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Isolierung, Charakterisierung und funktionelle Untersuchung des Zahnfleisch Immune Cell Network

DOI:

10.3791/53736

February 16th, 2016

In This Article

Summary

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Wir haben ein Verfahren zur Isolierung, phänotypische Charakterisierung und funktionelle Analyse von Immunzellen aus murinen Gingiva etabliert.

Abstract

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Immunzellnetzwerke in Geweben spielen eine wichtige Rolle bei der Vermittlung der lokalen Immunität und der Aufrechterhaltung der Gewebehomöostase, dennoch ist wenig über die ansässigen Immunzellpopulationen in der Mundschleimhaut und Gingiva bekannt. Wir haben eine Technik für die Isolierung und Untersuchung von Immunzellen aus murinem Zahnfleischgewebe etabliert, einem Bereich ständiger mikrobieller Exposition und einer anfälligen Stelle für eine häufige entzündliche Erkrankung, die Parodontitis. Unser Protokoll ermöglicht eine detaillierte phänotypische Charakterisierung der Immunzellpopulationen, die in der Gingiva leben, auch im stationären Zustand. Unser Verfahren liefert auch genügend Zellen mit hoher Lebensfähigkeit für den Einsatz in funktionellen Studien, wie z. B. der Beurteilung der Zytokinsekretion ex vivo. Diese Kombination aus phänotypischer und funktioneller Charakterisierung des gingivalen Immunzellnetzwerks soll dazu beitragen, die Mechanismen der oralen Immunität und der parodontalen Homöostase zu untersuchen, aber auch unser Verständnis der Mechanismen der lokalen Immunpathologie zu verbessern.

Introduction

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Zahnfleischgewebe umgeben den Menschen und der Maus Gebiss und werden ständig auf die komplexe Biofilm des Zahnes 1 ausgesetzt. Die Immunzellennetz der Zahnfleischschutz Überwachung ist entscheidend für Gewebeintegrität zu gewährleisten, mit den lokalen kommensale Bakterien gewährleisten Homöostase und, zur gleichen Zeit, zwei wirksame Immunität gegen pathogene Herausforderung bietet. Um das zu erreichen Homöostase wird das Immunsystem sorgfältig auf die Zahnfleischumgebung zugeschnitten eine hoch spezialisierte Immunzellen Netzwerk zu schaffen, noch so kleine Detail wird von den Zahnfleischimmunzellpopulationen bekannt und ihre Rolle bei der Au....

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Protocol

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Alle experimentellen Verfahren in diesem Protokoll beschrieben gefolgt erforderlichen Richtlinien und wurden von der Institutional Animal Care und Use Committee, NIDCR / NIH genehmigt.

1. Bereiten Sie im Voraus

  1. Bereiten Sie die komplette Medien: RPMI mit 2 mM L-Glutamin, 100 Einheiten / ml Penicillin, 100 ug / ml Streptomycin und 10% FBS.
  2. Bereiten DNase Mittel: 50 ml RPMI-Medium mit 7,5 ug DNase ergänzt (Make frisch, auf Eis halten zu allen Zeiten).
  3. Bereiten Collagenase-DNase Medien: 5 ml DNase Medium plus 3,2 mg / ml Collagenase Typ IV (Make frisch, auf Eis halten zu allen Zeiten).
  4. Pre-kühlen FACS-Puffer: 0,5% FBS in ....

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Results

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Zur Anwendung des Protokolls veranschaulichen, zeigen wir repräsentative Ergebnisse der Immunzellennetz in das Zahnfleisch von Mäusen mit und ohne Parodontitis untersucht (WT vs. LFA - / - 2A - C). Repräsentative FACS Plots zeigen Live-CD45 + hämatopoetische Zellen im Zahnfleisch (2A, 2C). Isolation und Verarbeitung von Immunzellen mit diesem Protokoll liefert genügend Zellen ex vivo Stimul.......

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Discussion

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Die aktuelle Technik erfolgreich eine große Zahl von Immunzellen führt (aus einer einzigen Maus) geeignet, nicht nur für die phänotypische Charakterisierung, sondern auch für funktionelle Studien ex vivo. Eine andere Gruppe war zuvor ein Protokoll veröffentlicht zu isolieren und murine gingival Immunzellen zu charakterisieren und stellte den Wert der mehrfarbigen mit Durchflusszytometrie in der Studie von Parodontitis in Tiermodellen 9. Nach erheblichen Fehlersuche den Schlüssel Änderung in diesem Pr.......

