß Winkel und berechnen den mittleren Winkel für jeden getesteten Welpen.

figure-protocol-2
Abbildung 2. hindlimb Fußwinkel kann zur Bestimmung Gait Abnormalitäten verwendet werden. Der Fußwinkel kann durch Ziehen einer Linie von der Mitte der Ferse durch die Mitte (längste) Ziffer gemessen werden. Verletzte Tiere einen größeren Fußwinkel haben , wenn in den normalen verglichen (siehe Repräsentative Ergebnisse, Fußwinkel). Bitte hier klicken , um eine größere Version dieser Figur zu sehen.

  1. Aufrichtungs- (Abbildung 3):
    HINWEIS: Die aufrichtenden Reflex ist der Motor Fähigkeit eine Maus pup auf die Füße von einer Rückenlage zu kippen zu können. Das Durchschnittsalter für das Stellreflexes in Nagetieren erscheinen soll PND 5 mit einem Bereich von PND . 1 - 10 15 Da dieser Test ein Reflex ist, gibt es keine Lernkomponente , und es kann in der gesamten Experimente Periode wiederholt werden.
    1. Legen Sie Welpen auf dem Rücken auf einem Baumwolltuch oder Bank-Pad und halten in Position für 5 Sekunden.
    2. Lassen Sie die Jungen und notieren Sie die Zeit, die der Welpe nimmt zu Bauchlage zurückzukehren, sowie die Richtung der aufrichtenden (links oder rechts). Insgesamt eine min wird für jeden Versuch angegeben, falls erforderlich.
    3. Wiederholen Sie dies für insgesamt drei Versuche.

figure-protocol-3
Abbildung 3. Aufrichtungs-. Dieser Test erfordert die Kontrolle Stamm und kann für Haltungs- Ungleichgewichte testen. Menschliche CP-Patienten haben Defizite in ihrem Kern.e.com/files/ftp_upload/53569/53569fig3large.jpg "target =" _ blank "> Bitte hier klicken, um eine größere Version dieser Figur zu sehen.

  1. Negative Geotaxis (Figur 4)
    HINWEIS: Das Durchschnittsalter für negative geotaxis Reflex bei Nagetieren zu erscheinen ist PND 7 mit einem Bereich von PND 3-15 15 Die negative geotaxis Test bewertet die motorische Koordination bei jungen Mäusen.. Die Mäuse werden platziert nach unten eine Steigung und aufgrund vestibulären Signale der Schwerkraft, Welpen die Neigung zu stellen drehen. Die Reaktion auf einen Reiz oder Taxis, ist eine angeborene Verhalten.
    1. Platzieren Sie den Welpen mit dem Kopf nach unten gerichtet auf einem 45 o Neigung und halten Sie ihn für 5 Sekunden.
    2. Lassen Sie den Welpen und notieren Sie die Zeit und die Richtung der Welpe nach oben zu Gesicht dreht. Gesamttestzeit beträgt 2 min.
    3. Wiederholen Sie dies für insgesamt drei Versuche. Mäuse, die auf der Steigung fallen oder ausfallen können zu drehen sein entweder wieder getestet, beseitigt oder eine Null-Bewertung gegeben.
      HINWEIS: Diese Entscheidung ist links an den Prüfer, wie gelegentlich Welpen rollen die Steigung aufgrund Schläfrigkeit eher als Schwäche nach unten. Sobald die Entscheidung über gemacht wird, wie Welpen zu punkten, die die Neigung nach unten fallen, sollte es in den Verfahren zu beachten, und sollte während der gesamten Prüfung aller Themen im Einklang stehen.

figure-protocol-4
Abbildung 4. Negative Geotaxis. Motor und vestibulären Eingang ist für die Maus benötigt , um ihre Orientierung an einem Hang zu erkennen und sich zu drehen. Bitte klicken Sie hier , um eine größere Version dieser Figur zu sehen.

  1. Vorderschenkel - Suspension (Abbildung 5) 16; angepasst von 17, 18:
    HINWEIS: Front Gliedmaßen Suspension testet die forelimb Stärke von Welpen, einschließlich Arm und Pfote Stärke. Tseine Test ist für Welpen jünger als PND 10 15 nicht zu empfehlen. Pups dürfen einen Draht über einen stabilen Gegenstand aufgereiht zu erfassen und mit beiden Vorderpfoten auf den Draht hängen. Der Testbereich ist über einen gepolsterten Drop-Zone. Der Test kann rechts / links Stärkeunterschiede erkennen. Lernen und das Fehlen von negativen Verstärkung kann zu erhöhten Nicht-Teilnahme führen. Mäuse sofort fallen, wenn sie losgelassen oder Fehler zu erfassen, wenn sie auf dem Draht angeordnet sind bezeichnend für die Nichtbeteiligung.
    1. Halten Sie die Welpen fest durch den Körper und es ihnen ermöglichen, den Draht mit beiden Vorderpfoten zu erreichen.
    2. Lassen Sie den Welpen. Mit einem Timer oder Stoppuhr, notieren Sie die Gesamtzeit, sowie Pfote Schwäche zu fallen.
      HINWEIS: Paw Schwäche bestimmt wird, ob ein Welpe konsequent aus dem Draht vor dem anderen mit einer Pfote fällt, anstatt mit beiden Pfoten zugleich von dem Draht freigesetzt wird.
    3. Wiederholen Sie den Test für insgesamt drei Mal.

figure-protocol-5
Abbildung 5. Front Gliedmaßen Suspension. Diese Suspension Test führt zu Spannungen in den vorderen Gliedmaßen bis Muskelermüdung. Mit diesem Ansatz werden Basisstärke in den vorderen Gliedmaßen etabliert. Bitte hier klicken , um eine größere Version dieser Figur zu sehen.

  1. Hindlimb Suspension (Abbildung 6):
    HINWEIS: Diese Suspension Test hindlimb Stärke bestimmt. Es ist ein Test speziell für Neugeborene entwickelt und wurde zunächst an Tieren verwendet , um zwischen PND 2 - 12 19,20, kann aber für Mäuse bis PND 14. Dieser Test angepasst werden kann , rechts / links hindlimb Stärkeunterschiede sowie neuromuskuläre Funktion erkennen. Ein Standard-50-ml-Erlen wird, aufgefüllt mit Labortücher verwendet. Ähnlich wie die Front-Glied Suspensionstest Dieser Test kann gelernt werden, vor allem since gibt es keine negative Folge zu fallen. Somit erhöhte Nichtbeteiligung, wie von Mäusen beobachtet, sobald fallen, wie er freigegeben oder Mißerfolg zu bleiben, wenn sie auf den Rand des Rohres angeordnet ist, festgestellt werden kann.
    1. Mit einem 50 ml konischen Ort pup sanft Gesicht in das Rohr nach unten mit den Hinterbeinen über den Rand gehängt.
    2. Lassen Sie den Welpen. Beachten Sie die hinteren Gliedmaßen Haltung.
    3. Score Haltung nach den folgenden Kriterien bewertet.
      HINWEIS: Score von 4 zeigt normale hindlimb Trennung mit Schwanz angehoben; Score von 3 bedeutet Schwäche ist offensichtlich und hinteren Gliedmaßen sind näher zusammen, aber sie berühren selten einander; Score von 2 zeigt hindlimbs sind nahe beieinander und oft rührend; Score von 1 zeigt eine Schwäche ist offensichtlich, und die hinteren Gliedmaßen sind fast immer in einer gefalteten Position mit dem Schwanz angehoben; eine Punktzahl von 0 zeigt konstant Umklammerung der hinteren Gliedmaßen mit dem Schwanz gesenkt oder Versagen auf das Rohr für einen beliebigen Zeitraum zu halten.
    4. Graf zieht, wenn nötig. Ein Pull ist qualified wenn der Pup seinen Körper mit seiner hinteren Gliedmaßen, während auf der Seite des konischen Rohrs aufgehängt zu heben versucht.
    5. Mit einem Timer oder Stoppuhr, notieren Sie die Latenzzeit zu fallen.
    6. Wiederholen Sie den gesamten Test in dreifacher Ausfertigung.

figure-protocol-6
Abbildung 6. hindlimb Suspension. (A). Diese Suspension Test führt zu Spannungen in den hinteren Gliedmaßen, bis der Muskelermüdung. Baseline Stärke und Haltung in den hinteren Gliedmaßen festgelegt. (B). Scoring. Notieren Sie sich die Zahlen über den repräsentativen Mäusen die mögliche Haltung Punktzahl demonstriert. Bitte klicken Sie hier , um eine größere Version dieser Figur zu sehen.

  1. Griffstärke (Abbildung 7):
    HINWEIS: Bei diesem Test wird die Pfote s prüfentrength aller vier Pfoten zugleich. Ein 16 x 18 Glasfaser-Bildschirm Draht verwendet wird. Das Durchschnittsalter für ein Nagetier einen horizontalen Bildschirm zu erfassen zu können ist PND 8 mit einem Bereich von PND 5 bis 15 15 Fox den vier Gliedmaßen horizontalen Bildschirm Test von PND 2 verwendet -.. 21 10 Dieser Test aus dem Standard horizontal geändert wird Bildschirmtest; hier wird der Bildschirm langsam von einer horizontalen in die vertikale Position gedreht wird , 21 das Ergreifen aller vier Gliedmaßen herausfordern; von Corti S angepasst 16. Wenn die Maus auf das Siebnetz hält an, wenn auf 180 ° invertiert aufzeichnen die Latenz zu fallen. Beachten Sie auch, um das Körpergewicht. Eine hängende Impuls kann berechnet werden, um die Kraft [Gewicht (g) x Latenz zu fallen (s)] reflektieren benötigt Schwerkraft zu widerstehen.
    1. Mit einem Stück Maschendraht, legen Sie den Welpen auf dem Bildschirm. Lassen Sie den Welpen für ca. 5 Sekunden an diese Umgebung anzupassen.
    2. Kehren Sie den Bildschirm langsam auf 180 Grad. Notieren Sie sich die ungefähre angle des Bildschirms, wenn der Welpe abfällt.
    3. Wiederholen Sie dies für insgesamt drei Versuche und der Mittelwert der Studien.

figure-protocol-7
Abbildung 7. Griffstärke. Die Mäuse sind erforderlich , um die Muskelspannung in allen vier Gliedmaßen als Gravitationskraft erhöht sich aufrecht zu erhalten. Bitte hier klicken , um eine größere Version dieser Figur zu sehen.