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Disclosures

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Autoren haben nichts offenzulegen

Acknowledgements

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Die Autoren wurden teilweise durch das intramurale Programm von NIDCR (N.M.M) finanziert und durch ein Wellcome Trust Stepping Stones Fellowship (097820/Z/11/B an J.E.K) und durch ein Stipendium des Manchester Collaborative Centre for Inflammation Research (an J.E.K) unterstützt. Die Autorinnen und Autoren danken Teresa Wild für die kritische Durchsicht des Manuskripts.

....

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Materials

List of materials used in this article
NameCompanyCatalog NumberComments
Feine SchereFeinwissenschaftliche Werkzeuge14058-11
Skalpellgriff #3Feinwissenschaftliche Werkzeuge10003-12
Skalpellklingen #10Feinwissenschaftliche Werkzeuge10010-00Sterile
SplitterzangeIntegra Miltex6-304
Nadeln mit normaler FaseBD Medical30510927 G, 12,7 mm Länge
Monoject SpritzenCovidien8881513934Luer-Lock-Spitze, 3 ml
PBS, pH 7,4Life Technologies10010-049Ohne Calcium und Magnesium
RPMI 1640Lonza12-167FOhne L-Glutamin
DNase I aus der RinderbauchspeicheldrüseSigma-AldrichDN25-1G
Kollagenase Typ IVGibco (von Life technologies)17104-019
Fötales RinderserumGemini Bio-products100-106
Gentamicin 50 mg/mlQualität biologisch120-098-661EA
Pen StrepGibco (von Life technologies)15140-122
L-GlutaminGibco (von Life technologies)25030-081
0,5 M EDTA pH 8,0Qualität biologisch351-027-721EA
50 ml RöhrchenCorning352070Polypropylen, steril
70 μ M ZellsiebeCorning352350
PetrischalenCorning351029Steril
5 ml FACS RöhrchenCorning352052Steril
BD GolgiPlugBD Biosciences555029Enthält Brefeldin A-Lösung
Phorbol 12-Myristat 13-Acetat (PMA)Sigma-AldrichP8139
Ionomycin CalciumsalzSigma-Aldrich13909
Saponin aus Quillaja-RindeSigma-AldrichS4521
LIVE/DEAD Fixable Aqua Dead Cell Stain KitLife TechnologiesL34957
Anti-Maus CD45 Alexa Fluor 700eBioscience56-0451-82
Anti-Maus CD4 eFluor 450eBioscience48-0042-82
Anti-Maus TCR beta APC eFluor 780eBioscience47-5961-82
Anti-Maus gamma delta TCR FITCeBioscience11-5711-82
Anti-Maus IL-17A APCeBioscience12-7311-82
Anti-Maus IFN-& gamma; PEeBioscience11-5931-82
Anti-Maus NK1.1 PE-Cy7eBioscience25-5941-82
Anti-Maus CD90.2 APC eFluor 780eBioscience47-0902-82
Anti-Maus CD3e FITCeBioscience11-0031-82
Anti-Maus CD19 FITCeBioscience11-0193-82
Anti-Maus CD11b FITCeBioscience11-0112-82
Anti-Maus CD11c FITCeBioscience11-0114-82
Anti-Maus TCR beta FITCeBioscience11-5961-82
Anti-Maus Ly-6G FITCeBioscience11-5931-82
Anti-Maus Ly-6C FITCBD Pharmingen553104

References

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  1. Aas, J. A., Paster, B. J., Stokes, L. N., Olsen, I., Dewhirst, F. E. Defining The Normal Bacterial Flora Of The Oral Cavity. J Clin Microbiol. 43, 5721-5732 (2005).
  2. Belkaid, Y., Naik, S. Compartmentalized And Systemic Control Of Tissue Immunity By Commensals. Nat Immunol.

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Gingival Immune CellsImmune Cell IsolationTissue DigestionFlow CytometryCytokine SecretionCollagenase DNaseCell StrainerEx Vivo StimulationPhenotypic CharacterizationFunctional Examination

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