  1. Grasping Reflex (Abbildung 8)
    HINWEIS: Der Greifreflex erscheint in der Regel bei Nagern bei PND 7 mit einem Bereich von PND 3-15 15 Jede Pfote einzeln geprüft wird, so kann der Test front- oder hindlimb Fragen sowie Einseitigkeit Probleme offenbaren.. Da es ein Reflex ist, kann dieser Test wiederholt werden, bis der Reflex erscheint. Es ist nicht anfällig für das Lernen. Als wichtige Einschränkung dieser Test unterscheidet nicht Greifkraft, nur Fähigkeit und muss vor dem Alter von 15 Tagen getestet werden, wenn jugendliche Mäuse beginnen aufgrund erfassen Reaktion zu befürchten.
    1. Halten Sie die Maus durch das Genick seines Halses, ähnlich wie eine Maus pup durch den Damm getragen wird. Dieser Halt bewirkt, dass der Welpe instinktiv unbeweglich und entspannt zu werden, so dass für einfache Tests.
    2. Stroke jede Pfote des Welpen mit dem stumpfen, abgerundeten Seite einer Rasierklinge.
    3. Testen Sie jede Pfote einzeln und das Vorhandensein oder Fehlen des Greifens aufnehmen und 1 Punkt pro Pfote punkten, mit dem die Maus greift.
      HINWEIS: Die Bewertung für die rechte Pfote Präferenz ist zu 100% für die rechte Pfote bevorzugt - - -100% für die linke Pfote Präferenz, 50% für beide Pfoten greifen und 0% für keine Pfoten greifen. Die Gleichung, diese Zahlen zu ermitteln ist [(rechte Pfote - linke Pfote) / (rechte Pfote + linke Pfote + beide Pfoten)] x 100%.

/53569/53569fig8.jpg "/>
Abbildung 8. Grasping Reflex. Da neugeborenen Mäusen keine starke Angstreaktion haben, dieser Test bestimmt streng die plantare / palmar Reflex. Bitte klicken Sie hier , um eine größere Version dieser Figur zu sehen.

  1. Cliff Aversion (Abbildung 9):
    HINWEIS: Cliff Aversion Tests Reflexe Labyrinth, sowie Kraft und Koordination und kann verwendet werden Welpen von PND 1-14 22 zu testen. Ein Pre-Duftkasten (ein Feld, in dem mindestens 5 Mäuse erlaubt wurden frei bewegen) mit einem flachen erhöhten Vorsprung verwendet wird, und der Welpe wird mit den Ziffern platziert nur ihre Vorderpfoten und ihre Schnauze über den Rand positioniert. Scoring wird durch Zählen der Gesamtzeit führte sie den Welpen nimmt von der Klippe abwenden und seine Pfoten und Schnauze weg von der Kante. Wenn keine Antwort nach 30 sec zu sehen ist, wird der Test abgebrochen.Wenn der Welpe den Rand fällt, kann eine einzige zusätzliche Studie durchgeführt werden.
    1. Mit Hilfe einer Seitenansicht, legen Sie den Welpen am Rande des vorge duftend Box, um sicherzustellen, dass die Vorderpfoten, Ziffern und Schnauze die einzigen Teile, über den Rand sind.
    2. Lassen Sie Welpe und starten Timer.
    3. Nachdem sowohl die Schnauze und Pfoten von der Kante entfernt wurden, um den Timer und Rekordzeit beenden.
    4. Wiederholen Sie den Test für insgesamt 3 Versuche. Wenn der Welpe von Klippe innerhalb von 30 Sekunden nicht weg bewegen, wird keine Punktzahl gegeben.
      HINWEIS: Die Bestimmung, ob der Welpe ist ein nicht-participator im Vergleich zu dem Ermessen des Prüfers überlassen beeinträchtigt wird. Die Höhe der Klippe kann für das Alter des Welpen angepasst werden, um die Welpen die Sicherheit zu gewährleisten. Eine kleinere Höhe kann mit einem schwarzen "Boden" verwendet werden, um eine größere Höhe zu emulieren.

figure-protocol-8
figure 9. Cliff Aversion. Vestibular Ungleichgewichte gemessen , um die Klippe Aversion Test. Hier werden die Welpen die Augen noch geschlossen , so Angst ist nicht der treibende Faktor abwenden vom Rand der Klippe. Bitte hier klicken , um eine größere Version dieser Figur zu sehen.

3. statistische Signifikanz

  1. eine Statistik-Software Mit Hilfe der Ergebnisse analysieren. Express die Daten als Mittelwert ± Standardfehler des Mittelwertes (SEM). Tests sind parametrisch und somit prüfen, die Daten unter Verwendung von t-Test analysiert.
    HINWEIS: Die Experimente wurden nicht für geschlechtsspezifische Unterschiede zu testen konzipiert. Unterschiede werden als statistisch signifikant, wenn p <0,05 sein.

Ergebnisse

Die Mäuse wurden von P7 (24 h nach der Operation) bis P13 (1 Woche nach der Operation) getestet, verschiedene Mäusen für jeden Zeitpunkt, so dass ein Test Paradigma Lernen war keine verwirrende Variable. P8 wurde als repräsentative Ergebnisse ausgewählt, als Mäuse, die größten Defizite zu diesem Zeitpunkt zeigte.

Der Übergang von Crawling zu Walking ist in CP neonatale Mäuse Verzögerte

Menschliche CP-Patienten haben Gangstörungen, die von Zehenspitzengang zu einem scissored Gang. Da dieser CP-Modell zeigt Defizite ähnlich wie beim Menschen Gang, wurde Gehfähigkeit beurteilt. Die Mäuse wurden gezählt auf Gangsymmetrie und Gliedmaßen Pfote Bewegung während eines gerade zu Fuß. Bei 48 Stunden nach der Operation (PND 8), hatte CP-Mäuse weniger symmetrische Bewegung des Körpers und "Crawling" Gangart im Vergleich zu ihren Pendants Schein (durchschnittlich Gehfähigkeit Punktzahl: CP 1,083 ±0,6337, n = 12 vs Schein 1,639 ± 0,4859, n = 9; p <0,05, 10). Mit einer Woche haben beide CP und Schein Mäuse transitioned zu Fuß (Daten nicht gezeigt).

figure-results-1
Abbildung 10. CP Maus Pups do ambulate nicht so gut wie Shams. Sham - Mäuse (schwarzer Balken) ein Mittelwert von 1,639 ± 0,4859 (n = 9), deren ambulante Entwicklung bedeutet , fällt zwischen asymmetrischen Bewegung des Körpers und langsam kriecht. CP-Mäuse (graue Balken) erhalten eine durchschnittliche Punktzahl von 1,083 ± 0,6337 (n = 12), ihre Gehfähigkeit bedeutet weniger entwickelt ist und neigen dazu, asymmetrische Bewegung des Körpers zu haben. Daten sind als Mittelwert ± SEM ausgedrückt; * P <0,05. Bitte klicken Sie hier , um eine größere Version dieser Figur zu sehen.

Hindlimb Fußwinkel in CP Erhöhte

Neben Gehfähigkeit wurde hindlimb Fuß-Winkel beurteilt. Acht Tage alte Schein Maus Welpen zu Fuß mit ihren hindpaws nach vorn gerichteten, im Vergleich zu HIL - Mäusen, die hindpaws haben gespreizt , wenn sie in einer geraden Linie (Abbildung 2 zu Fuß, mittlerer Winkel: CP 77.48 ± 9,848, n = 9, gegen Schein 54.54 ± 8,043, n = 11; p <0,0001, Abbildung 11). Dieser erhöhte Winkel korreliert mit Gang Instabilität, dass die Welpen den Winkel ihrer Hinterpfoten, um ihre Gangart zu stabilisieren und zu unterstützen, mit Balance und Koordination zu erhöhen müssen.

figure-results-2
Abbildung 11. CP Maus Pups Splay ihre hindpaws beim Gehen. CP - Mäusen (schwarze Balken) einen mittleren Winkel zwischen ihren hinteren Gliedmaßen von 77,48 ± 8,043 (n = 11), während die Schein - Mäuse (graue b ars) einen durchschnittlichen Winkel von 54,54 ± 9,848 (n = 9). Daten sind als Mittelwert ± SEM ausgedrückt; **** Ist p <0,0001. Bitte hier klicken , um eine größere Version dieser Figur zu sehen.

CP Mäuse zeigen keine Defizite bei Aufrichtungs-

Die Oberfläche aufrichtende Test wurde aufgenommen , da einige CP - Patienten Rumpfkontrolle (Heyrman et al., 2013) beeinträchtigt haben. Zusätzlich ist die vestibulären System notwendig , die Notwendigkeit für aufrichtenden und es gibt vestibuläre Defizite in einigen CP Patienten 23 zu erfassen. CP-Mäuse zeigen keine signifikante Defizite, wenn im Vergleich zu Scheinkontrollen aufrichtenden (Daten nicht gezeigt).

CP Mäuse führen die gleichen wie Sham in Negative Geotaxis Testing

t "fo: keep-together.within-page =" 1 "> wird Negative geotaxis verwendet motorische Koordination bei jungen Welpen zu testen, Mäuse, indem sie Platz in Frage gestellt werden, mit Blick auf bergab auf einer geneigten Fläche Verzögerung oder Nicht orientieren bergauf könnten Defizite zeigen.. in Koordination, Balance oder vestibulären Input. CP-Mäuse zeigen keine Defizite, wenn sie mit negativen geotaxis im Vergleich zu den schein-Mäusen (Daten nicht gezeigt) in Frage gestellt. Zusätzlich CP Mäuse zeigten keine Präferenz zu einer Seite gegenüber einer anderen zu drehen, wenn das Neuausrichten .

Front Gliedmaßen Fahrwerkstest ist Geeignet für Mäuse älter als 10 Tage

CP-Patienten haben den Muskeltonus und Defizite in der Feinmotorik verringert, wie Greifen. Um Schwäche in diesem Mausmodell zu testen, verwendeten wir einen vorderen Gliedmaßen Suspensionstest. Darüber hinaus verwendet das Modell einseitige ischämische Verletzungen und sided-ness könnte diese Suspension Test ermittelt werden. Dieser Testist besser für die Mäuse älter als 10 Tage 15. Um 8 Tage alt, zwei Tage nach der Verletzung, es keine signifikanten Unterschiede zwischen CP waren und Schein-Mäusen (Daten nicht gezeigt).

Hindlimb Stärke wird in CP Mäuse Verminderte

Menschliche CP-Patienten müssen oft Klammern oder assis Gehhilfen wegen des Mangels an Motorsteuerung und Kraft. Um das Nagetier CP-Modell für den Menschen zu vergleichen, wurde hindlimb Stärke mit der hinteren Gliedmaßen Suspensionstest bewertet. Wenn man von der Seite eines konischen Röhrchen suspendiert, CP Mäuse zeigten hindlimb Schwäche, wie durch eine Abnahme demonstriert Score (hindlimb hängen Punktzahl in hängend: CP 3,468 ± 0,5561, n = 13, gegen Schein 3,891 ± 0,1329, n = 13; p < 0,05, 12). Es wurde kein Unterschied in hindlimb Aussetzungszeit beobachtet (Daten nicht gezeigt). So ähnlich dem menschlichen CP-Patienten, CP-Mäuse zeigen Hindlimb (Bein) Schwäche.

figure-results-3
Abbildung 12. Sham Mäuse sind leicht , aber deutlich stärker in ihrer hinteren Gliedmaßen als CP Mäuse. Bei einer durchschnittlichen hängenden Punktzahl von 3,891 ± 0,1329 (n = 13), Schein - Mäusen (schwarze Balken) zeigen mehr hindlimb Trennung und damit eine stärkere hindlimb Haltung, wenn am Rande eines Rohres als CP-Mäuse (graue Balken) mit einer durchschnittlichen hängenden Punktzahl von 3,468 ± 0,5561 hängen (n = 13). Daten sind als Mittelwert ± SEM ausgedrückt; * P <0,05. Bitte klicken Sie hier , um eine größere Version dieser Figur zu sehen.

Grifffestigkeit wird nahm durch CP Verletzung

Greifen mit allen vier Pfoten ist wichtig für ein NagetierBedingungen des Kletterns und über unebene Oberflächen laufen. Grip erfordert erhebliche anhaltende Stärke, anstatt Geschicklichkeit oder lineare Kraft, vor allem in den Ziffern und Pfoten 24. Die Mäuse wurden benötigt, um ihre Körpergewicht auf einem invertierten Drahtgeflecht Bildschirm zu halten. CP Mäuse konnten nicht ihren Griff halten und diese Mäuse fiel bei deutlich niedrigeren Winkel (vier Gliedmaßen mittleren Winkel: CP 75,627 ± 24.48, n = 11, gegen Schein 96,57 ± 10.836, n = 9; p <0,05, Abbildung 13). Diese Daten zeigen, dass es ein erhebliches Defizit in der Griffstärke in CP-Mäusen ist.

figure-results-4
Abbildung 13. CP Mäuse haben Schwächere Grip als Shams. Sham - Mäusen (schwarze Balken) auf durchschnittlich umgekehrten Winkel erfassen kann von 96.57 ± 10.836 (n = 9). CP-Mäuse (graue Balken) kann nur einen umgekehrten Winkel von 75,627 ± 24,48 (n = 11) zu erreichen. Daten sind als Mittelwert ± SEM ausgedrückt; * P0; 0.05. Bitte klicken Sie hier , um eine größere Version dieser Figur zu sehen.

Grasping Reflex Defizite sind Scheinbare in CP Mäuse

Zusammen mit grobmotorischen Defiziten, sind feinmotorische Bewegungen auch in CP - Patienten beeinträchtigt 25,26. Der Greifreflex beim Menschen ist bei der Geburt vorhanden und verschwindet ca. 5 - 6 Monate. Doch Veränderungen in der Greifreflex, wie übertriebene Geschwindigkeit oder Stärke der Greif, Versagen zu erfassen, oder das Wiederaufleben des Greifreflex nach 6 Monaten des Alters, die alle zeigen, Schäden am Nervensystem. Zum Vergleich in der CP-Modell zu erfassen, wurden reflexive Greif Defizite bestimmt.

Bei 48 Stunden nach der Verletzung, CP-Mäuse zeigen eine Abnahme der Greifreflex (mittlere Pfoten ergriffenbei 48 h: CP 2,429 ± 0,9376, n = 14, gegen Schein 3,214 ± 0,8018, n = 14; p <0,05, 14A). Es gab eine leichte, aber nicht signifikante Steigerung der rechten Pfote Präferenz in der forepaws (Daten nicht gezeigt). Es gab eine signifikante rechten Pfote Präferenz in der hindpaws (CP 75,0 ± 42,74, n = 14, vs sham 17,86 ± 54,09, n = 14; p <0,005, Figur 14B). Eine Woche nach der Verletzung, CP - Mäuse zeigen Greifen Defizite (durchschnittliche Pfoten auf 1 Woche ergriffen: CP 2,75 ± 1,035, n = 8, gegen Schein 3,80 ± 0,6325, n = 10; p <0,05, 14C), ohne nennenswerte Pfote Präferenz .

figure-results-5
Abbildung 14. CP Mäuse haben Grasping Defiziten in der hindpaws, Kontralaterale an die geschädigte Hirnregion. (A) 48 Stunden nach der Verletzung (PND 8), CP - Mäuse (graue Balken) fassen einen Stock mit im Durchschnitt weniger Pfoten als Schein animals (schwarzer Balken). (B) CP - Mäuse (graue Balken) zum Greifen mit der rechten Hinterpfote (kontralateral zur Verletzung) eine Präferenz anzeigen , wie auf mit der linken Hinterpfote (ipsilateral zur Verletzung) gegenüber . Sham-Mäuse (schwarzer Balken) nicht über diese rechte Pfote bevorzugt angezeigt werden soll. Rechte Pfote bevorzugt wird wie folgt berechnet ([rechte Pfote - linke Pfote] / [rechte Pfote + linke Pfote + beide Pfoten] * 100) (C) Eine Woche nach der Verletzung, CP - Mäuse (graue Balken) zeigen noch Defizite zu erfassen , im Vergleich zu. shams (schwarzer Balken). Daten sind als Mittelwert ± SEM ausgedrückt; * P <0,05, ** p <0,005. Bitte hier klicken , um eine größere Version dieser Figur zu sehen.

CP Mäuse wenden sich von dem Rand Während Cliff Aversion

Die Klippe Abneigung Test stützt sich auf die inhärente Angst der Mäuse awa zu dreheny von einer steilen Klippe und in Richtung Sicherheit. Obwohl einige CP-Patienten vestibulären Schwierigkeiten haben, sowie Beeinträchtigung der motorischen Kontrolle, haben die CP-Mäuse zeigen keine Defizite auf diesem Test.

Diskussion

Mit Hilfe von Tiermodellen menschlicher Krankheiten zu studieren, ist nur relevant, wenn es eine Überlappung zwischen der zellulären und molekularen Reaktion zwischen Mensch und Nager und dass die Verhaltensdurchgeführten Tests haben direkte Relevanz für die menschliche Symptome. Eines der wichtigsten Probleme mit pädiatrische Erkrankung Studien ist, dass viele Forscher erwachsenen Nagetieren verwenden das Modell, sowie erwachsene Nagetier Verhaltensbewertung, ohne Berücksichtigung der Entwicklungsunterschiede zu schaffen, die für den Krankheitsverlauf von Bedeutung sein können. Aufgrund dieser Probleme ist es wichtig , dass die Forschung über die Verwendung pädiatrische Erkrankung nicht nur die entsprechende angepasste Entwicklungszeitpunkten (zB menschlichen ZNS - Entwicklung bei 28 bis 32 Wochen entspricht einer postnatalen Tag 2 - 7 Tage Nagetier) 7, sondern auch Verhaltenstests, die entsprechenden motorischen, sensorischen oder reflexive Entwicklungsverhalten wird untersucht. Somit wird, wie jeder neue neonatalen Krankheitsmodell entwickelt wird, muss es konsequent, dass das zellulare sicherzustellen getestet werdenund Verhaltensreaktionen werden die am besten geeigneten übersetzbaren Daten zwischen Nagetieren und Mensch schaffen.

Infantile Zerebralparese ist eine motorische Störung, die bis ins Erwachsenenalter bestehen bleiben. Ein Problem bei vielen der Zerebralparese Modelle verfügbar heute ist das Fehlen von wiederholbaren und standardisierten Motortests, die mit den Defiziten gesehen bei pädiatrischen Patienten korrelieren kann. In diesem neuen Modell, das Hypoxie, Ischämie und Entzündung bei einem Neugeborenen Maus wurde, motorisches Verhalten kombiniert ausgewertet unter Verwendung einer Reihe von Tests, die spezifisch für neugeborenen Mäusen. Um die Subjektivität und erhöhen die quantitative Berichterstattung, mehrere Tests wurden zu verringern modifiziert sehr spezifisch sind, aber leicht Maßnahmen zu bewerten, die standardisiert werden können. Zusätzlich können front- und hindlimb Auswertungen separat durchgeführt werden, und die linken / rechten Unterschiede festgestellt werden kann. Diese Batterie von Tests ist spezifisch für Neugeborene Mäuse bis zu zwei Wochen alt sind.

Das CP-Modell demonstriertSchwierigkeiten (Gehfähigkeit, hindlimb Fußwinkel) sowie Gliedmaßen spezifische Schwäche (vier Gliedmaßen Suspension, hindlimb Suspension) und Defizite in der Entwicklungs Reflexe (Greifreflex) beim Gehen. Obwohl in dieser Studie nur eine Zeitpunkt untersucht wurde, können diese Defizite im Laufe der Zeit verfolgt werden.

Es gibt auch andere Batterien von Tests , die auf der Neugeborenen verwendet werden können, wie zum Beispiel die Fox - Batterie von Tests oder Heyser Einschätzung von Entwicklungsmeilensteine 15. Jedoch vergleichen diese Tests Neugeborenen bis Erwachsenen, deren Antworten können nicht gleich sein, weil das Neugeborene noch entwickelt. Fox Batterie und Assement Tests des Heyser beruhen auf Beobachtungs subjektiven Informationen mit dichotomous (ja oder nein) Beurteilung, anstatt objektive Daten (Winkel, Haltung basierend auf Stärke, etc.). Aufgrund der Subjektivität dieser Tests haben viele Wissenschaftler angepasst, hinzugefügt oder Kriterien entfernt, wodurch ihre Ergebnisse unvergleichbar zu anderen und Grenze machening die Nützlichkeit der Daten in Bezug auf eine Basis Defizit für eine bestimmte Krankheit oder Störung zu etablieren. eine Reihe von standardisierten Motortests Durch die Festlegung, dass qualitative und speziell Neugeborenen entwickelt, um zu testen, die Ergebnisse aus den einzelnen Forschungsgruppen genau werden kann und zuverlässig gemeldet und verglichen.

Offenlegungen

Die Autoren erklären, dass sie keine konkurrierenden finanziellen Interessen haben.

Danksagungen

Wir möchten uns bei allen Mitarbeitern des Shriners Hospital Pediatric Research Center bedanken, insbesondere bei Dr. Mickey Seltzer, ohne dessen Unterstützung diese Arbeit nicht finanziert worden wäre. Darüber hinaus möchten wir uns bei Isha Srivastava bedanken, die zur frühen Datenerhebung beigetragen hat, und bei Amy He, die mit den Zahlen geholfen hat. Diese Studie wurde von den Shriners Hospitals for Children finanziert. Keine Finanzierungsquelle spielte eine Rolle bei der Versuchsplanung oder der Entscheidung, die Arbeit zur Veröffentlichung einzureichen.

Materialien

Liste der in diesem Artikel verwendeten Materialien
NameUnternehmenKatalognummerKommentare
C57BL/6 MäuseCharles River LaboratoriesSTAMM-CODE: 027 C57BL/6NCrl ist genau die Sorte, die wir verwenden
Anästhesie-Schale, PYREX™ KristallisationsschaleCorning Life Sciences Glas 3140125Kapazität: 25,03 oz. (740 ml); Durchmesser x H: 4,92 x 2,55 Zoll. (125 x 65 mm). Jeder kleine runde Glasbehälter funktioniert jedoch. Eine Pyrex-Aufbewahrungsschüssel mit einem Fassungsvermögen von 2 Tassen und flachem Boden funktioniert ebenfalls und ist viel billiger (Pyrex-Modellnummer: 6017399).
AbgedeckterBleiring Fisher ScientificS90139CBleiring zur Stabilisierung von Kolben im Wasserbad. Es wird in der Anästhesieschale verwendet.
Skalpellklinge #11World Precision Instrucments, Inc.500240
Kleingefäß-KauterisiererFine Science Tools18000-00
Micro HookFine Science Tools10064-14
Vetbond Nahtkleber3M1469SBn-Butylcyanacrylat-Klebstoff
LipopolysaccharidSigma Life ScienceL4391Lipopolysaccharid aus E.coli 0111:B4, gammabestrahlt
12 x 12 Zoll Herstellung von undurchsichtigenAcryldisplays: Ein Geschäftsbereich von Piasa PlasticsC4022Farbiges Acryl 5-seitiger Würfel, 3/16" Farbiges Acryl, 12 "B x 12" T x 12 "H;   http://www.acrylicdisplaymfg.com/html/cubes_19.html
Kamera/CamcorderJVCGC-PX100BUSJeder Camcorder, der auch bei schlechten Lichtverhältnissen funktioniert und importiert und bearbeitet werden kann. Wir verwenden den JVC GC-PX100 Full HD Everio Camcorder.
Covidien Tendersorb™ UnterlageKendall Healthcare Products Co7174
WypAll L40Kimberly-Clark Professional5600Jede Oberfläche mit mäßigem Grip ist geeignet
Oberfläche bei 45 Grad NeigungWir verwenden einen Karton.
Dünner Draht von einem PfeifenreinigerKreatologieM10314420Jeder Pfeifenreiniger aus jedem Bastelladen funktioniert.
Konisches Röhrchen 50 mlFalcon352070
Fiberglas SiebdrahtNew York Wire  www.lowes.com14436Jeder Lieferant kann verwendet werden, solange sein Sieb 16 x 16 oder 18 x 16
RasierklingeFisherbrand12-640Ein Holzstäbchenapplikator oder ein Holzteil eines Wattestäbchens funktionieren ebenfalls.
OPTIX 24 Zoll x 4 Fuß x 0,22 Zoll Durchsichtige Acrylplatte zur Herstellung von durchsichtigen Acryl-GehstegenPLASKOLITE INC1AG2196AKlares Acryl (1/8" dick) mit Seiten und einer Oberseite, um die Erkundung zu begrenzen. Wir kauften eine Acrylplatte in einem örtlichen Baumarkt und ließen sie zuschneiden. (2) 2" x 2"; (3) 2" x 18"; (1) 2" x 15,5"; (1) 2" x 3". Kleben Sie mit durchsichtigem Klebeband alle Seiten zusammen, wobei das 15,5-Zoll-Stück oben liegt. Kleben Sie das 3-Zoll-Stück an das Ende des 15,5-Zoll-Stücks, um eine Klappe/einen Eingang für die Mäuse zu schaffen. Alternativ kann der Laufsteg ganz oder teilweise verklebt werden und nur die oberen Teile mit Klebeband verklebt werden. Diese Konstruktion ermöglicht es, den Laufsteg für eine einfache Reinigung zu öffnen.
WinkelmesserWestscottACM14371
ist

Referenzen

  1. Nakamura, M., Bregman, B. S. Differences in neurotrophic factor gene expression profiles between neonate and adult rat spinal cord after injury. Exp Neurol. 169 (2), 407-415 (2001).
  2. Widenfalk, J., Lundströmer, K., Jubran, M., Brene, S., Olson, L. Neurotrophic factors and receptors in the immature and adult spinal cord after mechanical injury or kainic acid. J Neurosci. 21 (10), 3457-3475 (2001).
  3. Fernández-Lòpez, D., Faustino, J., et al. Blood-brain barrier permeability is increased after acute adult stroke but not neonatal stroke in the rat. J Neurosci. 32 (28), 9588-9600 (2012).
  4. Cusick, C. G. Extensive cortical reorganization following sciatic nerve injury in adult rats versus restricted reorganization after neonatal injury: implications for spatial and temporal limits on somatosensory plasticity. Prog Brain Res. 108, 379-390 (1996).
  5. Barrett, C. P., Donati, E. J., Guth, L. Differences between adult and neonatal rats in their astroglial response to spinal injury. Exp Neurol. 84 (2), 374-385 (1984).
  6. Villapol, S., Gelot, A., Renolleau, S., Charriaut-Marlangue, C. Astrocyte Responses after Neonatal Ischemia: The Yin and the Yang. Neuroscientist. 14 (4), 339-344 (2008).
  7. Craig, A., Ling Luo, N., et al. Quantitative analysis of perinatal rodent oligodendrocyte lineage progression and its correlation with human. Exp Neurol. 181 (2), 231-240 (2003).
  8. Shen, Y., Liu, X. B., Pleasure, D. E., Deng, W. Axon-glia synapses are highly vulnerable to white matter injury in the developing brain. J Neurosci Res. 90 (1), 105-121 (2012).
  9. Shen, Y., Plane, J. M., Deng, W. Mouse models of periventricular leukomalacia. J Vis Exp. (39), (2010).
  10. Fox, W. M. Reflex-ontogeny and behavioural development of the mouse. Anim Behav. 13 (2), 234-241 (1965).
  11. Tremml, P., Lipp, H. P., Müller, U., Ricceri, L., Wolfer, D. P. Neurobehavioral development, adult openfield exploration and swimming navigation learning in mice with a modified beta-amyloid precursor protein gene. Behav Brain Res. 95 (1), 65-76 (1998).
  12. Wahlsten, D. A developmental time scale for postnatal changes in brain and behavior of B6D2F2 mice. Brain Res. 72 (2), 251-264 (1974).
  13. Balasubramaniam, J., Xue, M., Del Bigio, Long-term motor deficit following periventricular hemorrhage in neonatal rats: A potential model for human cerebral palsy. J Cerebr Blood F Met. , (2005).
  14. Williams, E., Scott, J. P. The Development of Social Behavior Patterns in the Mouse, in Relation to Natural Periods. Behaviour. 6 (1), 35-65 (1954).
  15. Heyser, C. J. Assessment of developmental milestones in rodents. Current protocols in neuroscience. Crawley, J. Q., et al. Chapter 8, (2004).
  16. Corti, S. Grip strength TREAT-NMD: Experimental protocols for SMA animal models. , http://www.treat-nmd.eu/research/preclinical/sma-sops/ (2014).
  17. Corti, S., Nizzardo, M., et al. Neural stem cell transplantation can ameliorate the phenotype of a mouse model of spinal muscular atrophy. J Clin Invest. 118 (10), 3316-3330 (2008).
  18. Grondard, C., Biondi, O., et al. Regular exercise prolongs survival in a type 2 spinal muscular atrophy model mouse. J Neurosci. 25 (33), 7615-7622 (2005).
  19. El-Khodor, B. F. Behavioral Phenotyping for Neonates. Experimental Protocols for SMA animal models. , (2011).
  20. El-Khodor, B. F., Edgar, N., et al. Identification of a battery of tests for drug candidate evaluation in the SMNDelta7 neonate model of spinal muscular atrophy. Exp Neurol. 212 (1), http://www.treat-nmd.eu/research/preclinical/sma-sops/ 29-43 (2008).
  21. Venerosi, A., Ricceri, L., Scattoni, M. L., Calamandrei, G. Prenatal chlorpyrifos exposure alters motor behavior and ultrasonic vocalization in CD-1 mouse pups. Environ Health. 8 (12), (2009).
  22. Hill, J. M., Lim, M. A., Stone, M. M. Developmental milestones in the newborn mouse. Neuromethods 39: Neuropeptide Techniques. , Humana Press. New Jersey. (2008).
  23. Visual dependence influences postural responses to continuous visual perturbation in adults with spastic cerebral palsy. Yu, Y., Keshner, A. E., Tucker, C. A., Thompson, E. D., Lauer, R. T. Combined Sections Meeting of American Physical Therapy Association, Anaheim, CA, USA, , (2016).
  24. Carlson, G. The use of four limb hanging tests to monitor muscle strength and condition over time. Experimental Protocols for SMA animal models. , http://www.treat-nmd.eu/downloads/file/sops/dmd/MDX/DMD_M.2.1.005.pdf (2011).
  25. Gordon, A. M., Duff, S. V. Relation between clinical measures and fine manipulative control in children with hemiplegic cerebral palsy. Dev Med Child Neurol. 41 (9), 586-591 (1999).
  26. Futagi, Y., Toribe, Y., Suzuki, Y. The grasp reflex and moro reflex in infants: hierarchy of primitive reflex responses. Int J Pediat. , (2012).

Nachdrucke und Genehmigungen

Weitere Artikel entdecken

Motorische Tests bei neonatalen MäusenZerebralparese-ModellAmbulations-TestHinterbeinsuspensionGreifkraft aller vier GliedmaßenGreifreflexAufrichtreaktionnegative GeotaxisVorderbeinsuspensionCliff-Aversion-Test
Eine Batterie von Motortests in einer Neugeborenen-Maus-Modell der Zerebralparese
Kontaktieren Sie uns
Der Bibliothek empfehlen

Datenschutz

Nutzungsbedingungen

Richtlinien

Urheberrecht © 2026 MyJoVE Corporation. Alle Rechte vorbehalten.